Summary

应用流式细胞仪分析单侧坐骨神经和背根神经节的免疫细胞

Published: December 06, 2017
doi:

Summary

由于组织的缺乏, 小鼠坐骨神经内细胞含量的定量分析是困难的。本协议描述了一种组织消化和制备的方法, 它提供了足够的细胞, 用于对单个小鼠神经的免疫细胞进行流式细胞仪分析。

Abstract

神经驻留免疫细胞在周围神经系统 (三七) 是必不可少的保持神经元完整的健康神经。三七总皂苷的免疫细胞受损伤和疾病的影响, 影响神经功能和再生能力。神经免疫细胞通常通过免疫荧光 (如果) 进行分析。如果是确定神经的免疫细胞位置的必要条件, 如果只是半定量的, 并且方法仅限于可以同时分析的标记的数量和表面表达的程度。本研究采用流式细胞术对单个小鼠坐骨神经或背根节 (DRGs) 的白细胞浸润进行定量分析。用 DAPI 进行单细胞分析, 同时分析了几种蛋白质的表面或细胞内表达。根据本议定书处理的一只老鼠的坐骨神经都产生了≥3万单核事件。坐骨神经中白细胞的比例由 CD45 表达, 在坐骨神经中的总细胞含量约为 5%, 在根节中约5-10%。虽然本协议主要关注的是在三七总皂苷内的免疫细胞, 但流式细胞仪的灵活性, 同时测量一些标记, 意味着其他细胞存在于神经, 如雪旺细胞, 周、成纤维细胞和内皮细胞膜, 也可以用这种方法进行分析。因此, 该方法为研究三七总皂甙的系统性影响提供了新的途径, 如神经病变的毒和遗传模型, 以及糖尿病等慢性病。

Introduction

从循环中进入三七总皂苷的免疫细胞, 如 CD45 和 CD11b 的表达, 有助于维持神经的完整性, 并在再生和变性方面发挥作用1。巨噬细胞 (由它们的 CD68 在老鼠中的表达) 可以偏向于炎症表型, 表达更多的 MHC 类 II 和 CD86 在他们的表面 (M1), 或对抗炎表型, 表达更多的胞内 CD206 (M2)2.巨噬细胞表型的倾斜是通过 Akt 信号3调节的动态过程, 反映了巨噬细胞在防御病原体 (M1) 和组织再生中的作用 (M2) 的不同任务。损伤的神经的再生首先要求吞噬髓鞘残骸由巨噬细胞在神经4,5和抗炎性 (CD68+CD206+) M2 巨噬细胞被证明促进轴突生长在6。减少招募或巨噬细胞的总皂苷, 或受损能力的吞噬可能导致受损的再生和维持神经完整性。炎症 M1 巨噬细胞, 表达 MHC 类 II, 是较少的能力吞噬比 M2 巨噬细胞, 和神经元炎症牵连的发病机制的几个神经退行性疾病7

由于损伤引起的神经居民免疫系统的变化可能是定量的, 表现在失去 CD45 的+白细胞 (或增加渗透的 CD45+白细胞的情况下炎症), 或定性, 如巨噬细胞表型从 M2 到 M1 表型的变化。通过使用冰冻切片或石蜡嵌入材料8, 对三七总皂苷的免疫细胞进行了传统的分析。如果需要确定感兴趣的细胞的定位。然而, 定量使用如果经常依靠计数少量细胞在一个狭窄的部分组织, 使定量不可靠和易受选择偏倚。为了识别特定的免疫细胞子集, 同时检测细胞外和/或细胞内标记是必需的, 而巨噬细胞表型的确定至少需要两个标记, 特别是 CD206 和 MHC类 II。由于大多数常用的显微镜都被限制在至少两色的通道, 如荧光素异硫氰酸酯 (FITC) 和藻 (PE), 对免疫细胞的特定子集的表征, 如果可以是限制性和不完整的, 需要需要有多个幻灯片, 从相同的兴趣领域, 这是染色和分析并行。因此这费时的方面不必要借自己对大样品集合的分析。此外, 由于大部分的兴趣标记都是胞外的, 所以在组织中的检测, 或者被植入石蜡或 cryoconserved, 由于细胞膜完整性的破坏和表位的掩蔽, 以及失去由使用溶剂引起的抗原, 如丙酮和甲醇9

