Мы представляем протокол с помощью микроскопии интереса одновременно изображение актина структур, микротрубочки и микротрубочек плюс конец связывания белков в клетках B, которые распространились на coverslips покрытием с антителами к B-клеточный рецептор, модель для начального этапа формирования иммунной синапса.
B-клеток, которые связывают мембраны прыгните антигены (например, на поверхности антиген представляющих клеток) образуют иммунной синапса, специализированные клеточную структуру, которая оптимизирует B-клеточной сигнализации рецептора (BCR) и приобретение BCR-опосредованной антигена. Ремоделирование Цитоскелет актина и переориентации микротрубочек сети к антигена контакт сайта имеют важное значение для формирования иммунной синапса. Ремоделирование Цитоскелет актина в плотной периферийное кольцо F-актина сопровождается поляризации микротрубочек Организация центра к иммунной синапсе. Микротрубочки плюс конец связывания белков, а также белки корковых плюс конец захвата посредником физических взаимодействий между актина и микротрубочек cytoskeletons, которые позволяют им быть реорганизована на скоординированной основе. Изучение механизмов управления, которую этот цитоскелета реорганизации, а также понять как эти цитоскелета структуры формы формирования иммунной синапса и BCR сигнализации, может обеспечить новое понимание активации B клеток. Это способствовало разработке суперразрешением микроскопии подходов, которые показывают новые детали цитоскелета сети Организации. Здесь мы описываем метод с помощью микроскопии простимулированное излучение истощения (интереса) одновременно изображение актина структур, микротрубочки и transfected GFP-тегами микротрубочек плюс конец связывания белков в клетках B. Модель раннего события в формировании иммунитета синапса, мы позволяем клетки B распространить на coverslips покрытием с anti-иммуноглобулина (анти Ig) антител, которые инициируют BCR сигнализации и модернизация цитоскелета. Мы предоставляем пошаговые протоколы для выражения GFP синтез белков в клетках A20 B-лимфомы, за распространение анти Ig индуцированной клеток и для фиксации последующие ячейки, иммуноокрашивания, получение изображения и изображения деконволюция шаги. Изображения с высоким разрешением, полученных с помощью этих процедур позволяют одновременно визуализировать актина структуры, микротрубочки и микротрубочек плюс конец связывающих белков, которые могут связать эти две сети цитоскелета.
Когда клетки B связать поляризованных массивы антигенов (например, отображаются на поверхности антиген представляя клетки (АПК)), полученный B-клеточный рецептор (BCR) сигнализации диски, формирование структуры классический иммунной синапса, который был впервые описано в T клетки1,2,3,4,5,6,,78,9,10, 11,12,13. Первоначально microclusters формы БКРС антиген прыгните на периферии клетки B: APC связаться с сайта. Эти microclusters затем двигаться в направлении центра антигена контакт сайта, где они сливаются в Центральной супрамолекулярные активации кластер (cSMAC), который образует ядро иммунной синапса. Формирование иммунной синапса оптимизирует BCR сигнализации и облегчает извлечение BCR-опосредованной антигена APC мембраны14. Это приобретение антиген, который следуют интернализации BCR-опосредованной антигена и обработки последующих антигена, позволяет клетки B представить пептида: MHC II комплексов для Т-клетки и вызывают Т-клеток помощь14. Потому что формирование иммунной синапса способствует активации клеток B, определить механизмы, которые устанавливают этот функциональный шаблон Организации рецептор может обеспечить новое понимание как гуморального иммунного ответа инициируются и регулируется.
Реорганизация актина и микротрубочек cytoskeletons имеет важное значение для формирования иммунной синапса. Локализованные BCR сигнализации стимулируется пространственно поляризованных массив антигенов стимулирует быстрое и резкое ремоделирования Цитоскелет актина,1,,15. Формирование структур дендритных актина на периферии клетки B оказывает движущей силы на плазматической мембраны и способствует клетки B распространения. Это позволяет клетки B для сканирования большую площадь поверхности антиген подшипник и увеличивает количество БКРС, которые связывают антигена и активировать BCR, сигнальные пути. В то же время сеть микротрубочек и КТВМ переориентирована на сайт антигена контакта. Как КТВМ подходов контакт сайта антигена, микротрубочки, вытекающих из КТВМ протянулись вдоль внутренней поверхности плазматической мембраны на стыке между клетки B и поверхности антиген подшипника16,17. Затем эти juxtamembrane микротрубочки может выступать в качестве треков для Динеин опосредованной центростремительного движения антиген прыгните BCR microclusters18, приводит к образованию cSMAC.
