A derivação robusta das células do tronco pluripotente humano induzido (hiPS) foi conseguida utilizando a reprogramação mediada por vetores de vírus Sendai não-integrante (SeV) de fibroblastos dérmicos. A manutenção da célula hiPS e a expansão clonal foram realizadas usando condições de cultura sem xeno e quimicamente definidas com matriz de laminina humana recombinante 521 (LN-521) e meio Essential E8 (E8).
As condições Xeno-free e totalmente definidas são parâmetros fundamentais para a geração robusta e reprodutível de células de vástago pluripotente induzido por humanos (hiPS) homogêneas. A manutenção das células HiPS em células alimentadoras ou matrizes indefinidas são susceptíveis a variantes do lote, contaminação patogênica e risco de imunogenicidade. A utilização da matriz de laminina humana recombinante definida 521 (LN-521) em combinação com formulações de meios sem xeno e definidas reduz a variabilidade e permite a geração consistente de células hiPS. O vetor de vírus Sendai (SeV) é um sistema não-integrante baseado em ARN, evitando assim preocupações associadas ao potencial efeito disruptivo sobre a integridade do genoma que os vetores de integração podem ter. Além disso, esses vetores demonstraram eficiência relativamente alta na reprogramação de fibroblastos dérmicos. Além disso, o envio enzimático de células únicas de células facilita a manutenção homogênea de células HiPS sem experiência substancial antes de troncoCultura. Aqui descrevemos um protocolo que foi amplamente testado e desenvolvido com foco na reprodutibilidade e facilidade de uso, proporcionando uma maneira robusta e prática de gerar células HiPS humanas definidas e sem xeno de fibroblastos.
Desde a primeira derivação das linhas celulares hiPS por Takahashi et al. 1 , 2 , as células HiPS forneceram uma ferramenta útil para modelagem de doenças, descoberta de drogas e como material de origem para a geração de terapias celulares em medicina regenerativa 3 . A cultura de células hiPS tem sido dependente da co-cultura com células alimentadoras de fibroblastos 4 , 5 ou em Matrigel 6 e com formulações de mídia contendo soro bovino fetal (FBS). As variações de lote para lote são uma conseqüência comum da natureza indefinida dessas condições de cultura, resultando em variações imprevisíveis, o que é um dos principais contribuintes para a falta de confiabilidade desses protocolos 7 . O desenvolvimento de um meio definido como Essential 8 (E8) 8 e matrizes de cultura de células definidas, por exemplo, LN-521 9 , permitemS para o estabelecimento de protocolos altamente reprodutíveis e ajuda na geração e manutenção robustas de células hips homogêneas 7 , 8 , 9 , 10 .
O desenvolvimento de técnicas de reprogramação livre de integração tem sido um salto em frente. Originalmente, a reprogramação dependia de vetores retrovirais que se integrassem aleatoriamente ao genoma com efeitos disruptivos sobre a integridade genômica 11 . Os avanços nas metodologias de reprogramação incluem o desenvolvimento de vetores baseados em ARN. Os vetores de ARN têm uma vantagem sobre o método de reprogramação baseado em DNA, uma vez que a integração não intencional através da recombinação genômica não é possível 12 . Os vetores SeV fornecem expressão elevada e transitória de fatores exógenos através de ARN de cadeia simples sem uma fase de DNA 11 . Os vetores de reprogramação entregues pela SeVSão diluídos durante a expansão celular e, eventualmente, derramam da cultura, fornecendo um modo de reprogramação livre de pé-impressão. Posteriormente, a manutenção da pluripotência é dependente da expressão endógena dos genes de pluripotência 2 .
À medida que as terapias baseadas em células HiPS pioneiras estão começando a se mover para ensaios clínicos, as demandas de lotes, reprodutibilidade e segurança padronizados são questões essenciais para abordar 13 . Portanto, os produtos de origem animal devem ser evitados. Por exemplo, o uso de produtos xenogênicos tem sido associado ao risco de contaminação por agentes não humanos. Além disso, as células cultivadas na presença de componentes de cultura derivados de animais demonstraram incorporar ácidos siliac não humanos em membranas celulares que ameaçam tornar as células derivadas imunogênicas 14 . Portanto, a necessidade de eliminar produtos xenogênicos é necessária para qualquer atividade clínica futura. Este protocolo aplica xeCultura sem livre e definida na manutenção das células móveis do hiPS que se deslocam para as células mais próximas do cumprimento clínico.
Este protocolo descreve um método consistente, altamente reprodutível e fácil de usar, que gera células HiPS padronizadas a partir de fibroblastos. Ele também oferece um sistema de cultura fácil de usar para a manutenção de células HiPS estabelecidas. Este protocolo foi usado para derivar mais de 300 linhas celulares de hiPS na instalação nacional sueca de iPS Core em Karolinska Institutet, das quais algumas linhas já foram descritas 15 , 16 .
O resultado esperado deste protocolo é a geração bem-sucedida de várias linhas de células hiPS derivadas de clonação. Importante, o método para a manutenção e expansão de células estabelecidas de hiPS aqui descritas é confiável e pode ser realizado com pouca experiência prévia de cultura de células-tronco. A migração de célula única enzimática com ROCKi juntamente com a matriz LN-521 é conhecida por manter as células como cariotípicamente normais, pluripotentes e prontamente capazes de se difere…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado por agentes de financiamento SSF (B13-0074) e VINNOVA (2016-04134).
Dispase | Life Technologies | 171105-041 | Biopsy digestion |
Collagenase | Sigma | C0130 | Biopsy digestion |
Gelatin | Sigma | G1393 | Fibroblast matrix |
IMDM | Life Technologies | 21980002-032 | Fibroblast medium |
FBS | Invitrogen | 10270106 | Fibroblast medium |
PenicillinStreptomycin | Life Technologies | 15070-063 | Antibiotic |
Essential 8 media | ThermFisher Scientific | A1517001 | iPS cell culture media |
LN-521 | Biolamina | LN521-03 | iPS cell culture matrix |
TrypLE select 1X | ThermoFisher Scientific | 12563011 | Dissociation reagent |
Rho-kinase inhibitor Y27632 | Millipore | SCM075 | Rho-kinase inhibitor (ROCKi) |
CytoTune – iPS 2.0 reprogramming kit | Life Technologies | A1377801 | Sendai virus reprogramming vector |
35 mm tissue culture dish | Sarstedt | 83.3900.300 | Cell culture |
60 mm tissue culture dishes | Sarstedt | 83.3901.300 | Cell culture |
24 well tissue culture plates | Sarstedt | 83.3922.300 | Cell culture |
T25 tissue culture flasks | VWR | 734-2311 | Cell culture |
15 ml tubes | Corning | 430791 | Centrifuge tubes |
1.5 ml tube | Eppendorf | 0030123.301 | 1.5 ml tube |
CoolCell cell LX | Biocision | BCS-405 | Freezing container |
DMSO | Sigma | D2650-100ml | Fibroblast freezing |
Cryovials 1.8 ml | VWR | 479-6847 | Cryovials |
PSC Cryopreservation Kit | Gibco | A2644601 | PSC CryomediumRevitaCell supplement |
Trypsin-EDTA (0.05%) | ThermoFisherScientific | 25300054 | Fibroblast dissociation enzyme |
DMEM/F12 | Life Technologies | 31331-028 | Digestive enzymes dilutant |
DPBS | Life Technologies | 14190-094 | PBS |
HBSS | ThermoFIsher Scientific | 14025-050 | Biopsy preparation |
Haemocytometer | Sigma | BRAND, 718920 | Cell counting |