Wir Protokolle entwickelt und konstruiert einen benutzerdefinierten Apparat zur Einbettung von Millimeter-Skala Proben zu ermöglichen. Wir präsentieren Probenaufbereitungsverfahren mit Betonung auf Einbettung in Acrylharz und Polyimid Schläuche um starre Ruhigstellung und langfristige Lagerung der Proben für die Vernehmung von Architektur und Zelle Morphologie der Gewebe durch Mikro-CT zu erreichen
Seit über hundert Jahren wurde die histologische Untersuchung des Gewebes der Goldstandard für die medizinische Diagnose da Histologie kann alle Zelltypen in jedem Gewebe identifiziert und charakterisiert werden. Unser Labor arbeitet aktiv daran, technologische Fortschritte in x-ray Mikro-Computertomographie (Mikro-CT) machen, die die Diagnose macht der Histologie zum Studium der vollen Gewebe Bände mit zellulären Auflösung bringen wird (zB., eine Röntgenaufnahme Histo-Tomography-Modalität). Zu diesem Zweck haben wir gezielte Verbesserungen zur Probe Vorbereitung Pipeline gemacht. Eine wichtige Optimierung, und der Fokus der vorliegenden Arbeit ist eine einfache Methode für die starre Einbettung von festen und voller Flecken Millimeter-Skala Proben. Viele der veröffentlichten Methoden zur Probe Immobilisierung und Korrelative Mikro-CT-Bildgebung verlassen sich bei der Platzierung der Proben in Paraffinwachs, Agarose oder Flüssigkeiten wie Alkohol. Unser Ansatz erstreckt sich diese Arbeit mit benutzerdefinierten Prozeduren und die Gestaltung von einem 3-dimensionalen druckbare Apparat Einbetten der Proben in einem Acrylharz direkt in Polyimid-Schlauch, die Röntgenstrahlen relativ transparent ist. Hier sind Probenaufbereitungsverfahren für die Proben von 0,5 bis 10 mm im Durchmesser, die geeignet für ganze zebrafischlarven und Jungfische, oder andere Tiere wären und Gewebeproben von ähnlichen Dimensionen beschrieben. Als Proof of Concept haben wir die Proben von Danio, Drosophila, Daphnienund eines Mausembryos eingebettet; Repräsentative Bilder von 3-dimensionalen Scans für drei dieser Proben werden angezeigt. Wichtig ist, führt unsere Methodik auf mehrere Leistungen einschließlich rigide Immobilisierung, Langzeitarchivierung mühsam erstellten Ressourcen und die Fähigkeit, Muster neu zu befragen.
Phänotypen sind beobachtbare Merkmale eines Organismus, die die Folgen der einzigartige Interaktionen zwischen den genetischen Hintergrund und die Umwelt darstellen. Diese Eigenschaften können Verhaltensstörungen, biochemische, morphologische, Entwicklungsstörungen und/oder physiologischen Eigenschaften enthalten. Wichtiger ist, können Unterschiede in der Züge zwischen Wildtyp Organismen und genetische Mutanten wichtige Einblicke in die Mechanismen und Funktionen der betroffenen Gene bieten. Im Hinblick auf Morphologie Histopathologie ist der Goldstandard für die Beurteilung der Phänotypen auf zellulärer Ebene aber leidet an mechanische Artefakte und erlaubt keine genaue quantitative Volumetrische Analyse1. Unser Labor ist motiviert, die Hindernisse für die Anwendung der diagnostischen macht der Histologie auf volle Gewebe Bände mit Submikron-Auflösung zu überwinden.
