Hier presenteren we een protocol voor het genereren van insuline 3D lymfkliertest pancreatoids uit de alvleesklier progenitoren vrij zwevende e10.5 losgekoppeld en de bijbehorende mesenchym uitdrukken.
De alvleesklier is dat een complex orgaan samengesteld uit vele verschillende soorten cellen die samenwerken om bloed glucose homeostase en spijsvertering te regelen. Deze celtypen behoren enzym-afscheidende acinaire cellen, een arborized ductaal systeem verantwoordelijk voor het vervoer van enzymen aan de gut en hormoon-producerende endocriene cellen.
Endocriene beta-cellen zijn de enige celtype in het lichaam die insuline tot lagere niveaus van de glucose van het bloed. Diabetes, een ziekte die wordt gekenmerkt door het verlies of de disfunctie van de beta-cellen, is het bereiken van epidemische proporties. Het is dus essentieel om protocollen voor het onderzoek naar bèta-cel ontwikkeling die kan worden gebruikt voor screeningonderzoek voor het afleiden van de drug en cel-gebaseerde therapeutics. Terwijl het experimentele onderzoek van muis ontwikkeling essentieel is, zijn in vivo studies moeizaam en tijdrovend. Gekweekte cellen bieden een handiger platform voor screening; Nochtans, zijn zij niet in staat om de cellulaire diversiteit, architecturale organisatie en cellulaire interacties gevonden in vivo. Het is dus essentieel voor de ontwikkeling van nieuwe instrumenten voor het onderzoek naar alvleesklier organogenese en fysiologie.
Alvleesklier epitheliale cellen ontwikkelen in de nauwe samenwerking met mesenchym vanaf de aanvang van de organogenese als cellen organiseren en in de complexe, fysiologisch bevoegde volwassen orgel differentiëren. De alvleesklier mesenchym biedt belangrijke signalen voor de endocriene ontwikkeling, waarvan vele niet goed nog, dus moeilijk begrepen zijn te recapituleren tijdens de in vitro cultuur. Hier beschrijven we een protocol bij cultuur three-dimensional, cellulaire complexe muis organoids die mesenchym behouden, pancreatoids genoemd. De e10.5 lymfkliertest alvleesklier kiem is ontleed, losgekoppeld en gekweekt in een scaffold-vrije omgeving. Deze zwevende cellen monteren zelf met mesenchym onder omslag steken de ontwikkelende pancreatoid en een robuust aantal endocriene beta-cellen ontwikkelen en de acinaire cellen van de buis. Dit systeem kan worden gebruikt om te studeren van de cel lot vastberadenheid, structurele organisatie, en voedselproductie, cel-cel interactie tijdens organogenese, of voor de drug, klein molecuul of genetische screening.
De mechanismen van de normale ontwikkeling en de Fysiologie uitgezet is primordiaal te begrijpen van de etiologie van de ziekte en behandelingsmethoden uiteindelijk te cultiveren. Kweken en differentiatie van stamcellen maakt het snel en high-throughput analyse van de ontwikkeling, het wordt beperkt door de bestaande hoeveelheid kennis met betrekking tot de mechanismen tot regeling van de cel lot en kunstmatig recapituleert ontwikkeling in een relatief homogene, tweedimensionale staat1,2. Niet alleen biedt in vivo ontwikkeling beïnvloed door Extrinsieke invloeden, met verschillende soorten cellen in de niche en milieu paracrine signalen en organisatorische steun te loodsen organogenese, maar de functie van deze cellen beroept zich ook op hun omgeving voor begeleiding3,4,5. Gezien het belang van deze externe signalen, de beperkingen van differentiatie protocollen en het moeizame karakter van in vivo muismodellen, zijn nieuwe systemen nodig om de fundamentele ontwikkelings processen en fysiologie experimenteel te onderzoeken.
De opkomst van protocollen voor het genereren van driedimensionale, complexe organoids biedt een handige en congruent systeem om te studeren organogenese, fysiologie, drug werkzaamheid en zelfs pathogenese. Tot vaststelling van lymfkliertest organoids voor verschillende systemen zoals de maag6 en darm7 hebben ons begrip van de organogenese uitgebreid, die een tool om te bestuderen van ontwikkelingsstoornissen complexiteit met minder beperkingen dan in vivo bieden: en in vitro modellen. Vanwege deze vooruitgang in de lymfkliertest organoid formatie en de komst van menselijke pluripotente cellen, menselijke intestinale8, retinale9, renale10,11, en cerebrale12 organoids zijn vervaardigd, en dit repertoire wordt alleen beperkt door de bestaande kennis over de mechanismen van ontwikkeling.
