Summary

Opprettholde biologisk kulturer og måle byggkorn under Aphis nerii: en ikke-modellsystem for plante-insekt interaksjoner

Published: August 31, 2018
doi:

Summary

Bladlus Aphis nerii colonizes på svært forsvarte planter i familien dogbane (Apocyanaceae) og gir mange muligheter til å studere plante-insekt interaksjoner. Her presenterer vi en rekke protokoller for vedlikehold av anlegg og bladlus kulturer, og generasjon og analyse av molekylære og – omic data for A. nerii.

Abstract

Bladlus er utmerket eksperimentelle modeller for en rekke biologiske spørsmål fra utviklingen av symbioses og utvikling av polyphenisms til spørsmål omkring insekt interaksjon med deres Salix. Genomic ressurser er tilgjengelige for flere bladlus arter, og med fremskritt innen neste generasjons sekvensering, transcriptomic studier utvides til ikke-modellen organismer som mangler genomer. Bladlus kulturer kan videre, samlet fra feltet og oppdratt i laboratoriet for bruk i organismebiologi og molekylære eksperimenter for å bygge bro mellom økologiske og genetiske studier. Sist, mange bladlus kan opprettholdes i laboratoriet på foretrukne vert plantene i evigvarende, parthenogenic sykluser slik at sammenligninger av asexually gjengivelse genotyper. Aphis nerii, milkweed-oleander bladlus, gir en slik modell for å studere insekt interaksjon med giftige planter ved hjelp av både organismebiologi og molekylære eksperimenter. Metoder for generasjon og vedlikehold av anlegg og bladlus kulturer i drivhus og laboratory, DNA og RNA utdrag, mikrosatellittmarkør analyse, de novo transcriptome montering og merknaden, transcriptome differensial uttrykket analyse og qPCR verifikasjon av ulikt uttrykt gener er beskrevet og diskutert her.

Introduction

Bladlus er liten, hemimetabolous insekter som koloniser på ulike anlegg familier over hele verden. De er karakteristiske for flere funksjoner, mest spesielt komplekse livssyklusen med syklisk Partenogenese og diskret polyphenisms, og deres forplikte ernæringsmessige symbioses med bakteriell eller gjær endosymbionts som leverer næringsstoffer mangler kostholdet anlegget sap1. Mens de fleste bladlus vert anlegg spesialister, noen generalist arter er viktig avling skadedyr, påførte betydelig økonomisk skade på avlinger enten direkte eller via patogener og virus vektor de2. Utgivelsen av det første bladlus genomet i 2010, ert bladlus Acyrthosiphon erter3, markerte en viktig milepæl i studiet av bladlus biologi fordi det ga genomisk ressursene for adressering spørsmål om insekt tilpasninger til planteetende livsstil, inkludert de som kan føre til en bedre kontroll strategier4. Siden den gangen akkumulert genomisk tilleggsressurser med utgivelsen av en annotert genomet for soyabønner bladlus Aphis glycines5og offentlig tilgjengelig hele genomet ressurser for en tre-bladlus Art (Myzus cerasi (black cherry bladlus), Myzus persicae (fersken-potet bladlus), Rhopalosiphum padi (Hegg-katt bladlus)6. Verdifulle de novo transcriptomic ressurser er tilgjengelige i tillegg til en rekke andre bladlus arter (e.g.,Aphis gossypii (bomull bladlus) Sitobion avenae (korn bladlus)8, Cinara pinitabulaeformis (furu bladlus)9, Aphis nerii (milkweed-oleander bladlus)10).

Bladlus har også gjort varig bidrag til vår forståelse av plante-insekt interaksjoner og økologi av livet på planter11. Et område der bladlus har gjort spesielt viktig bidrag er i vår forståelse av kjemiske økologi av verten anlegget interaksjoner. Planteetende insekter uttrykke ulike tilpasninger fordel for overvinne plante forsvar, og noen enda co-opt anlegget forsvar for sin egen12,13,14. Milkweed-oleander bladlus, Aphis nerii, er for eksempel en lys gul, invasiv bladlus i tempererte og tropiske regioner over hele verden som colonizes på planter i milkweed familien (Apocynaceae). Planter i familien Apocynaceae utviklet seg ulike kjemiske forsvar, inkludert melkeaktig latex og cardiac glykosider kjent som cardenolides, som binder kasjon transportøren Na, K-ATPase og effektiv deterrents å generalist planteetere15, 16. milkweed spesialister express forskjellige moduser av motstand mot cardenolides og noen selektivt eller passivt samle eller endre cardenolides av vev å avskrekke predasjon eller andre fordeler17. A. nerii er tenkt å beslaglegge cardenolides på denne måten, selv om de mekanismer og funksjonelle fordelene fortsatt uklart10,18.