Ein Überblick über verfügbare Technologien legt nahe, dass die Bildgebung durch x-ray Micro-berechnete Mikro-Computertomographie bieten ideale Möglichkeiten für Millimeter-Skala ganz Tier 3-dimensionale (3D) Histologie benötigt. Mikro-CT ermöglicht die zerstörungsfreie, isotrop, 3D Visualisierung und die Fähigkeit, Quantitative Analyse der Gewebe Architektur1,2. In den letzten Jahren hat 3D-Bildgebung ungefärbten und Metall-gefärbten Zebrafisch von Mikro-CT immer mehr Traktion und verwendet worden, für die volumetrische Analyse mehrere Gewebe, einschließlich Fettgewebe, Muskeln, Zähne und Knochen3,4 ,5,6,7,8,9,10. Andere Modellorganismen und Gewebemustern sind auch offen für Mikro-CT-Bildgebung. Zum Beispiel wurde eine Pipeline zur Quantifizierung der dichten Mesoskalige Neuroanatomie von mäusegehirnen abgebildet über Synchrotron Mikro-CT11eingeführt. In ähnlicher Weise hat sich eine Eosin-basiertes Färbung Protokoll für Weichgewebe Mikro-CT-Bildgebung ganze Maus Organe12geeignet gezeigt. Morphometrische Analyse der ungefärbten menschlichen L3-Wirbel und die Visualisierung der menschlichen Lunge Silber-gebeizt mit Mikro-CT haben gezeigt, dass der Nutzen dieser Technologie für den menschlichen13,14Proben.
Um das große Versprechen der Mikro-CT für vollständige morphologische Phänotypisierung von intakten Kleintiere und Gewebeproben zu verwirklichen, muss zahlreiche Hindernisse überwunden werden, in Bezug auf Durchsatz, Auflösung, Field of View, umfassende Zelle Färbung, und Langzeitarchivierung. Während jeder dieser Aspekte von entscheidender Bedeutung ist, liegt der Schwerpunkt des vorliegenden Manuskripts die Optimierung der einbettenden Verfahren mit zusätzlichen Notizen auf Probe Fixierung und Färbung. Heavy Metal Färbung ist nützlich, weil die innewohnende Kontrast zwischen verschiedenen Weichteile in Mikro-CT-Aufnahmen gering ist. Die Potenz der verschiedenen Metall Flecken wie Osmium ausgefällt, Jod, Phosphotungstic Acid (PTA) und Gallocyanin-Chromalum, um Kontrast für die Mikro-CT-Bildgebung zu verbessern wurde studierte15,16,17. Uranyl Acetat dient auch als kontrastreichen Agent für die Mikro-CT-Bildgebung von Knochen und Knorpel18,19. PTA in unserem Protokoll verwendete führt zu einheitliche Färbung von fast allen Geweben und Zellen im ganzen Zebrafisch Exemplare, mit Bildern, die potenziell mit Histologie-ähnliche Studien durch vollständige Bände des Gewebes kompatibel sind.
Während Mikro-CT Bildaufnahme, eine 2-dimensionale (2D) Projektion genommen, da die Probe durch ein Bruchteil eines Grades gedreht wird und wiederholt, bis die Probe, eine 180 ° oder 360° Rotation erzeugt eine Reihe von Tausenden von 2D Projektionen verwendet abgeschlossen ist für die Rekonstruktion der 3D-Volumen20. In diesem Prozess wird jede Störung der Probe die entsprechenden 2D Projektionen aus der Ausrichtung, was schlecht rekonstruierten 3D Volumen zu verursachen. Probe Immobilisierung ist ein Weg, um dieses Problem zu beheben und einige aktuelle Strategien beinhalten Eintauchen der Probe in Alkohol oder Einbettung in Agarose in Polypropylenröhrchen oder Mikropipette Tipps3,5,15, 16 , 21 , 22. Flüssigkeit eintauchen-Methoden sind nicht ideal, weil zwischen den bildgebenden Sätzen, was zu verschobenen Rekonstruktionen von 3D Volumen23Probe Bewegung während der Bildaufnahme auftreten kann. Darüber hinaus ist es bekannt, dass die physikalische Stabilität von Flüssigkeit gespeichert Gewebeproben in Zeitskalen von Monaten bis Jahren, als Folge der chemischen Instabilität und Oberfläche Abrieb, verbunden mit Bewegung der Kontaktstellen zwischen Probe und der Container-Wand (schlecht ist persönliche Beobachtungen mit festen tierischen und menschlichen Gewebeproben).