相比之式细胞仪 , 它测量单细胞的光学和荧光特性的悬浮 , 因为他们通过一束光 , 提供了一个更实用和全面的方法来分析细胞的数量。流式细胞术, 而不是制作一个数字图像的组织, 提供了一个自动量化的设置参数, 其中包括一个细胞的相对大小和反射指数, 称为前散射 (FSC), 粒度/内部复杂度或侧散射 (SSC) 和相对荧光强度, 提供该细胞已被标记为适当的荧光, 如共轭抗体。典型的流式细胞仪由两个空冷激光器组成;氩激光在 488 nm 处产生蓝光, 氦氖激光器在 633 nm 产生光。这一组合允许检测和测量, 同时, 至少五目标, 无论是在表面上或在细胞内室。更先进的流 cytometers 可以由多个激光器组成, 它允许一次检测多达八种不同的荧光, 这就使得所选荧光的峰值发射波长不会有明显的重叠。

通过流式细胞仪分析, 首先要酶消化, 一般用胶原酶, 产生单细胞悬浮。小鼠坐骨神经的分析以前是困难的, 因为少量的组织从每只老鼠获得。此外, 高脂肪含量的髓鞘周围的轴突阻碍细胞的恢复和产生大量的碎片。本文对坐骨神经的制备和消化的方法进行了改编, 从发夹的雪旺细胞隔离协议的et al.7, 目的是从单个小鼠的神经中分离出足够的细胞进行流式细胞仪分析, 以减少小鼠之间的变异。在原始组织文摘中使用 DAPI 来识别单个细胞, 绕过需要去除轴突碎片, 这通常会导致细胞丢失。清洗几次用洗涤剂丰富的缓冲剂帮助释放细胞内的脂肪碎片, 从而提高产量。根据本协议, 从单个小鼠中消化两个全长坐骨神经, 产生≥30,000 单核事件, 至少3次从根背根中检索到这个数字。CD45 的+白细胞的比例约5% 的总细胞含量的坐骨神经消化和约5-10% 在根背根消化. 坐骨神经中的大多数 CD45+细胞表达了巨噬 CD68 和 CD206。

Protocol

野生型 C57BL/6 小鼠 (雄性; 10-12 周) 被保存在标准的12小时光照/暗循环中, 并提供免费的标准膳食和水。所有动物实验都是按照当地动物保育和使用委员会的有关指导方针进行的, 并由德国卡尔斯鲁厄 (G216/10) 区域当局的当地动物保育和使用委员会批准。 1. 鼠标的灌注 牺牲鼠标 (C57BL/6;男性;10-12weeks) 使用 CO2或按照当地规定。注: 使用 EDTA 涂敷的1.5 毫升管, 可进?…

Representative Results

根据该协议, 从六只健康的 C57BL/6 小鼠中制备了全长坐骨神经和所有主要根背根的细胞悬浮液, 并将其分为三等分染色。反染色与 DAPI, 其中着色 DNA, 允许检测一个单一的细胞数量 (图 1A-B, 上部面板)。冲洗的 DAPI, 在分析前流式细胞仪, 减少到一定程度上的非核碎片的荧光强度, 从而允许选择一个离散的人口在 FSC 轴的单核事件?…

Discussion

坐骨神经含有很大比例的脂质, 如胆固醇, 由于髓鞘周围的神经轴突的内容。由于油脂的性质随温度变化, 在不同的温度下可以得到不同的结果。为了保证细胞的保存, 消化后的所有步骤都在冰上进行。为了使结果重现性起见, 建议保持一致性, 但在室温下执行步骤3.6 和3.7 可以提高产量。如果3.8 步的神经没有被充分消化, 小块神经将在网格上可见。在不充分消化的情况下, 在网格上保留的材料可以通…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项研究得到了德意志 Forschungsgemeinschaft (DFG;SFB1118)。作者想感谢一周半跳 Erhardt 的大部分解剖和有用的传递这方面的知识, 并 Dr. 沃克 Eckstein 协助技术方面的流式细胞仪。

