Qui, presentiamo due protocolli per la misurazione dell’afflusso Ca2 + mitocondriale in mitocondri isolati e cellule coltivate. Per mitocondri isolati, dettagliamo un piatto basato su lettore Ca2 + importazione analisi usando il Ca2 + sensibili tingere del calcio verde-5N. Per le cellule coltivate, descriviamo un metodo di microscopia confocale utilizzando il Ca2 + colorante Rhod-2/AM.
CA2 + gestione dai mitocondri è una funzione critica che regolano processi sia fisiologici e fisiopatologici in un ampio spettro di cellule. La capacità di misurare con precisione l’afflusso e l’efflusso di Ca2 + dai mitocondri è importante per determinare il ruolo di mitocondriale Ca2 + gestione in questi processi. In questo rapporto, presentiamo due metodi per la misura di mitocondriale Ca2 + gestione in mitocondri isolati sia in cellule coltivate. Dettagliamo in primo luogo una piattaforma di basata su lettore di piastra per la misurazione mitocondriale Ca2 + assorbimento utilizzando il Ca2 + colorante sensibile del calcio verde-5N. Il formato basato su lettore di piastra elude la necessità di attrezzature specializzate, e la tintura di calcio verde-5N è adatta idealmente per misura Ca2 + dai mitocondri del tessuto isolato. Per la nostra applicazione, descriviamo la misurazione del mitocondriale Ca2 + assorbimento in mitocondri isolati dal tessuto del cuore del mouse; Tuttavia, questa procedura può essere applicata per misurare mitocondriale Ca2 + assorbimento in mitocondri isolati da altri tessuti quali fegato, muscolo scheletrico e cervello. In secondo luogo, descriviamo un saggio basato su microscopia confocale per misura di mitocondriale Ca2 + in celle permeabilized utilizzando il Ca2 + sensibile colorante Rhod-2/AM e imaging utilizzando la microscopia a scansione laser 2-dimensionale. Questo protocollo di permeabilizzazione Elimina la contaminazione di tintura citosolico, consentendo la registrazione specifica di cambiamenti in mitocondriale Ca2 +. Inoltre, microscopia a scansione laser permette un’alta frequenza di catturare rapidi cambiamenti di mitocondriale Ca2 + in risposta a diversi farmaci o reagenti applicati nella soluzione esterna. Questo protocollo può essere applicato per misurare mitocondriale Ca2 + assorbimento in molti tipi cellulari tra cui cellule primarie quali miociti cardiaci e neuroni e linee cellulari immortalizzate.
I mitocondri sono siti critici di intracellulare Ca2 + deposito e segnalazione. Decenni di ricerche hanno dimostrato che i mitocondri hanno la capacità di importare e sequestrare il Ca2 + 1,2. Mitocondri, tuttavia, non sono meramente passive siti diCa 2 + storage. CA2 + presso il compartimento mitocondriale svolge funzioni di segnalazione fondamentali tra cui la regolazione della produzione metabolica e l’attivazione delle vie di morte mitocondriale-mediata delle cellule, che è stata esaminata in precedenza3. Per la regolazione metabolica, Ca2 + migliora l’attività di tre deidrogenasi localizzato matrice del ciclo dell’acido tricarbossilico, nonché complessi della catena respiratoria, per aumentare la produzione di energia mitocondriale4,5 . Con sovraccarico mitocondriale di Ca2 + e dysregulated mitocondriale Ca2 + movimentazione, transizione di permeabilità mitocondriale di Ca2 + trigger poro apertura (MPTP), che conduceva ad permeabilizzazione della membrana mitocondriale interna, perdita potenziale di membrana, la disfunzione mitocondriale, gonfiore, rottura e in ultima analisi, delle cellule morte6,7,8,9. Così, mitocondriale di Ca2 + segnalazione direttamente influisce sia vita cellulare e le vie di morte attraverso controllo metabolico e asse di MPTP-morte.