Um das Potenzial für Probe-Bewegung während der Aufnahme zu reduzieren, Proben in Agarose24,25,26eingebettet werden können, aber diese Praxis ist verbunden mit der Gefahr des Flecks diffundieren in Agarose wodurch Bild Kontrast-26. Darüber hinaus Flüssigkeit oder Agarose Zubereitungen sind anfällig für körperliche Schäden und beeinträchtigen im Laufe der Zeit macht sie ungeeignet für die langfristige Lagerung der Probe. Wir folgerte, dass eine potenziell erfolgreiche und unkomplizierte Beispielmethode Immobilisierung angepasst aus, die für Elektronenmikroskopie Proben verwendet werden könnte. Polymerisierte Harze wie Verfahrensweisen 812 (eingestellt und ersetzt durch Einbetten 812) sind häufig verwendet, um die Härte zum Generieren von ultradünnen Abschnitte für Elektronenmikroskopie27,28erforderlich zur Verfügung stellen. In der Tat haben einige Vergleichsstudien zwischen x-ray Imaging und Elektronenmikroskopie gezeigt, dass die Proben in Harz eingebettet von x-ray Microscopy29,30abgebildet werden können. Einige der standard-Praktiken der Elektronenmikroskopie übersetzen jedoch nicht direkt an Mikro-CT-Bildgebung. Z. B. Mikro-CT-Aufnahmen von Proben mit squared Harz Kanten typisch Harz Blöcke und Proben aus diesen Blöcken geschnitten ist verbunden mit Rand Beugung Artefakte, die Bildgebung stören können. Glättung von Kanten Harz, zwar möglich, ist mühsam und zeitaufwändig.
Während eine Vielzahl von Einbettungs Kunststoffgranulate werden eingesetzt in der Elektronenmikroskopie, führte hohe Hintergrund schwieriger Harze wie einbetten 812 zugeordnet uns, andere zu testen. Wir entschieden uns für LR weiß aufgrund seiner niedrigen Viskosität, geringe Schrumpfung, geringe Neigung zur Form Luftblasen während der Polymerisation und niedriger Hintergrund. Rand-freie Proben zu erstellen und die Menge des Harzes rund um die Probe zu minimieren, haben wir die Protokolle, um Proben in flüssiges Harz in Polyimid-Schlauch vor der Polymerisation zeichnen entwickelt. Polyimid wurde für seine hohe thermische Stabilität und hohe Röntgen Transmission gewählt, so dass die Entfernung des Schlauches nicht notwendig für die Bildgebung ist. Zu guter Letzt haben wir einen benutzerdefinierte Mikropipette Adapter für unser Beispiel Einbettung Technik um zuverlässig halten Sie den Schlauch und verhindern die Kontamination von Mikropipetten entwickelt. Der Adapter kann 3D aus einem CAD-Image-Datei gedruckt werden. Zusammengenommen ist das Ziel der hier vorgestellten probenvorbereitungsmethoden verbesserte Färbung Kontrast, starre Ruhigstellung und Langzeitlagerung von intakten Millimeter-Skala Exemplare zur Einbettung von kleinen Proben einfacher zu machen, zu erreichen.
In diesem Manuskript präsentieren wir ein detailliertes Protokoll für starre Immobilisierung fester und voller Flecken Millimeter-Skala (0,5 bis 2,5 mm Durchmesser) Proben für die Mikro-CT-Bildgebung. Angesichts der schnellen Vormarsch der Mikro-CT-Technologie in Bezug auf Auflösung und Geschwindigkeit, ist eine Methode der permanenten Probe Konservierung mit Re-imaging Funktionen höchst wünschenswert. Traditionell, dichten Einbettung Harz allgemein dienen in der Elektronenmikroskopie zur Strukturförderung zu ultradünnen Abschnitte schneiden und den Schaden auf die Probe zu minimieren. Unsere Methode angepasst seine Verwendung für starre Ruhigstellung während nicht-destruktive Bildbearbeitung. Um die bildgebenden Artefakte aus dem Vorhandensein von überschüssiges Harz zu minimieren, haben wir die Verwendung von x-ray transparent Polyimid Schläuche Runde Proben ohne Kanten zu erstellen, und das Volumen der Harz um die Probe beschränken implementiert.
