在这里, 我们提出两个协议, 以测量线粒体 Ca2 +流入孤立的线粒体和培养细胞。对于孤立的线粒体, 我们使用 ca2 +敏感染料钙 green-5N, 详细介绍了一个基于板读取器的 ca2 +导入分析。对于培养细胞, 我们使用 Ca2 +染料 Rhod-2/AM 描述了共焦显微方法。
由线粒体处理的 Ca2 +是调节广泛细胞中生理和病理过程的关键功能。准确测量来自线粒体的 ca2 +的流入和流出的能力对于确定线粒体 ca2 +处理在这些进程中的作用非常重要。在本报告中, 我们提出两种方法来测量线粒体 Ca2 +处理在孤立的线粒体和培养细胞。我们首先详细介绍了一个基于平板阅读器的测量线粒体 ca2 +吸收使用 Ca2 +敏感染料钙 green-5N 的平台。基于平板阅读器的格式绕过了对专用设备的需要, 而钙 green-5N 染料非常适合于从分离的组织线粒体中测量 Ca2 + 。对于我们的应用, 我们描述的测量线粒体 Ca2 +吸收线粒体从小鼠心脏组织分离;但是, 此过程可用于测量线粒体 Ca2 +在与其他组织 (如肝脏、骨骼肌肉和大脑) 隔绝的线粒体中摄取量。其次, 我们描述了以共焦显微镜为基础的检测透细胞线粒体 ca2 +使用 Ca2 +敏感染料 Rhod-2/AM 和成像使用2维激光扫描显微术。此通透协议消除了胞浆染料污染, 允许对线粒体 Ca2 +中的变化进行特定记录。此外, 激光扫描显微镜允许高帧率捕获线粒体 Ca2 +的快速变化, 以应对在外部溶液中应用的各种药物或试剂。此协议可用于测量线粒体 Ca2 +在许多细胞类型中的吸收, 包括主要细胞, 如心肌细胞和神经元, 以及永生化细胞系。
线粒体是胞内 Ca2 +存储和信号传递的关键站点。数十年的研究表明, 线粒体有能力导入和隔离 Ca2 + 1,2。但是, 线粒体不仅仅是 Ca2 +存储的被动站点。在线粒体隔间的 Ca2 +执行基本信号功能, 包括调节代谢输出和激活线粒体介导的细胞死亡通路, 此前已对3进行了回顾。对于代谢调节, Ca2 +增强了 tricarboxylic 酸循环和呼吸链复合体的三基质局部化脱氢酶的活性, 以增加线粒体能量生产 4, 5.与线粒体 ca2 +过载和失调线粒体 ca2 +处理, Ca2 +触发线粒体通透性过渡孔 (MPTP) 开放, 导致线粒体内膜通透,膜电位损失, 线粒体功能障碍, 肿胀, 破裂最终, 细胞死亡6,7,8,9。因此, 线粒体 Ca2 +信号直接影响细胞生命和死亡通路通过新陈代谢控制和 MPTP 死亡轴。
近年来, 对线粒体 ca2 +动力学研究的兴趣迅速扩大, 大部分原因是线粒体 ca2 + uniporter 复合体的分子成分的鉴定, 线粒体内作为 Ca2 +的主要模式的膜传送器导入到线粒体矩阵10,11,12。uniporter 的这些结构和调控亚基的鉴定提出了基因靶向线粒体 Ca2 +流入调节线粒体功能和功能障碍的可能性, 并促进了研究uniporter 复合体和线粒体 Ca 的贡献2 +流入疾病13,14,15。事实上, 线粒体 Ca2 +信号已牵连到多种疾病的病理, 从心脏病到变性, 癌症16,17,18, 19,20。
考虑到线粒体 ca2 +信号在新陈代谢和细胞死亡中的根本重要性, 并结合线粒体 ca2 +信号影响的生物系统的广泛范围, 评估线粒体 ca2 + 的方法涌入是非常有趣的。毫不奇怪, 测量线粒体 Ca2 +的各种技术和工具已经开发出来。这些方法包括使用荧光 Ca2 +敏感染料21、22和基因编码的 Ca2 +传感器 (如 cameleon 和 aequorin23) 等工具, 24。本文的目的是突出显示可测量线粒体 Ca2 +吸收的不同方法和模型系统。我们提出两种实验方法来评估线粒体 Ca2 +涌入容量。以心肌线粒体为例, 我们详细介绍了一个基于平板阅读器的测量线粒体 ca2 +摄取量的平台, 使用 Ca2 +敏感染料钙 green-5N, 最适合于孤立的组织线粒体14.利用培养的 NIH 3T3 细胞, 我们还描述了一种基于共焦显微成像的检测方法, 用于测量透细胞中线粒体 Ca2 + , 使用 Ca2 +敏感染料 Rhod-2/AM25。
在这里, 我们描述了两种测量线粒体 Ca2 +流入的方法。基于印版阅读器的钙 green-5N 方法监视 extramitochondrial ca2 +级别, 是一个 ca2 +摄取分析, 非常适合在孤立的线粒体中测量。虽然我们已经显示了来自孤立小鼠心肌线粒体的代表性结果, 但这种检测方法可以很容易地适应线粒体丰富的组织线粒体, 包括肝脏、骨骼肌肉和大脑。此外, 对于传统用于 Ca2 +测量 (如 fluorometers…
The authors have nothing to disclose.
这项工作得到了美国心脏协会 (J.Q.K.) 的赠款资助。
Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope | Olympus | FV1000 | |
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors | Biotek | ||
Tissue Homogenizer | Kimble | 886000-0022 | |
22 x 22 mm coverslips | Corning | 2850-22 | |
96 well plate | Corning | 3628 | |
6 well plate | Corning | 3506 | |
Calcium Green-5N | Invitrogen | C3737 | |
MitoTracker green FM | Invitrogen | M7514 | |
Rhod-2, AM | Invitrogen | R1244 | |
DMSO | Invitrogen | D12345 | |
Pluronic F-127 | Invitrogen | P3000MP | |
D-Mannitol | Sigma | M9546 | |
Sucrose | EMD Millipore | 8510 | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
EGTA | Sigma | E8145 | |
Potassium chloride | Fisher | BP366-500 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma | P0662 | |
Magnesium chloride | Sigma | M2670 | |
Sodium pyruvate | Sigma | P2256 | |
L-malic acid | Sigma | M1125 | |
Calcium chloride | Sigma | C4901 | |
Potassium acetate | Fisher | BP364-500 | |
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt | Sigma | A9187 | |
Phosphocreatine disodium salt | Sigma | P7936 | |
Saponin | Sigma | S7900 | |
Ru360 | Calbiochem | 557440 |