Summary

Análisis de la afluencia del calcio mitocondrial en las mitocondrias aisladas y células cultivadas

Published: April 27, 2018
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Summary

Aquí, presentamos dos protocolos para la medición de mitocondrial Ca2 + afluencia en mitocondrias aisladas y células cultivadas. Para mitocondrias aisladas, detallamos una placa base de lector Ca2 + importación de ensayo utilizando el Ca2 + sensible tinte verde-5N de calcio. Para las células cultivadas, se describe un método de microscopia confocal con el Ca2 + tinte Rhod-2/AM.

Abstract

CA2 + por las mitocondrias es una función crítica, regulación de procesos fisiológicos y patofisiológicos en un amplio espectro de células. La capacidad para medir con precisión el influjo y eflujo de Ca2 + de las mitocondrias es importante para determinar el papel de mitocondrial Ca2 + en estos procesos. En este informe, presentamos dos métodos para la medición de mitocondrial Ca2 + manejo en mitocondrias aisladas y células cultivadas. Primero detallamos una placa lector plataforma para medir mitocondrial Ca2 + absorción utilizando el Ca2 + tinte sensible calcio verde-5N. El formato de placa base de lector evita la necesidad de equipos especializados, y el tinte verde-5N de calcio es ideal para la medición de Ca2 + de las mitocondrias del tejido aislado. Para nuestra aplicación, describimos la medida capta el Ca2 + mitocondrial en mitocondrias aisladas de tejido de corazón de ratón; sin embargo, este procedimiento puede aplicarse para medir mitocondrial absorción de Ca2 + en la mitocondria aislada de otros tejidos como hígado, músculo esquelético y cerebro. En segundo lugar, describimos un análisis basado en la microscopía confocal para medición de mitocondrial Ca2 + en células permeabilized con el Ca2 + sensible tinte Rhod-2/AM y proyección de imagen usando microscopía de escaneo láser 2 dimensiones. Este protocolo de permeabilización elimina la contaminación citosólica de tinte, que permiten grabación específica de cambios mitocondriales Ca2 +. Por otra parte, microscopía de escaneo láser permite velocidades de fotogramas alta capturar cambios rápidos de mitocondrial Ca2 + en respuesta a diferentes drogas o reactivos aplicados en la solución externa. Este protocolo se puede aplicar para medir mitocondrial Ca2 + absorción en muchos tipos de células incluyendo células primarias como las neuronas y miocitos cardiacos y líneas celulares inmortalizadas.

Introduction

Las mitocondrias son sitios críticos de almacenamiento de Ca2 + intracelular y la señalización. Décadas de investigación han demostrado que las mitocondrias tienen la capacidad de importar y el secuestro de Ca2 + 1,2. Las mitocondrias, sin embargo, no son meramente pasivos sitios de almacenamiento de Ca2 + . CA2 + en el compartimiento mitocondrial realiza funciones de señalización fundamentales incluyendo la regulación de la producción metabólica y la activación de las vías de muerte celular mitocondrial mediado, que ha sido previamente revisado3. Para la regulación metabólica, Ca2 + aumenta la actividad de Deshidrogenasas matriz localizada tres del ciclo del ácido tricarboxílico, así como complejos de la cadena respiratoria, para aumentar la producción de energía mitocondrial4,5 . Con sobrecarga de Ca2 + mitocondrial y altera mitocondrial Ca2 + manejo, Ca2 + activa transición de permeabilidad mitocondrial poro abierto (MPTP), llevando a permeabilización de la membrana interna mitocondrial, pérdida potencial de la membrana, la disfunción mitocondrial, inflamación, ruptura y en última instancia, la célula muerte6,7,8,9. Por lo tanto, Ca2 + señalización mitocondrial impacta directamente la vida celular y vías de la muerte a través de control metabólico y eje de MPTP a la muerte.

En los últimos años, allí ha sido expandiendo rápidamente interés en el estudio de Ca2 + dinámica mitocondrial debido en gran parte a la identificación de los componentes moleculares de la Ca2 + uniporter mitocondrial complejo, un interior mitocondrial importación de transportador de membrana que es un modo primario de Ca2 + en la matriz mitocondrial 10,11,12. Identificación de estas subunidades estructurales y reguladoras de la uniporter ha traído la posibilidad de apuntar genético mitocondrial Ca2 + afluencia para modulan la función mitocondrial y la disfunción y facilitó el estudio de la contribución de la uniporter complejo mitocondrial Ca2 + afluencia a enfermedad13,14,15. De hecho, Ca2 + señalización mitocondrial se ha implicado en las patologías de una gran variedad de enfermedades que van desde la enfermedad cardiaca y neurodegeneración, cáncer16,17,18, 19,20.