Optimales Ergebnis des Verfahrens einbetten ist sorgfältige Ausführung mehrere wichtige Schritte und Liebe zum Beispiel Integrität während des Verfahrens abhängig. In der Tat, Beschädigung der Probekörpers eine kompromittierte Endbild unabhängig vom Erfolg der Ausführung der Bildgebung führen. Da kühlen zu einer Verminderung der Schmerz Antworten trägt und fixierten Gewebe verschlechtert sich bei höheren Temperaturen schneller, verwenden wir vorgekühlt Reagenzien. Große Exemplare müssen geschnitten werden, um den Eintrag Fixativ in das Innere der Probe zu ermöglichen, so dass innere Organe wie Leber, Bauchspeicheldrüse und Darm vollständig behoben sind. Fixierten Gewebe verschlechtern und strukturelle Integrität, Zerstörung der biologischen Struktur zu verlieren. Ein weiterer wichtiger Schritt ist, die Probe in seiner natürlichen Ausrichtung beizubehalten. Daher setzen wir uns für die Verwendung von flachen Behälter, die wir im gesamten Verfahren und sind besonders wichtig bei Fixierung verwenden. Fixierung in Polypropylen Röhrchen oder konische Rohre, die in der Regel einen v-förmigen Boden sollte vermieden werden da sie längliche Proben zu biegen, verursachen können die verzerrt der natürliche Morphologie der Probe. Darüber hinaus ist der Innendurchmesser des Polyimid-Schlauch um die Verwendung von Harz zu minimieren, nur etwas größer als die Breite der Probe. Biegen der Probe kann auch Schaden der Probe führen beim Eintritt in die Röhre. Es wird auch empfohlen, die Probe in den Schlauch auf natürliche Weise zur Vermeidung von schädlicher Extremitäten nach vorne übertragen. Ordnungsgemäße Entwässerung ist ein weiterer entscheidender Schritt. Dies geschieht mit kleinen Schritten EtOH Konzentrationen langsam ersetzt Wasser mit EtOH, das ist mehr mischbar mit dem Harz zu erhöhen. Starke Anstieg der Konzentration von EtOH Gewebe schrumpfen zugeordnet sind und durch zusätzlichen Schritten von EtOH Inkubation für die Umstellung schrittweise gelindert werden können. Zur Minimierung der Bewegung der Probe oder Lufteinschlüsse, wenn es welche gibt, sind schließlich die Proben während der Harz-Polymerisation (Ende 4. Tag) horizontal platziert. Lufteinschlüsse oder Versiegelung neben der Probe führt zu optischen Artefakte mit Röntgenbildgebung Rand Beugung, Verringerung der Bildqualität zugeordnet.
In Bezug auf eventuelle Änderungen des Protokolls, andere Einbetten von Harzen und Metall Flecken können anstelle von LR White Acryl und PTA, bzw. verwendet werden. Embed812, ein Epoxidharz, allgemein verwendet in der Elektronenmikroskopie, hochviskosen, schwieriger zu übertragen ist, kann dazu führen, dass die Verzerrung der Exemplare und ist verbunden mit höheren Hintergrund als Acryl- oder Glykol Methacrylat-Harze. Während JB4 Plus ein Glykol-Methacrylat ist dünnflüssiger als EMbed812 und untere Hintergrund hat, zufällige Entstehung von Lufteinschlüssen erscheinen häufig in der Nähe der Probe. Wie bereits erwähnt, Lufteinschlüsse verschlechtern die Bildqualität und sind besonders problematisch für wertvollen Proben. Es ist erwähnenswert, dass Technovit 7100, ein weiterer Glykol Methacrylat mit PTA Färbung, stört was zu schlechten Kontrast im endgültigen Bild. Vergleichsweise, LR White Acryl hat Wasser-wie Viskosität, niedrige Hintergrund und stört nicht mit PTA zu beflecken. In unseren Händen ist die Erfolgsquote bei der Einbettung in LR weiß ohne Probe Schaden oder Luftblasen mehr als 95 %. Aus diesen Gründen befürworten wir seine Verwendung als das Einbetten von Harz für Gewebe Mikro-CT. In Bezug auf Flecken die Ergebnisse der verschiedenen Metall Flecken wie Osmium ausgefällt, Jod, und PTA in Mikro-CT-Bildgebung wurde verglichen und diskutiert an anderer Stelle15,16,17 und ist nicht in den Anwendungsbereich dieser Manuskript.
