显微注射的金小蜂金小蜂胚胎是产生遗传基因组改变的必要方法。这里描述的是一个详细的程序, 显微注射和移植的金小蜂金小蜂胚胎, 这将大大促进未来的基因组操纵在这个有机体。
宝石黄蜂金小蜂金小蜂已经成为一个有效的模型系统, 用于研究包括性别决定、haplo-二倍体性别测定、毒液合成和宿主-共生相互作用在内的过程。与这个有机体一起工作的一个主要限制是缺乏有效的协议来执行定向基因组的修改。基因组修饰的一个重要部分是通过显微注射将包括 CRISPR/Cas9 分子在内的编辑试剂交付到胚胎中。虽然微注射在许多模型生物体中很好地建立, 但是这种技术在金小蜂中的表现尤其具有挑战性, 主要原因是它的胚胎体积小, 而胚胎发育完全发生在寄生苍蝇蛹。以下过程克服了这些重大挑战, 同时演示了一个简化的, 可视化的程序, 有效地从寄生寄主蛹中去除黄蜂胚胎, microinjecting 它们, 并小心地将它们移植回宿主继续和完成发展。该协议将强有力地增强研究小组在这个生物体内进行高级基因组修饰的能力。
宝石黄蜂, N. 金小蜂,是 ectoparasitoids 属的四种物种之一, 它是食肉果蝇, 如 棕 bullata1。由于他们的快速世代周期, 易于饲养在实验室和一系列独特的和重要的生物属性, N. 金小蜂一直是一个重点开发的多种实验工具, 发现在传统的模型生物体.例如, 一些独特的生物属性包括 haplo-二倍体复制系统2, 与微生物和遗传寄生虫的关系3,4, 和一个 supernumary (B) 染色体5,6 ,7。两者结合在一起, 使N. 金小蜂成为一个重要的实验系统, 旨在阐明这些过程的分子和细胞方面, 除了其他包括毒液生产的8,9, 性别确定10,11, 以及轴模式形成的演变和发展12,13,14。此外, 遗传工具箱研究的生物学的N。在过去十年左右的时间里,金小蜂急剧增加, 有了高分辨率基因组的顺序15、几个基因表达研究16、17、18和功能性干扰基因表达的能力依赖于 RNA 干扰 (rna)19,20, 它们一起提高了在这个生物体中执行反向遗传学的可和能力。
尽管在这个有机体中有许多重要的科学进步和扩展的工具箱, 但目前的知识只有一组成功地进行了胚胎 microinjections, 以产生可遗传的基因组修改21。这主要是由于与N. 金小蜂的胚胎的工作困难, 因为它们是相当脆弱和小, 是〜2/3 大小的果蝇胚胎, 使他们一般难以操作。此外, N. 金小蜂雌性将卵放入 pre-stung 苍蝇蛹中, 其中胚胎、幼虫和蛹发育的全部发生。因此, 对于成功的 microinjections, pre-blastoderm 阶段, 必须有效地从寄主蛹收集胚胎, 迅速微量, 并立即移植回其宿主的发展。这些步骤需要精确和灵巧, 以避免损害微量胚胎, 或蛹宿主, 使该技术格外具有挑战性。尽管如此, 十年前发布的一个简短的协议描述了N. 金小蜂胚胎微注射22。然而 , 这个过程要求新的被放置的胚胎燥 , 它使用黏胶带固定蛋为微注射 , 并且不包括技术的视觉示范。因此, 这里描述的是一个更新和修订的协议, 包括一个可视化过程, 详细介绍了一个改进的N. 金小蜂胚胎 microinjections 的 step-by 步协议, 它可以跟随任何基础实验室生成可遗传基因组修改在这个重要模型昆虫。
最近的N. 金小蜂基因组的测序已经释放了一个重要的分子工具来描述这个物种中的未知基因的功能,23。CRISPR-Cas9 系统, 和许多其他基因编辑工具, 已证明是有价值的调查基因功能的一些有机体24。然而, 要产生遗传性突变, 这些工具需要执行胚胎 microinjections。因此, 这里演示了一个详细的可视化技术, 其中包括一些允许高效金小蜂胚胎 microinjections 的创新。
总的来说, 这一详细的技术提供了一些重要的创新, 关于现有的方法23, 允许有效的N. 金小蜂胚胎 microinjections。例如, 为了便于快速收集胚胎, 创建了一个产卵工具 (泡沫塞子), 用来限制卵子完全放置在宿主的后端 (图 1), 这极大地促进了大量胚胎的收集很短的一段时间。饲养大量数量的黄蜂的技术也得到了改进和定义。此外, 为了加速胚胎对齐, 胚胎定位装置, 使胚胎能够有效地对齐和注射, 而不必使用双面粘胶带确保胚胎到位 (图 3)。
此外, 通过在注射过程中保持胚胎湿润, 而不干燥胚胎或用油覆盖它们以提高存活率。此外, 还测试了几种毛细管玻璃类型, 并确定了用于构造金小蜂微注射 (表 1,图 4) 的完美针头的参数。此外, 在注射后, 在高 (70%) 室的 pre-stung 宿主中, 胚胎存活率能够显著增加。这些创新使N. 金小蜂的微注射过程更加简化和成功。
根据用户的喜好, 在注射装置和饲养程序方面, 可以对此协议进行细微的修改。但是, 在N. 金小蜂中成功生成突变体的关键步骤将非常重要。例如, 迅速工作, 使注入的胚胎 #62; 1 岁, 确保注射针头足够锋利, 以减少对胚胎的损害, 这两者都是必要的。虽然这个协议应该是有效的产生突变在许多 (如果不是所有) 的基因, 一个主要的限制是 CRIPSR/Cas9 要求的目标 PAM (NGG) 序列, 将决定目标序列。
总之, 这种改进的技术可以用来产生许多种类的基因组修改, 如突变, 删除, 甚至可能使用 CRIPSR/Cas9 技术21, 甚至转基因插入, 以产生转基因N. 金小蜂, 这将大大加速该生物体的功能研究。
The authors have nothing to disclose.
这项工作得到了加利福尼亚的一所慷慨的大学, 河滨 (UCR) 实验室启动基金的支持, 操作系统 a, 美国农业部国家食品和农业研究所 (NIFA) 孵化项目 (1009509) O.S.A。
Bugdorm | Bugdorm | 41515 | Insect Rearing Cage |
Glass Test Tubes | Fisher Scientific | 982010 | |
Flesh fly pupae, Sarcophaga bullata | Carolina Insects | 144440 | |
Microelectrode Beveler | Sutter Instruments | BV10 | |
Diamond abrasive plate (0.7u to 2.0u tip sizes) | Sutter Instruments | 104E | |
Micromanipulator | World Precision Instruments | Kite R | |
Femtojet Express programmable microinjector | Eppendorf | ||
Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-1000 or P-2000 | |
Stereo Microscope | Olympus | SZ51 | |
Compound Microscope | Leica DM-750 | ||
Aluminosilicate glass capillary tubing 1mm(outside diameter) X 0.58mm (inner diameter) | Sutter Instruments | BF100-58-10 | Can also use Borosilicate or Quartz |
Identi-Plugs | JAECE | L800-B | Foam plugs |
Microscope Slides | Fisherbrand | 12-550-A3 | |
Micro Cover glass | VWR | 48366045 | |
Adhesive | Aron Alpha | AA471 | For glueing coverslip onto microscope slide |
Fine-tip paintbrush | ZEM | 2595 | |
Ultra-fine tip forcep | Fisher Scientific | 16-100-121 | |
Femtotips Microloader tips | Fisher Scientific | E5242956003 |