Dada la importancia fundamental de mitocondrial Ca2 + en el metabolismo y muerte celular y combinado con el amplio alcance de los sistemas biológicos Ca2 + señalización mitocondrial impactos, métodos para evaluar la Ca mitocondrial2 + afluencia son de gran interés. No en vano, se han desarrollado una variedad de técnicas y herramientas para medir mitocondrial Ca2 + . Estos incluyen métodos que utilizan herramientas tales como fluorescente Ca2 +-tintes sensibles21,22 y genéticamente codificado Ca2 + sensores orientados a la mitocondria, como el cameleon y aequorin23, 24. El objetivo de este artículo es destacar diferentes métodos y sistemas de modelo en el que se puede medir la absorción de Ca2 + mitocondrial. Presentamos dos métodos experimentales para evaluar mitocondrial Ca2 + afluencia capacidad. Utilizando mitocondrias cardiacas como ejemplo, detallamos una placa lector plataforma para medir mitocondrial Ca2 + absorción utilizando el Ca2 + sensible tinte verde-5N de calcio que es ideal para las mitocondrias aisladas de tejidos14 . Uso de las células 3T3 NIH cultivadas, también Describimos un análisis de basado en la proyección de imagen de microscopía confocal para medición de mitocondrial Ca2 + en células permeabilized con el Ca2 + sensible tinte Rhod-2/AM25.

Protocol

Todos los métodos descritos en este protocolo han sido aprobados por el cuidado de Animal institucional y Comité de uso de la Universidad de Emory. Nota: La primera parte es el procedimiento experimental para medir mitocondrial Ca2 + entrada en la mitocondria cardiaca aislada usando un lector de placas. 1. los reactivos y soluciones Tomar 500 mL de buffer EGTA MS para aislamiento mitocondrial: manitol de 225 mM, 75 mM sacarosa, ácido-(2-hydro…

Representative Results

La figura 1 muestra mitocondrial Ca2 + mediciones de absorción en la mitocondria cardiaca aislada utilizando la plataforma de placa base de lector y el Ca2 + calcio verde-5N del tinte. Bajo condiciones de control (figura 1A), mitocondria cardiaca fueron suspendida en tampón de KCl que contiene calcio verde-5N y luego desafiado con pulsos secuenciales de CaCl2 (5 μL de una solución de CaCl…

Discussion

Aquí, describimos a dos enfoques diferentes para medir mitocondrial Ca2 + afluencia. Placa lector basado en calcio verde-5N método monitores extramitochondrial Ca2 + niveles y es un Ca2 + absorción ensayo que es ideal para mediciones en mitocondrias aisladas. Aunque hemos mostrado resultados representativos de aislados murino mitocondria cardiaca, este ensayo puede ser fácilmente adaptado para las mitocondrias aisladas de tejidos con alta abundancia mitocondrial incluyendo hígado, m?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue financiado por donaciones de fondos de la Asociación Americana del corazón (J.Q.K.).

Materials

Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope Olympus FV1000
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors Biotek
Tissue Homogenizer Kimble 886000-0022
22 x 22 mm coverslips Corning 2850-22
96 well plate Corning 3628
6 well plate Corning 3506
Calcium Green-5N Invitrogen C3737
MitoTracker green FM Invitrogen M7514
Rhod-2, AM Invitrogen R1244
DMSO Invitrogen D12345
Pluronic F-127 Invitrogen P3000MP
D-Mannitol Sigma M9546
Sucrose EMD Millipore 8510
HEPES Sigma H3375
EGTA Sigma E8145
Potassium chloride Fisher BP366-500
Potassium phosphate monobasic Sigma P0662
Magnesium chloride Sigma M2670
Sodium pyruvate Sigma P2256
L-malic acid Sigma M1125
Calcium chloride Sigma C4901
Potassium acetate Fisher BP364-500
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt Sigma A9187
Phosphocreatine disodium salt Sigma P7936
Saponin Sigma S7900
Ru360 Calbiochem 557440

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Maxwell, J. T., Tsai, C., Mohiuddin, T. A., Kwong, J. Q. Analyses of Mitochondrial Calcium Influx in Isolated Mitochondria and Cultured Cells. J. Vis. Exp. (134), e57225, doi:10.3791/57225 (2018).

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