Materials

C57BL/6 Mouse Charles River C57BL/6NCrl
DMEM (+1g/L glucose, Glutamine, Pyruvate) Thermo 31885023 The source of this material is not important
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich A2153
Collagenase Type 4 Worthington Biochemical Corp., US LS004188
Deoxyribonuclease (DNase) I from bovine pancreas I Sigma-Aldrich DN25-1g
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E6758
Foetal Calf Serum (FCS), heat inactivated Sigma-Aldrich F4135
Antibody against CD11b-PerCP/Cy5.5 Biolegend 101228 Clone M1/70
Antibody against MHC class II, biotinylated Biolegend 107603 Clone M5/114.15.2
Antibody against CD45-A647 Biolegend 107603 Clone 30-F11
Antibody against CD68-APC Biolegend 137007 Clone FA/11
Antibody against CD206-PE Biolegend 141706 Clone C068C2
Antibody against F4/80-PE/Cy7 Biolegend 123113 Clone BM8
Streptavidin-PE/Cy7 Biolegend 405206 Used to detect MHCII-biotin with CD45-A647 and CDllb-PerCP/Cy5.5
Streptavidin-PerCP Biolegend 405213 Used to detect MHCII-biotin with CD68-APC and F4/80-PE/Cy7
Triton-X 100 Sigma-Aldrich T8787
DAPI Sigma-Aldrich D9542-1MG Dilute in PBS to a 50x and store at 4 °C in the dark
Cell dissociation sieve – tissue grinder kit Sigma-Aldrich CD1
V-Shaped, 96-well plates Greiner/Sigma M8185
5ml polystryene round-bottom tube, 12x75mm BD Biosciences 352008
60x15mm petri dish Greiner/Sigma Z643084
BD LSR II Flow Cytometer BD Biosciences

References

  1. DeFrancesco-Lisowitz, A., Lindborg, J. A., Niemi, J. P., Zigmond, R. E. The neuroimmunology of degeneration and regeneration in the peripheral nervous system. 神经科学. 302, 174-203 (2014).
  2. Sica, A., Erreni, M., Allavena, P., Porta, C. Macrophage polarization in pathology. Cell. Mol. Life Sci. 72, 4111-4126 (2015).
  3. Vergadi, E., Ieronymaki, E., Lyroni, K., Vaporidi, K., Tsatsanis, C. Akt Signaling Pathway in Macrophage Activation and M1/M2 Polarization. J. Immunol. 198, 1006-1014 (2017).
  4. Perrin, F. E., Lacroix, S., Avilés-Trieueros, M., David, S. Involvement of monocyte chemoattractant protein-1, macrophage inflammatory protein-1alpha and interleukin-1beta in Wallerian degeneration. Brain. 128, 854-866 (2005).
  5. Niemi, J. P., et al. A Critical Role for Macrophages Near Axotomized Neuronal Cell Bodies in Stimulating Nerve Regeneration. J Neurosci. 33, 16236-16248 (2013).
  6. Mokarram, N., Merchant, A., Mukhatyar, V., Patel, G., Bellamkonda, R. V. Effect of modulating macrophage phenotype on peripheral nerve repair. Biomaterials. 33, 8793-8801 (2012).
  7. Martini, R., Willison, H. Neuroinflammation in the peripheral nerve: Cause, modulator, or bystander in peripheral neuropathies?. Glia. 64, 475-486 (2016).
  8. Carriel, V., Garzón, I., Alaminos, M., Cornelissen, M. Histological assessment in peripheral nerve tissue engineering. Neural Regen. Res. 9, 1657-1660 (2014).
  9. Leong, T. Y. -. M., Leong, A. S. -. Y. How does antigen retrieval work?. Adv. Anat. Pathol. 14, 129-131 (2007).
  10. Barrette, B., et al. Requirement of myeloid cells for axon regeneration. J. Neurosci. 28, 9363-9376 (2008).
  11. Liu, L., Yin, Y., Li, F., Malhotra, C., Cheng, J. Flow cytometry analysis of inflammatory cells isolated from the sciatic nerve and DRG after chronic constriction injury in mice. J. Neurosci. Methods. 284, 47-56 (2017).
  12. Pannell, M., et al. Adoptive transfer of M2 macrophages reduces neuropathic pain via opioid peptides. J. Neuroinflammation. 13, 262 (2016).
  13. Hidmark, A. S., Nawroth, P. P., Fleming, T. STZ causes depletion of immune cells in sciatic nerve and dorsal root ganglion in experimental diabetes. J. Neuroimmunol. 306, 76-82 (2017).

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Hidmark, A. S., Nawroth, P. P., Fleming, T. Analysis of Immune Cells in Single Sciatic Nerves and Dorsal Root Ganglion from a Single Mouse Using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (130), e56538, doi:10.3791/56538 (2017).

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