Переориентация и поляризации КТВМ к иммунной синапса требует нетронутыми актина и микротрубочек cytoskeletons и часто зависит от взаимодействия между корковой актина сети и микротрубочек16,17, 19,20. Корковых актин связывающих белков, таких как IQGAP1, можно захватить микротрубочек, взаимодействуя с белковых комплексов, которые украшают микротрубочек плюс заканчивается21. Эти динамические комплексы плюс конец связывания белков включают в себя EB1 и клип-170, которые обозначаются как микротрубочек плюс конец отслеживания белков (+ советы)21,22. + Подсказки на концах микротрубочек можно привязать к белки, которые связаны с плазматической мембраны или корковые актина цитоскелета. Это позволяет силы создание механизмов (например, минус конец направленного движения cortically якорь Динеин вдоль микротрубочек) оказывают потянув силы на микротрубочек, и тем самым изменить КТВМ. КЛИП-170 можно привязать к актин связанные леса белка IQGAP123, и мы показали, что оба эти белки необходимы для КТВМ BCR-индуцированной поляризации к иммунной синапса17. Это взаимодействие IQGAP1-клип-170 может играть ключевую роль в координации, Ремоделирование Цитоскелет актина с репозиционирования микротрубочек сети на B-клетки иммунной синапса.
Обычных флуоресцентной микроскопии показал резкое реорганизации актина и микротрубочек cytoskeletons во время B-клетки иммунной синапса формирования2. Однако этот подход не может разрешить небольших клеточных структур в деталях из-за дифракционный предел света, который, согласно закону Аббе, зависит от длины волны света, используется для освещения образца и диафрагмы объективных24. Этот дифракционный предел ограничивает разрешение обычного света Микроскопы до 200-300 Нм в боковой направлении и 500-700 Нм в осевом направлении25. Таким образом меньше внутриклеточных структур, а также мелкие детали актина и микротрубочек cytoskeletons, можно только наблюдать с помощью электронной микроскопии. Микроскопии изображений цитоскелета отнимает много времени, требует суровых образца фиксации и подготовка протоколов, которые можно изменять биологических структур и ограничен для обнаружения антител опосредованной. Способность к имунноконтраст и одновременно изображение несколько белков или клеточных структур является существенным преимуществом микроскопии флуоресцирования. Кроме того выражая флуоресцентные синтез белков в клетках позволяет в реальном времени обработки изображений и является полезным, когда эффективные антитела для иммуноокрашивания протеина интереса не доступны.
Последние технологические достижения в микроскопии суперразрешением преодолеть ограничения дифракции света и позволяет визуализировать наноразмерных клеточных структур24. Один из таких методов микроскопии суперразрешением называется микроскопии простимулированное излучение истощения (интереса). СИГНАЛУ использует два лазера, где один лазерный возбуждает Флюорофор и второй лазерный с рисунком форме пончика избирательно подавляет флуоресценции выбросов вокруг Флюорофор. Это уменьшает точки распространения функция (очевидной район) одной флуоресцентные частицы и предоставляет югу дифракционный предел флуоресцентного изображения25,26. Микроскопия истощение земли государство также использует методы, основанные на флуоресценции, приобрести супер-разрешение изображения. Однако долгое время приобретения и реконструкции изображения, есть только ограниченное количество флуорофоров, который может быть использован, и одновременно с высоким разрешением изображения нескольких цитоскелетных компонентов технически сложным, потому что поддержание Актин и микротрубочек структур требует фиксации различных процедур. Таким образом интереса имеет несколько преимуществ над электронной микроскопии и других микроскопии суперразрешением подходы в том, что он предлагает быстрое изображение приобретения, имеет минимальные требования к пост-обработки и использует же флуорофоров и пятная методы которые используются для обычных флуоресцентной микроскопии фиксированной образцы26.
