Этот протокол описывает эффективный способ контроля за сохранение клеток и накопление жировой производные мезенхимальных стволовых клеток человека (haMSCs) far-red флуоресценции маркировки в мышиной модели коленного остеоартрита (КОА) через Внутрисуставных инъекций (IA).
Чтобы поддерживать клиническое применение жировой производные мезенхимальных стволовых клеток человека (haMSC) терапии для коленного остеоартрита (КОА), мы изучили эффективность клеток сохранение и накопление haMSCs в животных моделях. Мы продемонстрировали метод для обозначения клеточной мембраны haMSCs с липофильных флуоресцентных красителей. Впоследствии Внутрисуставных инъекций помечены клетки крыс с хирургическим индуцированных KOA контролируется динамически в vivo imaging системы. Мы заняты липофильных carbocyanines сделал (ДППК18 (5)), far-red флуоресцентные аналоговый Dil (диалкилкарбоцианины), которые использовали красный лазер, чтобы избежать возбуждения естественный зеленый аутофлюоресценция от окружающих тканей. Кроме того красный смещается выбросов спектры допустимое глубокие ткани изображений в живых животных и маркировки процедура вызвала не цитотоксических эффектов или функциональные повреждения haMSCs. Такой подход было показано, быть методом эффективного отслеживания для haMSCs в мышиной модели KOA. Применение этого метода может также использоваться для определения оптимального управления маршрут и дозировка MSCs из других источников в доклинических исследований.
Коленного остеоартрита (КОА) является результатом потери суставного хряща и прогрессирующим воспалением, который стал основным хронических заболеваний у пожилых людей во всем мире1дегенеративные расстройства. Однако текущий терапии с использованием противовоспалительных препаратов, физической добавки и хирургических процедур может обеспечить лишь временное облегчение для симптоматического боли2.
Жировой производные мезенхимальных стволовых клеток человека (haMSCs) стали многообещающим регенеративной средство для коленного остеоартрита, ввиду их Multipotent с дифференциации, потенциал для регенерации хряща и иммуномодулирующие свойства3, 4. По сравнению с фармакологическими маршрутов для изучения механизмов действий в естественных условиях, отслеживание жить haMSCs в небольших животных моделях KOA поучительно в настоящее время установить обоснование и целесообразности haMSC терапии до клинического применения. Для доклинических испытаний, медиальной meniscectomy (мм) дестабилизирует механической нагрузки совместной побудить KOA в крыс, которая обеспечивает относительно осуществимости модель с последовательной воспроизводимость5. Начала KOA индуцированных мм раньше чем передней крестообразной связки перерезка отдельно или в сочетании с частичным медиальный meniscectomy6. Таким образом долгосрочного взаимодействия между вводят haMSCs с патологическим микроокружения KOA часто оцениваются в крыс, вызванных мм7,8.
Хотя Терапевтическая эффективность haMSCs был широко сообщалось, соответствующие знания на сохранение в vivo имплантированных haMSCs через Внутрисуставных инъекций (IA) является дефицитных9,10. Таким образом были разработаны различные методы клеточной маркировки, включая immunohistology11, Люцифераза12, Зеленый флуоресцирующий белок13 трансфекции, оксид железа, маркировки для магнитно-резонансная томография (МРТ)14 и многочисленные люминесцентные клеток красители8,,1516. По сравнению с трудоемкой гистология анализы, в естественных условиях неинвазивной визуализации использует оптические устройства для обнаружения реального времени распределение и динамика клеток, помечены флуоресцентные сигналов10,17. Для функциональной живой клетки изображений, cytocompatible люминесцентные маркировки — сложные отслеживания радиоактивных бесплатно техника раскрыть клеточной деятельности после трансплантации стволовых клеток18. Кроме того многоцветный липофильных флуоресцентных красителей обладают преимуществами над амино реактивной гидрофильные красителей или флуоресцентных белков, включая их Улучшенная ячейка проницаемость и расширенной флуоресценции квантовой урожайности19.
Таким образом, здесь включены протоколы используют красный лазер для возбуждения клеток, помечены липофильных carbocyanines сделал (ДППК18(5)), который является far-red флуоресцентные Дил (диалкилкарбоцианины) аналоговый20. Красный смещается возбуждения и выбросов спектры избегает вмешательства autofluorescent и позволяет глубоко ткани изображений в течение длительного периода времени в живых животных8. Этот метод отслеживания-клеток в vivo помечены сделал действителен для мониторинга пересаженные стволовые клетки, такие как haMSCs, в моделях животных, которая необходима для понимания и улучшения текущей восстановительной терапии стволовой клетки.
Прежде чем мы можем принести регенеративной стволовых клеток лечение для Коа из скамейке в постели срочно необходимы стандарты безопасности и накопление исследования стволовых клеток. Однако среды патологических заболеваний играет важную роль в сохранение и накопление пересаженных…
The authors have nothing to disclose.
Настоящее исследование было поддержано Шанхай инновационного финансирования (1402H 294300) при поддержке науки и технологии Комиссии из Шанхая муниципалитета (CN) для Вэнь Вана. Мы хотели бы поблагодарить д-ра Гуандун Чжоу (национальные ткани инженерных центр Китая) за его техническую помощь и научные рекомендации для этой рукописи. Мы также хотели бы поблагодарить г-н Huitang ся (девятого Шанхая больница) за его помощь в животных.
Matrx VMR animal anesthesia system | Midmark | VIP3000 | |
4-0 suture | Shanghai Jinhuan | KC439 | |
Razor | Pritech | LD-9987 | |
Gentamicin | Zhejiang Jindakang Animal Health Product Co., Ltd. | None | |
0.9% Sodium chloride solution | Hunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd. | H43020455 | |
Penicillin | Shanghai Kangfu chemical pharmaceutical Co., Ltd. | None | |
Buprenorphine | Tianjin Pharmaceutical Research Institute Pharmaceutical Co., Ltd. | None | |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 16005 | Dilute to final concentration of 10% in PBS |
EDTA | Sigma-Aldrich | E9884 | Dilute to final concentration of 20% in PBS |
0.1% Hematoxylin Solution, Mayer’s | Sigma-Aldrich | MHS16 | |
0.5% Eosin Y solution, alcoholic | Sigma-Aldrich | HT110116 | |
Safranin O | Sigma-Aldrich | S8884 | |
Fast Green | Sigma-Aldrich | F7258 | |
Shandon Excelsior ESTM Tissue Processor | Thermo Fisher | A78400006 | |
Shandon Histocentre™ 3 Tissue Embedding Center | Thermo Fisher | B64100010 | |
Fully Automated Rotary Microtome | Leica | RM2255 | |
DiD | Molecular Probes, Life Technologies |
V-22887 | |
D-MEM High Glucose | Sigma-Aldrich | D5648 | |
PBS | GIBCO, Life Technologies | 14190-144 | |
0.25% Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25200-114 | |
10 cm Petri Dish | Corning | V118877 | |
Centrifuge | Beckman | Optima MAX-TL | |
Fluorescent microscope | Olympus | BX53 | |
0.4% Trypan Blue solution | Sigma-Aldrich | 93595 | |
Titetamme | Virbac (Zoletil 50) | 1000000188 | |
Zolazepam | Virbac (Zoletil 50) | 1000000188 | |
Sterile hyposermic syringe for single use 26G | Shanghai Misawa Medical Industry | None | |
IVIS Spectrum In Vivo Imaging System | PerkinElmer | 124262 | |
Living Imaging 4.0 software | PerkinElmer | None |