Протокол для структурного анализа полисахаридов электрофорезом геля (ПАСЕ), используя в качестве примера, маннан описан.
Полисахариды клеточной стенки растений сложно анализировать, и большинство методов требуют дорогостоящего оборудования, квалифицированных операторов и больших объемов очищенного материала. Здесь мы опишем простой метод для получения подробной полисахарид структурную информацию, включая резолюцию структурных изомеров. Для анализа полисахаридный гель-электрофорез (ПАСЕ) завод клеточной стенки Материал гидролизуется с glycosyl гидролаз, специфичные для полисахарид интерес (например, mannanases для Маннан). Большой формат полиакриламидных гелей затем используются для разделения выпустила олигосахариды, которые были дневно помечены. Гели могут быть визуализированы с модифицированных гель системы (см. Таблицу материалы). Результате олигосахарида отпечатков можно либо сравнить качественно или с репликацией, количественно. Связь и ветвления информации могут создаваться с помощью дополнительных glycosyl гидролазы (например, mannosidases и galactosidases). Хотя этот протокол описывает метод для анализа структуры глюкоманнан, он может применяться к любой полисахарид, для которого характерны glycosyl гидролазы существуют. Кроме того она может использоваться для характеристики Роман glycosyl гидролаз, используя определенные полисахариды субстратов.
Анализ полисахарид электрофорезом геля (ПАСЕ) — это метод для подробного описания полисахаридов1,2,3. Полисахариды клеточной стенки растений сложно анализировать, и большинство методов требуют дорогостоящего оборудования, квалифицированных операторов и больших объемов очищенного материала. Здесь мы опишем простой метод для получения подробной полисахарид структурную информацию, включая резолюцию структурных изомеров.
Структура полисахарид клеточной стенки завода понимание является необходимым для этих исследователей, изучение биосинтеза завод клеточной стенки или роль стены клетки растений в развитии растений. Недавно однако, завод клеточной стенки композиция стала интересным для более широкой группы исследователей из-за внимание на использовании биомассы растений (по существу клеточной стенки) в качестве сырья для производства биотоплива и биохимикаты4. Как, например эффективной ферментативные осахаривания этого материала требует, подробное понимание структур полисахарид, так что оптимизированный ферментативные коктейли могут быть выбранных5.
ПАСЕ имеет ряд преимуществ над альтернативных методов, которые делают его идеальным для быстрого анализа сложных glycan структур. Во-первых он не требует очистки полисахаридов, в вопросе, как это требуется для решения государства ядерного магнитного резонанса (ЯМР)6. Во-вторых, ПАСЕ может решить структурные изомеры, в отличие от масс-спектрометрия (МС, например, при содействии матрицы лазерная десорбция/ионизации (MALDI) и электроспрей ионизации (ESI)), который также может быть сложной задачей для выполнения жидкостной хроматографии (LC) 7. в-третьих, темпы очень чувствительна, с низким picomole резолюции, в отличие от тонкослойной хроматографии (ТСХ) или бумажной хроматографии. Наконец она не требует дорогостоящих оборудования или специалиста знания, как в случае для MS, ЯМР и LC.
ПАСЕ метод основывается на специфичности glycosyl гидролазы (GH) ферментов, которые нацелены на определенные гликосидные в смесь полисахаридов. Когда GH фермент действует на полисахаридные цепочки, она показывает уменьшение конец, который может затем быть химически дериватные, в этом случае с помощью флуоресцентные метки. Unhydrolyzed часть образца поэтому обрабатывается обнаружить этот метод. Приклеенные этикетку олигосахариды затем разделяются в гель акриламида большого формата электрофорезом. Это дает превосходное разрешение очень похожи молекул, например, Трисахариды Glc-человек-человек и Glc-человек-Glc будет иметь различные Rf.
ПАСЕ широко используется для характеристики различных xylan структур различных видов растений8, для выявления гликозилтрансферазы мутантов Arabidopsis6,9,10,11 , для выполнения анализов гликозилтрансферазы9и характеризовать Роман GH деятельности12,13. Мы также недавно использовали его для характеризуют Маннан клеточной стенки дрожжей (Mahboubi и Мортимер, в рамках подготовки). Здесь мы описываем метод характеризующих завод клеточной стенки глюкоманнан структура, на основе предыдущих докладов11,14.
ПАСЕ — это простой метод характеризующих полисахарид структуры. Он может быть применен к любой полисахарид, для которого известны СГС с характеризуется активностью, увидеть многочисленные примеры в литературе1,6,9,11. TT также был применен к характеристике Роман СГС12,13,18 и гликозидазы9, путем использования определенных полисахарид субстратов и акцепторов.
Воспроизводимость, интерпретируемых результатов зависит от трех ключевых шагов. Во-первых используемые СГС должны быть свободны от загрязняющих видов деятельности. Это лучше всего достигается только с помощью участием выраженной, сходства очищенные ферменты. Во-вторых для большинства экспериментов, важно что ферментативного гидролиза субстратов на завершение. Это будет гарантировать, что же биомассы, гидролизуется с же GH дает же отпечатков пальцев в каждом эксперименте. Наконец должно быть избыток Флюорофор в реакции деривации. Это гарантирует, что доступные сокращения концы обозначены на близка к 100%. Это приведет к высокой воспроизводимости результатов, а также количественные данные.