Die Größe der Stichprobe ist eine große Einschränkung unserer aktuellen Protokolls. Da wir saugen beschäftigen, Proben in den Schlauch zu übertragen, ist die Fähigkeit zu sehen, die Probe für Orientierung und die Gewährleistung, die es in der Tat im Schlauch ist von entscheidender Bedeutung. Infolgedessen Submillimeter Proben wie Bärtierchen (i.e., Bärtierchen) sind extrem schwer zu integrieren, weil sie erfordern den Einsatz ein Mikroskops visualisiert werden. Sobald Absaugung angewendet wird, mikroskopische Präparate sind leicht von der Fokalebene verloren und werden schwierig zu entdecken, macht es schwierig, festzustellen, ob sie die angefügte Ende des Schlauches zu weit durchlaufen. Größere Proben, wie mäuseembryonen, (3-10 mm) können mit geringfügigen Änderungen zum Einbetten von Protokoll (Abbildung 4) eingebettet werden. Insbesondere wurde der Polyimid-Schlauch auf 1/3 mit Flüssigharz, die vor dem Einbetten polymerisiert war gefüllt. Die feste und gefärbte Probe wurde auf das Pre polymerisierten Harz platziert. Das Rohr war dann voll gefüllt mit UN-polymerisierten Harz und gefolgt von einem zweiten Polymerisation.
Die Bedeutung unserer einbetten Protokoll ist vielfältig. Starr immobilisierte ganze Tier oder Gewebe Proben aus Gründen einschließlich wünschenswert sind: (1) Schaffung von langfristigen Repositories von Proben, die schwer zu generieren oder vorzubereiten; (2) die Wiedererlangung von Daten; (3) aktivieren serielle Bildgebung mit mehreren bildgebender Verfahren; und (4) Bereitstellung von Standards für die Kalibrierung und Technologieentwicklung. Proben mit unserem einbetten Verfahren sind eingehüllt in festen Harz, das widerstandsfähig gegen Beschädigungen und können daher leicht gespeichert werden vielleicht auf unbestimmte Zeit. Langfristiger Lagerung eignet sich besonders für seltene oder mühsam erzeugte Exemplare wie die Phenome Projekten zugeordnet. Weiter, den Fall, dass die digitalen Daten verloren gegangen sind, können die Daten aus der ursprünglichen Probe generiert werden. Die Fähigkeit des Re-imaging über einen langen Zeitraum hinweg potenziell ermöglicht die gleiche Probe mit verhört werden erweiterte bildgebende Modalitäten in der Zukunft. Da die Proben körperlich stabil zwischen bildgebenden Instanzen sind, sind Bilder vom gleichen Muster in der gleichen Ausrichtung, Erleichterung der Registrierung zwischen früheren und späteren Datensätzen erworben. Beispielsweise kann eine Bild mit niedriger Auflösung nur Segmentierung der Gewebe in einem Zebrafisch-Larven. Die gleichen Larve kann später mit höherer Auflösung neu aufgespielt werden, so dass numerische Analysen mit zellulären Auflösung detaillierte. Diese Funktion zum direkten Vergleich zwischen den registrierten Scans schlägt Harz eingebettete Proben als möglicher standard für die Entwicklung von Mikro-CT. Die Auswirkungen der Änderungen auf das bildgebende Verfahren können beurteilt werden, von der gleichen Probe imaging, so dass alle Variablen in der Probe Vorbereitungsschritt gesteuert werden. Schließlich kann eine Harz eingebettet Standardprobe für Kalibrierung verwendet werden, für Konsistenz der Bildgebung zu testen.
