Summary

Analyses des Influx de Calcium mitochondrique dans les mitochondries isolées et des cellules

Published: April 27, 2018
doi:

Summary

Nous présentons ici deux protocoles pour mesurer des influx mitochondriale de Ca2 + dans les mitochondries isolées et des cellules. Pour les mitochondries isolées, nous détaillons une plaque base lecteur Ca2 + importation de dosage à l’aide du Ca2 + sensibles teindre calcium vert-5N. Pour les cellules cultivées, on décrit une méthode de microscopie confocale en utilisant le Ca2 + colorant Rhod-2/AM.

Abstract

Ca2 + manipulation de mitochondries est une fonction critique, régulation des processus physiologiques et physiopathologiques dans un large éventail de cellules. La capacité de mesurer avec précision l’influx et l’efflux de Ca2 + des mitochondries est importante pour la détermination du rôle des mitochondries Ca2 + manipulation dans ces processus. Dans ce rapport, nous présentons deux méthodes pour la mesure des mitochondries Ca2 + manipulation dans les mitochondries isolées et les cellules cultivées. Nous détaillons tout d’abord une plate-forme lecteur plaque pour mesurer mitochondriale absorption de Ca2 + à l’aide dela Ca 2 + colorant photosensible calcium vert-5N. Le format lecteur plaque contourne le besoin d’équipement spécialisé, et le colorant vert-5N de calcium est parfaitement adapté pour mesurer Ca2 + des mitochondries de tissus isolés. Pour notre application, nous décrivons la mesure de l’absorption2 + Ca mitochondriale dans les mitochondries isolées du tissu cardiaque de souris ; Toutefois, cette procédure peut être appliquée pour mesurer l’absorption2 + Ca mitochondriale dans les mitochondries isolées provenant d’autres tissus tels que le foie, le muscle squelettique et le cerveau. Deuxièmement, nous décrivons un essai microscopie confocal pour mesure de mitochondrial Ca2 + dans les cellules perméabilisées aide le Ca2 + colorant photosensible Rhod-2/h et d’imagerie à l’aide de la microscopie à balayage laser 2 dimensions. Ce protocole perméabilisation élimine la contamination colorant cytosolique, permettant une inscription spécifique des changements dans les mitochondries Ca2 +. En outre, microscopie à balayage laser permet des cadences élevées capturer des changements rapides dans les mitochondries Ca2 + en réponse à divers médicaments ou réactifs appliqués dans la solution externe. Ce protocole peut être appliqué pour mesurer l’absorption2 + Ca mitochondriale dans plusieurs types de cellules dont les cellules primaires comme les myocytes cardiaques et les neurones et lignées cellulaires immortalisées.

Introduction

Les mitochondries sont des sites critiques de Ca2 + stockage intracellulaire et la signalisation. Des décennies de recherches ont montré que les mitochondries ont la possibilité d’importer et de séquestrer Ca2 + 1,2. Mitochondries, cependant, ne sont pas des sites purement passives de Ca2 + stockage. Ca2 + dans le compartiment mitochondrial effectue des fonctions de signalisation fondamentales y compris la régulation de la production métabolique et l’activation de voies de mort cellulaire mitochondriale, qui a été examiné précédemment3. Pour la régulation du métabolisme, Ca2 + améliore l’activité des trois déshydrogénases matrice localisée de l’acide tricarboxylique, mais aussi les complexes de la chaîne respiratoire, d’augmenter mitochondrial energy production4,5 . Avec surcharge mitochondriale de Ca2 + et la dysrégulation mitochondrial Ca2 + manipulation, Ca2 + déclencheurs perméabilité mitochondriale transition pore ouverture (MPTP), conduisant à la perméabilisation de la membrane interne mitochondriale, perte potentielle de membrane, dysfonctionnement mitochondrial, gonflement, se rompre et de cellules en fin de compte, mort6,7,8,9. Ainsi, Ca2 + signalisation mitochondrial a un impact direct fois vie cellulaire et les voies de la mort à travers le contrôle métabolique et axe de MPTP-mort.

Ces dernières années, il s’est rapidement développée intérêt dans l’étude de Ca2 + dynamique mitochondriale due en grande partie à l’identification des constituants moléculaires de la complexe mitochondrique Ca2 + Uniport, un interne mitochondriale transporteur membranaire qui est un mode primaire de Ca2 + importer dans la matrice mitochondriale 10,11,12. Identification de ces sous-unités structurelles et réglementaires de l’Uniport a fait naître la possibilité de ciblage génétiquement des influx mitochondriale de Ca2 + pour moduler la fonction mitochondriale et dysfonction et facilité l’étude de la contribution de l’Uniport complexe et mitochondrial Ca2 + afflux de maladie13,14,15. En effet, Ca2 + signalisation mitochondriale a été impliquée dans les pathologies d’un large éventail de maladies allant de maladie cardiaque à la neurodégénérescence et cancer16,17,18, 19,20.