Гель и реагента качества имеют решающее значение для обеспечения воспроизводимости данных. Низкое качество буферов, особенно неправильной рН, воздушные пузыри в геле, и образцы с избытком соли можно все влияние резолюции и удержания фактор олигосахариды. Однако включение рекомендуемых элементов управления, описанных в разделе протокол и результаты позволят устранение неполадок.
ПАСЕ ограничивается ее способность идентификации олигосахаридов. Для некоторых экспериментов простой отпечатков пальцев-это все, что нужно. Однако, чтобы действительно quantitate количество глюкоманнан в пробе воздуха, например, личность всех выпущенных олигосахариды требуется, который является длительным процессом. Это гораздо проще для менее сложных полисахаридов например xylan3. Поскольку существует несколько стандартов олигосахарида коммерчески доступных, не всегда возможно возможным или желательным для выявления всех полос. В этом случае ПАСЕ может обеспечить очень лестно данных масс-спектрометрия (т.е., MALDI-CID9 или уни-MS7и ЯМР6). Для этих методов это часто полезно делать широкомасштабной подготовки, отделить, размер-гель-проникающей хроматографии и затем проанализировать каждую долю обоих темпами до MS или ЯМР. Хотя сообщалось, что полосы могут быть вырезан и выявленные MALDI-CID, на практике мы нашли, что это имеет низкий уровень успеха (возможно, из-за взаимодействия помечены олигосахаридов с гель акриламида при воздействии УФ света).
Другим основным ограничением ПАСЕ является пропускная способность. Иметь хорошее качество, интерпретируемых гели с соответствующие элементы управления, каждый гель будет только ~ 10 экспериментальных образцов, и исследователь может ожидать, чтобы запустить гели темп ~ 4 в день. Недавно версия ПАСЕ с помощью капиллярного электрофореза (CE) был развитых19, который позволяет подготовка проб в 96-луночных пластины. Она успешно использовался для характеристики гликозилтрансферазы ферментативной активности и полисахаридной структуры6,19, хотя она требует доступа к CE машина, которая может быть дорогим, чтобы приобрести и поддерживать.
The authors have nothing to disclose.
ПАСЕ метод был разработан и оптимизированный различными членами группы Дюпре (Кембриджский университет, Великобритания) с годами, и мы ценим их вклад. Эта работа финансировалась в рамках Объединенного института Доу по биоэнергии (http://www.jbei.org) поддержке Департамента энергетики США, управление науки, Отделение биологических и экологических исследований, через контракт де-AC02-05CH11231 между Лоуренс Беркли национальной лаборатории и Департамента энергетики США. Мы также благодарим Thea подбора и Vy НПО за помощь в подготовке csla9 образцов.
Oligosaccaharide Standards | |||
Mannose | Sigma-Aldrich | CAS 3458-28-4 | |
Mannobiose | Megazyme | CAS: 14417-51-7 | |
Mannotriose | Megazyme | CAS: 28173-52-6 | |
Mannotetraose | Megazyme | CAS: 51327-76-5 | |
Mannopentaose | Megazyme | CAS: 70281-35-5 | |
Mannhexaose | Megazyme | CAS: 70281-36-6 | |
Glucomannan (Konjac; Low Viscosity) | Megazyme | P-GLCML | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Other specialty chemicals | |||
8-Aminonaphthalene-1,3,6-trisulfonic acid | (Molecular probes) Thermo | A350 | |
2-picoline borane | TCI | B3018 | |
40 % acrylamide/Bis-acrylamide (29:1 acrylamide:Bis) | Bio-rad | 1610146 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Specialty Equipment | |||
Gel casting kit | Hoefer | SE660 kit | 18×24 cm glass plates, 0.75 mm spacers |
Cooling recirculating water bath | Hoefer | RCB20-plus 115v | Needs to be able to maintain temperature at ~10 C |
G:Box Chemi XRQ Imaging System | Syngene | 05-GBOX-CHEMI-XRQ | Order with filters appropriate to fluorphore, and transilluminator should be fitted with long-wave UV light bulbs |
High Voltage Power Pack | Thermo | EC1000XL | 1000V |
Vacuum centrifuge(Speedvac) | Savant | SPD131 | |
Vertical Gel electrophoresis system | Hoefer | SE660 | |
Glycosyl hydrolases | |||
These can be obtained from companies e.g. Megazyme (https://www.megazyme.com/) or Prozomix (http://www.prozomix.com/), or can be expressed in house by requesting the plasmid from the relevant research group. | |||
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Lab supplies | |||
15 ml Centrifuge tube ( Falcon Centrifuge Tubes, Polypropylene, Sterile, Corning) | VWR | 21008-918 | |
50 ml Centrifuge tube ( Falcon Centrifuge Tubes, Polypropylene, Sterile, Corning) | VWR | 21008-951 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
Gel imaging software ( Genesys) | Syngene |