Van bijzonder belang is de generatie van de alvleesklier organoids, zoals een groot aantal ziekten verschillende alvleesklier celtypes teistert, met inbegrip van acinaire cellen en leidingen in exocrine alvleesklier insufficiëntie13, acinaire cellen van pancreatitis14, en beta cellen in diabetes15. Verwerven van kennis met betrekking tot de ontwikkeling van deze verschillende soorten cellen zou helpen bij het begrijpen van hun pathologie en kan ook fungeren als een platform voor gepersonaliseerde drug screening of transplantatie. Eerder, Greggio et al. een methode ontwikkeld om lymfkliertest alvleesklier organoids die in vivo morfogenese recapituleren en ontwikkelen van georganiseerde, driedimensionale, complexe structuren, samengesteld uit alle belangrijke alvleesklier epitheliale cel maken 16,17soorten. Dit is een belangrijke stap voorwaarts in de alvleesklier veld, met name als maken cellen in vitro biologische onderzoek van bèta-cel ontwikkeling kunt inschakelen. Echter een schaarste van de endocriene cellen gevormd in dit protocol, tenzij de organoids waren in weefsel, waar de niche zou kunnen communiceren en bieden instructievideo signalen17getransplanteerd. Het mesenchym vormt het grootste gedeelte van de niche, zwaar onder omslag steken de ontwikkelende epitheel van de vroege stadia van de organogenese aan latere stadia, met inbegrip van endocriene delaminatie en differentiatie3,4, 18. De interactie van het mesenchym met de ontwikkelingslanden alvleesklier is nog een ander voorbeeld van Extrinsieke signalering en het belang van het behoud van in vivo cellulaire complexiteit te bestuderen van de organogenese.
Hier beschrijven we hoe te genereren van driedimensionale alvleesklier organoids, pancreatoids, van gedissocieerde e10.5 lymfkliertest alvleesklier progenitoren genoemd. Deze pancreatoids behouden van inheemse mesenchym, zelf monteren in zwevende voorwaarden en alle grote alvleesklier celtypes, met inbegrip van een robuust aantal endocriene beta cellen19genereren. Deze aanpak is geschikt voor de analyse van de ontwikkeling van het endocriene, zoals eerdere protocollen robuuste endocriene differentiatie ontbreken. Echter, met behulp van het protocol voor alvleesklier organoids zoals beschreven door Greggio et al. beter voor de analyse van de alvleesklier epitheliale vertakking en voedselproductie geschikt is, als vertakking beperkter is in pancreatoids.
De progressie van cel cultuur modellen is cruciaal voor goed model ontwikkelen, produceren klinisch relevante celtypes, test drug werkzaamheid of zelfs transplantatie aan patiënten. Echter kunstmatig Recapitulerend ontwikkeling in een schotel is een uitdaging zoals we zijn nog lang niet het begrip van de mechanismen van de organogenese en fysiologie in vivo. In vitro cellen zijn dus inefficiënt gegenereerde, niet volledig functioneel, kunnen worden gehandhaafd voor langere tijd, of haven van andere af…
The authors have nothing to disclose.
Wij danken Jolanta Chmielowiec voor nuttige discussie over het protocol en het manuscript. Wij danken ook Benjamin Arenkiel voor toegang tot de confocal microscoop. Dit werk werd gesteund door de NIH (P30-DK079638 naar M.B.) en T32HL092332-13 M.A.S. en M.B., de McNair medische Stichting (M.B.) en de confocal kern op de BCM intellectuele en ontwikkelingsstoornissen Research Center (NIH U54 HD083092 van de Eunice Kennedy Shriver nationale Instituut van kind gezondheid en menselijke ontwikkeling).