Étant donné l’importance fondamentale des mitochondries Ca2 + signalisation dans le métabolisme et la mort cellulaire et combinée avec la large portée des systèmes biologiques que Ca2 + signalisation mitochondrial impacts, méthodes d’évaluation Ca mitochondrial2 + afflux sont d’un grand intérêt. Il n’est pas surprenant, une variété de techniques et d’outils pour mesurer mitochondrial Ca2 + ont été développés. Il s’agit de méthodes qui utilisent des outils tels que fluorescent Ca2 +-colorants sensibles21,22 et codé génétiquement Ca2 + capteurs ciblées vers les mitochondries, comme cameleon et aequorine23, 24. L’objectif de cet article est de mettre en évidence les différentes méthodes et systèmes de modèles dans lequel capture2 + Ca mitochondriale peut être mesurée. Nous présentons deux méthodes expérimentales pour évaluer la capacité afflux de mitochondrial Ca2 + . À l’aide de mitochondries cardiaques à titre d’exemple, nous détaillons une plateforme axée sur le lecteur de plaque pour mesurer mitochondrial Ca2 + absorption à l’aide du Ca2 + sensibles teindre calcium vert-5N qui convient parfaitement aux mitochondries isolées de tissus14 . En utilisant des cellules 3 t 3 de NIH, nous décrivons également un test d’imagerie microscopie confocale pour mesure de mitochondrial Ca2 + dans les cellules perméabilisées utilisant le Ca2 + colorant photosensible Rhod-2/AM25.

Protocol

Toutes les méthodes décrites dans le présent protocole ont été approuvés par le Comité de l’Université Emory d’utilisation et d’institutionnels animalier. Remarque : La première partie est la procédure expérimentale pour mesurer des influx mitochondriale de Ca2 + dans les mitochondries cardiaques isolées à l’aide d’un lecteur. 1. les réactifs et Solutions Faire 500 mL de tampon de MS-EGTA pour isolement mitochondriale :…

Representative Results

La figure 1 illustre mitochondrial Ca2 + mesures d’absorption dans les mitochondries cardiaques isolés à l’aide de la plateforme axée sur le lecteur de plaque et le Ca2 + colorant vert-5N de calcium. Dans des conditions témoins (Figure 1 a), mitochondries cardiaques ont été suspendues dans un tampon de KCl contenant calcium vert-5N et ensuite contestés avec des impulsions séquentielles de CaCl<su…

Discussion

Nous décrivons ici deux approches différentes pour mesurer des influx de Ca2 + mitochondriale. La plaque calcium axée sur le lecteur vert-5N méthode moniteurs extramitochondrial Ca2 + niveaux et est un Ca2 + absorption test qui est utilisé pour des mesures dans les mitochondries isolées. Alors que nous avons montré des résultats représentatifs des mitochondries cardiaques murins isolés, ce test peut être facilement adapté pour les mitochondries isolées de tissus avec grande a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la subvention de l’Association américaine de coeur (J.Q.K.).

Materials

Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope Olympus FV1000
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors Biotek
Tissue Homogenizer Kimble 886000-0022
22 x 22 mm coverslips Corning 2850-22
96 well plate Corning 3628
6 well plate Corning 3506
Calcium Green-5N Invitrogen C3737
MitoTracker green FM Invitrogen M7514
Rhod-2, AM Invitrogen R1244
DMSO Invitrogen D12345
Pluronic F-127 Invitrogen P3000MP
D-Mannitol Sigma M9546
Sucrose EMD Millipore 8510
HEPES Sigma H3375
EGTA Sigma E8145
Potassium chloride Fisher BP366-500
Potassium phosphate monobasic Sigma P0662
Magnesium chloride Sigma M2670
Sodium pyruvate Sigma P2256
L-malic acid Sigma M1125
Calcium chloride Sigma C4901
Potassium acetate Fisher BP364-500
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt Sigma A9187
Phosphocreatine disodium salt Sigma P7936
Saponin Sigma S7900
Ru360 Calbiochem 557440

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Maxwell, J. T., Tsai, C., Mohiuddin, T. A., Kwong, J. Q. Analyses of Mitochondrial Calcium Influx in Isolated Mitochondria and Cultured Cells. J. Vis. Exp. (134), e57225, doi:10.3791/57225 (2018).

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