Супер-резолюции микроскопии теперь был использован для визуализации актина структур на иммунные синапсов в естественных убийца клеток (НК) и T клетки26,27,28,,2930, 31. Однако, супер резолюции изображений микротрубочек цитоскелета, а также скоординированных реорганизации актина и микротрубочек cytoskeletons во время формирования иммунной синапса, лишь недавно был сообщил17. Мы использовали интереса микроскопии изображений B клеток, которые было разрешено распространить на coverslips покрытием с антителами anti-иммуноглобулина (анти Ig), которые стимулируют BCR сигнализации и инициировать реорганизацию цитоскелета. Когда покрытием на иммобилизованные антитела анти Ig, B клетки проходят драматические актин-зависит от распространения, который повторяет первоначальных событий во время формирования иммунной синапса. Важно отметить, что интереса микроскопии выявлены мелкие детали дендритных кольцо F-актина, что формы на периферии иммунной синапса и показало, что недалеко от антигена контакт сайта17переехали КТВМ, а также микротрубочек, прилагается к нему. Эти микротрубочек расширенной наружу к периферийное кольцо F-актина. Кроме того, многоцветные изображения интереса различных комбинаций F-актина, тубулин, IQGAP1 и GFP-тегами клип-170 + советы показали, что микротрубочки плюс концы отмечен клип-170-ГФП были тесно связаны с сеть периферийных актина и IQGAP1, корковых захвата белка17.
Здесь мы представляем подробный протокол для визуализации актина и микротрубочек cytoskeletons на иммунные синапса, с помощью микроскопии интереса. Эти методы были оптимизированы с помощью линии A20 мышиных клетки B, который широко использовался для изучения BCR сигнализации и иммунных синапса формирования17,,3233,,3435 , 36 , 37 , 38 , 39. Поскольку коммерческие антител к клип-170 не работает хорошо для иммуноокрашивания в предыдущих экспериментах, мы подробно описать выражение гена GFP-тегами клип-170 в клетках A20, наряду с пятная протоколы одновременно визуализации до три цитоскелетных компонентов или Белки цитоскелета связанные. Методы использования микроскопии интереса к Изображение актина в NK клеток иммунной синапсы были описаны ранее40. Здесь мы передаем это приобретение суперразрешением многоцветные изображения актина и микротрубочек cytoskeletons в клетки.
Критическое рассмотрение для микроскопии суперразрешением использует соответствующий фиксации процедур для поддержания клеточных структур и предотвращения ущерба для флуоресцентных белков. Фиксация и пятная методы, представленные в настоящем документе были оптимизированы для сохранить GFP флуоресценции и обеспечить высоким разрешением изображений сетей актина и микротрубочек. При выражении флуоресцентных белков, следует отметить, что клетки B, обычно трудно transfect. Используя этот протокол, 20-50% A20 клетки обычно выражают transfected синтез белка GFP, и среди этой группы населения уровень экспрессии белков являются переменными. Тем не менее, супер резолюции изображений актина и микротрубочек, с использованием процедур, мы описали довольно надежные и легко получаются изображения высокого качества. Несмотря на их небольшой размер относительно ячейки A20 мы показываем, что эти процедуры могут также использоваться для изображений в сети микротрубочек в первичных B-клетки, которые были кратко активированы с липополисахарида (LPS). Мы показали, что LPS-активированный первичной клетки B может transfected с малые интерферирующие РНК в относительно высокой эффективности (т.е., такие что истощение белка может быть обнаружен, immunoblotting), что делает их хорошей альтернативой для использования линий клетки B для некоторых исследований 17.
Подробные изображения цитоскелета структур могут быть получены с помощью микроскопии суперразрешением интереса, который теоретически может достичь урегулирования 50 Нм, по сравнению с обычными confocal микроскопии, для которого дифракционный резолюции составляет ~ 200 Нм 24. сп…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим визуализации объекта UBC института наук о жизни (LSI) за поддержание интереса микроскопа. Эта работа финансировалась Грант #68865 от канадской институтов медицинских исследований (M.R.G.). Мы благодарим д-р Козо Kaibuchi (Университет Нагоя, Нагоя, Япония) за клип-170-GFP плазмиды.