Negli ultimi anni, c’è stato rapidamente in espansione interesse per lo studio della mitocondriale Ca2 + dinamica dovuta in gran parte per l’identificazione dei costituenti molecolari del Ca2 + uniporter mitocondriale complesso, un’interna mitocondriale trasportatore di membrana che è una modalità primaria di Ca2 + importare nella matrice mitocondriale 10,11,12. Identificazione di queste subunità strutturali e regolamentari del uniporter ha portato avanti la possibilità di targeting geneticamente afflusso Ca2 + mitocondriale per modulare la funzione mitocondriale e disfunzione e facilitato lo studio della contributo dell’uniporter complesso e mitocondriale Ca2 + afflusso a malattia13,14,15. Infatti, Ca2 + segnalazione mitocondriale è stata implicata nelle patologie di una vasta gamma di malattie che variano dalla malattia cardiaca alla neurodegenerazione e cancro16,17,18, 19,20.
Data l’importanza fondamentale di mitocondriale Ca2 + segnalazione nella morte delle cellule e del metabolismo e combinata con la vasta portata dei sistemi biologici che mitocondriale di Ca2 + segnalazione impatti, metodi di valutazione mitocondriale Ca2 + afflusso sono di grande interesse. Non sorprendentemente, sono stati sviluppati una varietà di tecniche e strumenti per misurare mitocondriale Ca2 + . Questi includono metodi che utilizzano strumenti quali fluorescente Ca2 +-coloranti sensibili21,22 e geneticamente codificato Ca2 + sensori mirati ai mitocondri, come cameleon ed equorina23, 24. L’obiettivo di questo articolo è quello di evidenziare diversi metodi e sistemi di modello in cui mitocondriale Ca2 + l’assorbimento può essere misurato. Presentiamo due metodi sperimentali per valutare la capacità mitocondriale Ca2 + afflusso. Utilizzando i mitocondri cardiaci come esempio, dettagliamo una piattaforma basata su lettore di piastra per la misurazione mitocondriale Ca2 + assorbimento utilizzando il Ca2 + sensibili tinta del calcio verde-5N che è adatto idealmente per i mitocondri del tessuto isolato14 . Utilizzando cellule in coltura NIH 3T3, descriviamo anche un saggio di basati su formazione immagine di microscopia confocale per misura di mitocondriale Ca2 + in celle permeabilized utilizzando il Ca2 + sensibile colorante Rhod-2/AM25.
Qui, descriviamo due diversi approcci per misurare mitocondriale afflusso di Ca2 + . La piastra lettore-basato del calcio verde-5N Metodo Monitor extramitochondrial Ca2 + livelli ed è una Ca2 + analisi di assorbimento che è ben adatta per le misurazioni in mitocondri isolati. Mentre abbiamo dimostrato risultati rappresentativi da mitocondri cardiaci murini isolati, questo test può essere facilmente adattato per i mitocondri isolati dai tessuti con alta abbondanza mitocondriale compreso…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato supportato da concedere finanziamenti dall’associazione americana di cuore (J.Q.K.).
Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope | Olympus | FV1000 | |
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors | Biotek | ||
Tissue Homogenizer | Kimble | 886000-0022 | |
22 x 22 mm coverslips | Corning | 2850-22 | |
96 well plate | Corning | 3628 | |
6 well plate | Corning | 3506 | |
Calcium Green-5N | Invitrogen | C3737 | |
MitoTracker green FM | Invitrogen | M7514 | |
Rhod-2, AM | Invitrogen | R1244 | |
DMSO | Invitrogen | D12345 | |
Pluronic F-127 | Invitrogen | P3000MP | |
D-Mannitol | Sigma | M9546 | |
Sucrose | EMD Millipore | 8510 | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
EGTA | Sigma | E8145 | |
Potassium chloride | Fisher | BP366-500 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma | P0662 | |
Magnesium chloride | Sigma | M2670 | |
Sodium pyruvate | Sigma | P2256 | |
L-malic acid | Sigma | M1125 | |
Calcium chloride | Sigma | C4901 | |
Potassium acetate | Fisher | BP364-500 | |
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt | Sigma | A9187 | |
Phosphocreatine disodium salt | Sigma | P7936 | |
Saponin | Sigma | S7900 | |
Ru360 | Calbiochem | 557440 |