Unsere bisherige Arbeit mutierten und erkrankten Fische Histologie Untersuchung zeigte, dass zelluläre Auflösung ermöglicht subtile Auffälligkeiten in der Gewebestruktur, die in grober Untersuchung mittels der sezierenden Mikroskop36oder ein Niederleistungs übersehen werden Stereo-Mikroskop. Wir möchten unsere hochauflösenden Analysen auf humanen Proben zu erweitern. Zebrafisch-Larven, die das primäre Thema unserer Entwicklungsarbeit umfassen, sind ähnlich wie menschliche Nadel Biopsien in ihrer Zerbrechlichkeit, zellulären und interzelluläre Gewebe Heterogenität, Größe (1-3 mm Durchmesser) und längliche Form. Basierend auf unserer langjährigen Erfahrung mit Zebrafisch und andere arbeiten, die zeigen, dass Mikro-CT erfolgreich gebeizt und gescannt von menschlichem Gewebe, wenn auch bei niedriger Auflösung37, erwarten wir unsere Ansätze zur Darstellung und Analyse der Nadel Biopsien Mehrwert verleihen. Wir haben geschätzt, dass die Montage ein Set reicht für eine Vorbereitung von bis zu 20 Proben der gleichen Bedingung, möglicherweise weniger als 30 US-Dollar. Die Proben vorbereitet durch unsere Einbettungs-Methode sind resistent gegen physischen Schaden und daher leicht zu transportieren. Die kostengünstigen und einfachen Transport empfehlen die Möglichkeit der Entnahme von Proben aus auf der ganzen Welt, insbesondere die Gebiete in denen zelluläre Auflösung Bildgebung mit Mikro-CT nicht leicht zugänglich ist. Unsere Vision ist, dass digitale Dateien mit hoher Auflösung der Nadel Biopsien (von 0,1 bis hin zu mehreren Terabyte) ermöglichen die Erstellung eines digitalen Atlas des menschlichen Geweben, und zur gleichen Zeit lassen die Forscher zu verfeinern und zu verbessern aktuelle Analyse Pipelines für Lokalisierung und quantitative Charakterisierung der zellulären und Gewebe Architektur 3D im Rahmen des Gewebes gescannt.
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren möchten Roland Myers danken, dass freundlicherweise die ursprüngliche TEM-Protokolle. Darüber hinaus möchten wir danken Dr. John Colbourne für die Bereitstellung der Daphnien -Probe, Dr. Santhosh Girirajan für die Bereitstellung der Drosophila -Probe und Dr. Fadia Kamal für die Bereitstellung des Mausembryos. Die Ermittler erkennen, finanzielle Unterstützung von der NIH (1R24OD18559-01-A2, PI: KCC), die Jake Gittlen Labore für die Krebsforschung und pilot Award Mittel aus der PSU Huck Instituten der Life Sciences und das Institut für CyberScience.
10X Neutral buffered formalin | Fisher Scientific | SF100-4 | |
Phosphotunstic Acid | VWR | MK282402 | |
Tricaine-S (MS-222) | Western Chemical | MS-222 | |
LR White | Electron Microscopy Sciences | 14380 | |
Polyimide tubing (ID 0.04") | Nordson Medical | 141-0065 | The exact polyimide tubings described in the manuscript are no longer available. A close match is provided here. Tubing with custom diameter can be manufactured upon request. |
Ethyl Alcohol 200 Proof | Pharmco-Aaper | 111000200 | |
Oil-based soft modeling clay | Sculpey | S302 001 | |
Micropipette P200 | Gilson | F123601 | |
Micropipette P1000 | Gilson | F123502 | |
Glass vials | VWR | 66015-042 | |
V-shaped basin | VWR | 89094-676 | |
Weigh boats | VWR | 10803-148 | |
200 μL yellow micropipette tip | Fisher Scientific | 02-707-500 | |
1 mL blue micropipette tip | Fisher Scientific | 02-681-163 | |
Tabletop shaker | Thermolyne | M71735 | |
Camera | Photometrics | CoolSNAP HQ2 CCD | |
X-ray microscope | Zeiss | Xradia 520 Versa |