2-Mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M6250 | |
Aspirator Tube Assemblies for Calibrated Microcapillary Pipettes | Sigma-Aldrich | A5177 | |
BarnStead NanoPure Nuclease-free water | ThermoFisher | D119 | |
Borosilicate Capillary Tubes | Sutter Instruments | GB1007515 | O.D. 1mm, I.D. 0.75mm, 1.5cm length |
CaCl2 | Sigma-Aldrich | C5080 | |
Cell-Repellent 96-Well Microplate | Greiner Bio-One | 650970 | U-bottom |
Centrifuge 5424 R | Eppendorf | 5401000013 | |
Chloroform | Sigma-Aldrich | 233306 | |
Chromogranin-A antibody | Abcam | ab15160 | |
Compact, Modular Stereo Microscope M60 | Leica | ||
Countess Automated Cell Counter | Invitrogen | C10310 | |
Countess Cell Counter Slides | Invitrogen | C10312 | |
CryoStar NX70 | ThermoFisher | 957000L | |
D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G7528 | |
DAPI (4',6-Diamidine-2'-phenylindole-dihydrochloride) | Roche | 10 236 276 001 | Powder |
DBA antibody | Vector Lab | RL-1032 | |
Dispase II, Powder | Gibco | 17105041 | |
DMEM/F-12, HEPES | Gibco | 11330032 | |
Dnase I | Invitrogen | 18068-015 | |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11251-10 | 0.05 x 0.02 mm; Titanium; Biology tip |
EGF (Epidermal growth factor) | Sigma-Aldrich | E9644 | |
Ethanol, 200 Proof | Decon Laboratories | 2716 | |
Forma Steri Cycle CO2 Incubators | ThermoFisher | 370 | |
Fluoromount-G | Southern Biotech | OB10001 | |
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa | Sigma-Aldrich | H3149-10KU | |
INSM1 Antibody | Santa Cruz BioTechnology | sc-271408 | Polyclonal Mouse IgG |
Isopropanol | Fisher | a4164 | |
Isothesia Isoflurane, USP | Henry Schein | 11695-6776-2 | |
Insulin Antibody | Dako | A056401 | Polyclonal Guinea Pig |
KAPA SYBR FAST Universal | KAPA Biosystems | KK4618 | |
KCl | KaryoMax | 10575090 | |
KnockOut Serum Replacement | Invitrogen | 10828028 | |
Leica TCS SPE High-Resolution Spectral Confocal | Leica | ||
MgCl2 | Sigma-Aldrich | 442615 | |
Mouse C-Peptide ELISA | ALPCO | 80-CPTMS-E01 | |
Mouse Ultrasensitive Insulin ELISA | ALPCO | 80-INSMSU-E01 | |
MX35 Microtome Blades | ThermoFisher | 3052835 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | S7653 | |
NaHCO3 | Sigma-Aldrich | S3817 | |
NaH2PO4 | Sigma-Aldrich | ||
Normal Donkey Serum | Jackson Immuno Research | 017-000-121 | |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 158127 | |
PBS 1X | Corning | 21-040-CV | |
Pdx1 antibody | DSHB | F6A11 | Monoclonal Mouse MIgG1 |
Peel-A-Way Disposable Embedding Molds | VWR | 15160-157 | |
Penicillin-Streptomycin Solution | Corning | MT30002CI | |
PMA (Phorbol 12-Myristate 13-Acetate) | Sigma-Aldrich | P1585 | |
Protein LoBind Microcentrifuge Tubes | Eppendorf | 22431081 | 1.5mL Capacity |
Recombinant Human FGF-10 Protein | R&D Systems | 345-FG | |
Recombinant Human FGF-Acidic | Peprotech | 100-17A | |
Recombinant Human R-Spondin I Protein | R&D Systems | 4546-RS | |
BenchRocker 2D | Benchmark | BR2000 | |
Sucrose 500g | Sigma-Aldrich | S0389 | |
SuperFrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
Super Pap Pen | Electron Microscopy Sciences | 71310 | |
Thermomixer R | Eppendorf | 05-412-401 | |
Tissue Tek O.C.T. Compound | Sakura | 4583 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | |
TRIzol Reagent | Invitrogen | 15596018 | |
TrypLE Express | Invitrogen | 12604039 | (1x), no Phenol Red |
Trypan Blue Stain | Invitrogen | 15250061 | For cell counting slides |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Corning | 25-052-CI | |
Trypsin-EDTA (0.25%) | Gibco | 25200072 | Phenol Red |
Ultra-Low Attachment 24-Well Plate | Corning | 3473 | |
Ultra-Low Attachment Spheroid Plate 96-Well | Corning | 4520 | |
Vimentin Antibody | EMD Millipore | AB5733 | Polyclonal Chicken IgY |
Vortex Genie | BioExpres | S-7350-1 | |
Y-27632 Dihydrochloride | R&D Systems | 1254 | Also known as ROCK inhibitor |
Zeiss 710 Confocal Microscope | Zeiss |