Cell culture | |||
A20 mouse B-lymphoma cells | ATCC | TIB-208 | Murine B-cell lymphoma of Balb/c origin that expresses an IgG-containing BCR on its surface |
RPMI-1640 | Thermo Fisher Scientific | R0883 | |
Fetal bovine serum | Thermo Fisher Scientific | 12483020 | Heat inactivate at 56 oC for 30 min |
2-mercaptoethanol | Millipore Sigma | M3148 | |
Glutamine | Millipore Sigma | G5763 | |
Sodium pyruvate | Millipore Sigma | P5280 | |
Penicillin-Streptomycin | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | Liquid, 10,000 units |
Additional materials for primary B cells | |||
70-µm cell strainer | Corning | 352350 | |
Magnetic bead-based B cell isolation kit | Stemcell Technologies | 19854 | EasySep Mouse B cell Isolation kit |
Lipopolysaccharide (LPS) | Millipore Sigma | L4391 | LPS from E. coli 0111:B4 |
B cell-activating factor (BAFF) | R&D Systems | 2106-BF-010 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Transfection | |||
Plasmid encoding CLIP-170-GFP | Gift from Dr. Kozo Kaibuchi (Nagoya Univ., Nagoya, Japan); described in Fukata et al. Cell 109:873-885, 2002 | ||
Recommended transfection reagents and equipment | |||
Amaxa Nucleofection kit V | Lonza | VCA-1003 | Follow the manufacturer's directions for mixing the transfection reagents with the DNA |
Amaxa Nucleofector model 2b | Lonza | AAB-1001 | Program L-013 used |
Falcon 6-well plates, TC treated, sterile | Corning | 353046 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Coating coverslips | |||
18-mm diameter round #1.5 cover glasses | Thomas Scientific | 1217N81 | Similar product: Marienfield-Superior catalogue #117580 |
Forceps | Fisher Scientific | 1381242 | Dissecting extra fine splinter forceps |
Falcon 12-well sterile tissue polystyrene tissue culture plate | Corning | 353043 | |
100% methanol | Fisher Scientific | A412-4 | |
Sterile phosphate buffered saline (PBS) without calcium or magnesium | Thermo Fisher Scientific | 10010049 | |
Goat-anti-mouse IgG antibody | Jackson ImmunoResearch | 115-005-008 | For A20 cells |
Goat-anti-mouse IgM antibody | Jackson ImmunoResearch | 115-005-020 | For primary mouse B cells |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Staining | |||
Paraformaldehyde (16% stock solution) | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Dilute with PBS to working concentration |
Glutaraldehyde (50% stock solution) | Millipore Sigma | 340855 | Dilute with PBS to working concentration |
Triton X-100 | Fisher Scientific | BP151-500 | |
Saponin | Millipore Sigma | S2149 | |
Bovine serum albumin (BSA), Fraction V | Millipore Sigma | 10735094001 | |
Rabbit anti-tubulin antibody | Abcam | ab52866 | 1:250 dilution recommended but should be optimized |
Alexa Fluor 532-conjugated goat anti-rabbit IgG | Thermo Fisher Scientific | A11009 | 1:100 dilution recommended but should be optimized |
Alexa Fluor 568-conjugated phalloidin | Thermo Fisher Scientific | A12380 | 1:100 dilution recommneded but should be optimized |
Prolong Diamond Antifade Mountant | Thermo Fisher Scientific | P36970 | Without DAPI |
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Materials | |||
Parafilm | VWR | P1150-2 | |
HEPES | Millipore Sigma | H3375 | |
NaCl | Fisher Scientific | BP358 | |
KCl | Millipore Sigma | P9333 | |
CaCl2 | Millipore Sigma | C1016 | |
Na2HPO4 | Fisher Scientific | S374-500 | |
MgSO4 | Fisher Scientific | M63 | |
Dextrose | Fisher Scientific | D16-500 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Microscopy | |||
Leica SP8 TCS STED microscope | Leica | ||
Huygens deconvolution software | Scientific Voume Imaging | See https://svi.nl/HuygensProducts |