Gitt genomisk ressursene for hånden, gir A. nerii en utmerket eksperimentell modell for studiet av molekylære og genetiske mekanismer involvert i kjemoterapi-økologiske samspillet mellom giftige vert planter og deres spesialist planteetere. Det er verdt å merke seg at mens noen av de tidligste studiene av A. nerii fokusert på lagring cardenolides19, siden den gangen har studier av A. nerii har gitt innsikt i et bredt spekter av evolusjonære og økologiske spørsmål, inkludert den genetiske strukturen av invasiv insekter20 og samspillet mellom opp- og topp-ned regulering på herbivore tetthet21. A. nerii er således en god kandidat som en eksperimentell modell for en spesielt lang rekke studier av insekt-plant interaksjoner. Kritisk for at enhver studie med A. nerii er forsiktig kultur bladlus befolkninger, som inkluderer kultur planter som bladlus avhenger, samt en effektiv generasjon av høy kvalitet – omic data. Vårt mål er å lede leseren gjennom både. Skissert nedenfor er metoder for generasjon og vedlikehold av anlegg og bladlus kulturer i drivhus og laboratorium, DNA og RNA utdrag, mikrosatellittmarkør analyse, de novo transcriptome montering og merknaden, transcriptome differensial uttrykk analyse og qPCR verifikasjon av ulikt uttrykt gener. Mens disse metodene er skrevet for A. nerii, generell dyrking, utvinning, og analyseteknologi kan utvide til en rekke bladlus arter.

Protocol

1. anlegget kulturer Kjøpe frø fra en kommersiell leverandør eller samle fra modne planter i feltet.Merk: Denne protokollen er egnet for de fleste kommersielt tilgjengelige milkweed arter (f.eks Asclepias incarnata, A. syriaca, A. curassavica, Gomphocarpus physocarpus). Noen frø må være kaldt-lagdelt, og instruksjoner fra frø leverandør bør sjekkes. Plante frø i en fin germinating jord (60-70% fine torv moss, perlitt, vermikulitt, kalkstein).<…

Representative Results

Plante kulturer: Frø vil ta omtrent to til fire uker, avhengig av sesongen, for å vokse stort nok til å være re-puttet (figur 1A). Re-Potted planter vil ta ytterligere to til fire uker å vokse til en optimal størrelse for bladlus kulturer (figur 1B). Bladlus kulturer: Voksen A. nerii kjen…

Discussion

Det har lenge vært anerkjent som aposematic A. nerii kan gi innsikt i mønstre og mekanismer for resistens mot anlegget forsvar og spesielt kjemiske lagring18,37. En rekke genomisk ressurser har nylig kommet i A. nerii10, gir nye muligheter for økologiske og funksjonelle genomisk studier som bruker A. nerii som modell. Vi skissere grunnleggende protokoller i bladlus og plant kultur og molekylære/genomisk tekni…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Michelle Moon (Vanderbilt University) for hjelp med fotografering. Vanderbilt University gitt støtte til PA og SSLB støttes av DGE-1445197.

Materials

Sun Gro Fafard Germination Mix Hummert International 10-0952-2
Sun Gro Fafard 3B/ Metro Mix Hummert International 10-0951-2
2x 4" Round Standard Pot Anderson Pots 1503
DreamTaq DNA Polymerase ThermoFisher Scientific EP0701
Trizol ThermoFisher Scientific 15596026
SuperScript® III First-Strand Synthesis kit ThermoFisher Scientific 18080051
Power SYBR Green PCR Master Mix ThermoFisher Scientific 4367659

References

  1. Brisson, J. A., Stern, D. L. The pea aphid, Acyrthosiphon pisum.: an emerging genomic model system for ecological, developmental and evolutionary studies. BioEssays. 28, 747-755 (2006).
  2. Dixon, A. F. G. . Aphid Ecology: An Optimization Approach. , (1985).
  3. Consortium, T. I. A. G. Genome Sequence of the Pea Aphid Acyrthosiphon pisum. PLoS Biology. , 1000313 (2010).
  4. Srinivasan, D. G., Brisson, J. A. Aphids: A Model for Polyphenism and Epigenetics. Genetics Research International. 2012, 1-12 (2012).
  5. Wenger, J. A., et al. Whole genome sequence of the soybean aphid, Aphis glycines. Insect Biochememistry and Molecular Biology. , 1-10 (2017).
  6. Li, Z. -. Q., et al. Ecological adaption analysis of the cotton aphid (Aphis gossypii) in different phenotypes by transcriptome comparison. PLoS ONE. 8, 83180 (2013).
  7. Wang, D., Liu, Q., Jones, H. D., Bruce, T., Xia, L. Comparative transcriptomic analyses revealed divergences of two agriculturally important aphid species. BMC Genomics. 15 (1), 1023-1024 (2014).
  8. Wu, S., et al. De novo characterization of the pine aphid Cinara pinitabulaeformis Zhang et Zhang transcriptome and analysis of genes relevant to pesticides. PLoS ONE. 12, 0178496-0178517 (2017).
  9. Birnbaum, S. S. L., Rinker, D. C., Gerardo, N. M., Abbot, P. Transcriptional profile and differential fitness in a specialist milkweed insect across host plants varying in toxicity. Molecular Ecology. , (2017).
  10. Dixon, A. F. G. . Insect Herbivore-Host Dynamics. , (2005).
  11. Goggin, F. L. Plant-aphid interactions: molecular and ecological perspectives. Current Opinion in Plant Biology. 10, 399-408 (2007).
  12. Will, T., Furch, A., Zimmermann, M. R. How phloem-feeding insects face the challenge of phloem-located defenses. Frontiers in Plant Science. 4, 1-12 (2013).
  13. Webster, B. The role of olfaction in aphid host location. Physiological Entomology. 37, 10-18 (2012).
  14. Agrawal, A. A., Petschenka, G., Bingham, R. A., Weber, M. G., Rasmann, S. Toxic cardenolides: chemical ecology and coevolution of specialized plant-herbivore interactions. New Phytologist. 194, 28-45 (2012).
  15. Dobler, S., Petschenka, G., Pankoke, H. Coping with toxic plant compounds- the insect’s perspective on iridoid glycosides and cardenolides. Phytochemistry. 72, 1593-1604 (2011).
  16. Opitz, S. E. W., Müller, C. Plant chemistry and insect sequestration. Chemoecology. 19, 117-154 (2009).
  17. Birnbaum, S. S. L., Abbot, P. Insect adaptations toward plant toxins in milkweed-herbivores systems – a review. Entomologia Experimentalis et Applicata. 58, 579-610 (2018).
  18. Rothschild, M., von Euw, J., Reichstein, T. Cardiac glycosides in the oleander aphid, Aphis nerii. Journal of Insect Physiology. 16, 1141-1145 (1970).
  19. Harrison, J. S., Mondor, E. B. Evidence for an invasive aphid ‘superclone’: extremely low genetic diversity in oleander aphid (Aphis nerii) populations in the southern United States. PLoS ONE. 6, 17524 (2011).
  20. Mooney, K. A., Halitschke, R., Kessler, A., Agrawal, A. A. Evolutionary trade-offs in plants mediate the strength of trophic cascades. Science. 327, 1642-1644 (2010).
  21. Grabherr, M. G., et al. Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome. Nature Biotechnology. 29, 644-652 (2011).
  22. Haas, B. J., et al. De novo transcript sequence reconstruction from RNA-seq using the Trinity platform for reference generation and analysis. Nature Protocols. 8, 1494-1512 (2013).
  23. Finn, R. D., et al. The Pfam protein families database: towards a more sustainable future. Nucleic Acids Research. 44, 279-285 (2016).
  24. The UniProt Consortium. UniProt: the universal protein knowledgebase. Nucleic Acids Research. 45, 158-169 (2017).
  25. Johnson, M., et al. NCBI BLAST: a better web interface. Nucleic Acids Research. 1 (36), 5-9 (2008).
  26. Fu, L., Niu, B., Zhu, Z., Wu, S., Li, W. CD-HIT: accelerated for clustering the next generation sequencing data. Bioinformatics. 28 (23), 3150-3152 (2012).
  27. Simão, F. A., Waterhouse, R. M., Ioannidis, P., Kriventseva, E. V., Zdobnov, E. M. BUSCO: assessing genome assembly and annotation completeness with single-copy orthologs. Bioinformatics. 31, 3210-3212 (2015).
  28. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics. 30, 2114-2120 (2014).
  29. Langmead, B., Salzberg, S. L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods. 9, 357-359 (2012).
  30. Li, H., et al. The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics. 25, 2078-2079 (2009).
  31. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biology. 15, 31 (2014).
  32. Rieu, I., Powers, S. J. Real-time quantitative RT-PCR: design, calculations, and statistics. Plant Cell. 21, 1031-1033 (2009).
  33. Malcolm, S. B. Chemical defence in chewing and sucking insect herbivores: plant-derived cardenolides in the monarch butterfly and oleander aphid. Chemoecology. 1, 12-21 (1990).
  34. Agrawal, A. A., Underwood, N., Stinchcombe, J. R. Intraspecific variation in the strength of density dependence in aphid populations. Ecological Entomology. 29, 521-526 (2004).
  35. Zehnder, C. B., Hunter, M. D. A comparison of maternal effects and current environment on vital rates of Aphis nerii, the milkweed-oleander aphid. Ecological Entomology. 32, 172-180 (2007).
  36. Hartbauer, M. Collective defense of Aphis nerii and Uroleucon hypochoeridis (Homoptera, Aphididae) against natural enemies. PLoS ONE. 5, 10417 (2010).

Play Video

Cite This Article
Birnbaum, S. S., Rinker, D. C., Abbot, P. Maintaining Biological Cultures and Measuring Gene Expression in Aphis nerii: A Non-model System for Plant-insect Interactions. J. Vis. Exp. (138), e58044, doi:10.3791/58044 (2018).

View Video