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发育生物学

C. 线虫小肠作为细胞间腔形态发生和体内极化膜生物单细胞水平的模型: 抗体染色、rna 干扰功能分析和成像标记

Published: October 03, 2017
doi:
10.3791/56100
, , , , , ,
1Mucosal Immunology and Biology Research Center, Developmental Biology and Genetics Core, Massachusetts General Hospital,Harvard Medical School, 2College of Life Sciences,Jilin University, 3Faculty of Health Sciences,University of Macau

Summary

透明的C. 线虫小肠可作为 “体内组织室”, 用于研究多细胞 tubulogenesis 中的单细胞和亚 apicobasal 膜和腔生物。本协议描述了如何结合标准标记, 功能的遗传/rna 干扰和微观的方法来解剖这些过程的分子水平。

Abstract

多细胞管, 所有内脏的基本单位, 由极化上皮或内皮细胞组成, 顶端膜内衬的流明和侧膜接触对方和/或细胞外基质。在器官形态发生过程中, 这种独特的膜不对称是如何建立和维持的仍然是一个尚未解决的细胞生物学问题。本协议将线虫小肠描述为一个模型, 用于分析管状形态发生中的极化膜生物, 重点是心尖膜和腔生物。C. 线虫二十细胞单肠上皮被安排成一个简单的双边对称管, 允许在单细胞水平上进行分析。在早期胚胎发生过程中, 细胞膜极化伴随着极化细胞分裂和迁移, 但当细胞不再增殖和移动时, de 从头极化膜生物继续贯穿幼虫生长。后一种设置允许一个分离亚细胞的变化, 同时调解这些不同的极化过程, 很难区分在大多数极性模型。顶端, 侧膜-, 连接, 骨架和膜成分可以标记和跟踪整个开发中的 GFP 融合蛋白, 或评估的原位抗体染色。与生物体的遗传多样性, C. 线虫小肠因此提供了一个独特的体内模型的视觉, 发展, 和分子遗传学分析极化膜和管生物。这里描述的具体方法 (所有标准) 包括如何: 通过抗体染色对肠亚细胞成分进行标记;通过功能 tubulogenesis 基因的研究, 分析极化膜生物中涉及的基因;评估不同发育阶段的极性缺陷;用荧光、差分干涉对比 (DIC) 和共聚焦显微镜解释表型;量化视觉缺陷。该协议可以用来分析任何通常高度保守的分子涉及上皮极性, 膜生物, 管和流明形态发生。

Introduction

细胞及亚细胞不对称的产生, 如极化膜域的形成, 对于组织和器官的形态和功能是至关重要的1。极化膜生物在上皮细胞中的研究仍然是一个技术上的挑战, 因为在亚单位成分分配的方向性变化取决于多个连续和重合的胞外和胞内信号很难分离在大多数模型和强烈依赖于模型系统。这里提出的模型-单线虫线虫肠道-是一个精致的简单组织。与单细胞的c. 线虫排泄管 (见附纸的极化膜生物在c. 线虫排泄管)2, 它提供了几个独特的优势, 以识别和极化膜生物所需分子的表征。从酵母到人类的分子极性提示的保护使这个简单的无脊椎动物器官成为优秀的 “体内组织室”, 以解决与人类系统直接相关的上皮极性问题, 这仍然是非常复杂的, 允许在单个单元格级别在体内对这些事件进行可视化剥离。

虽然多个保守的极性提示从 (1) 外矩阵, (2) 血浆膜及其交界处, (3) 胞内水泡贩运已被确定为3, 其基本的原理是它们在过程中集成极化上皮膜和组织生物不太了解4。经典的单细胞在体内模型 (e.g.S. 酵母和C. 线虫合子) 在确定极化细胞分裂和前后极性的原则方面发挥了重要作用, 并确定了关键膜相关的极性决定因素 (小 GTPases/CDC-42, 分区瑕疵的部)5,6, 但它们依赖于唯一的对称折断提示 (芽疤, 精子进入) 和缺乏连接保护apicobasal 膜域和, 想必, 相应的胞内 apicobasal 分拣机械。然而, 我们目前对组织的极化贩运上皮的知识, 主要依赖于哺乳动物2D 单一7, 缺乏生理细胞外和发展的线索, 可以改变膜的位置贩运轨道的领域和方向 (从2D 到3D 的一个开关,在体外培养系统仅能在 MDCK (Madin-达比犬肾脏) 细胞中逆转膜极性)8。在体内无脊椎动物模型生物体的上皮极性的发育研究最初在扁平上皮中进行, 例如在果蝇表皮, 在那里他们确定了关键的贡献为极性细胞迁移和细胞板料运动的接合动力学9, 并且吞贩卖为极端维护10。3D体外和体内分析了 MDCK 细胞中管状上皮的腔内形态发生, 并分别在线虫肠道中, 最近确定了细胞内贩运的要求. 从头(心尖) 域和流明生物和定位11,12,13。管状 (相对扁平) 上皮细胞的厚度是一个优势, 3D 分析的亚单位不对称, 因为它允许卓越的视觉区分顶端腔膜, apico 侧结, 侧膜, 和细胞器的位置。对于这些视觉优势, C. 线虫模型添加了体内设置、发育轴、透明度、人体计划的简单性、不变和定义的细胞谱系、分析 (遗传) 和下面描述的其他优点。

线虫本身是管状结构的蛔虫, 其透明和简单的结构使其同样管状的内部器官直接进入管和流明形态发生的可视化分析。它的肚腑的二十细胞 (偶尔地21或22个细胞)14从一个单一的祖细胞 (E) 获得, 并且从一个双层上皮发育成一个双侧对称的九 INT 环管 (四个细胞在第一圈;图 1示意图)14,15,16。肠道的谱系和组织分析, 最初由 Nomarski 光学通过核身份17和随后通过荧光显微镜通过标记的膜, 提供了重要的洞察力的形态发生,特别是细胞自治和细胞自治的要求为它的定向细胞分裂和运动 (例如, 插层, 左不对称, 前和后管旋转)14,18.早期胚细胞规范和基因调控网络控制该克隆模型器官的发育, 具有良好的特征19,20。然而, 这里的重点是分析单管细胞中的极化膜和腔生物, 以及伴随这个过程的 endomembranes、骨架结构和细胞器的胞内不对称。这一分析是便利的简单的这一管, 所有顶端膜 (在超微结构的水平, 由绒毛) 面对的流明和所有基底膜面对外管表面, 与侧膜接触对方,由接合处与顶端膜分离 (图 1示意图; 为C. 线虫特定组织的紧密和黏着连接组件的参考 (16,21)。顶端膜生物与腔内形态形成重合。此外, 成年小肠细胞的大小-这个小动物的最大的细胞 (除排泄细胞外)-近似哺乳动物细胞的大小, 允许在体内对亚单位元素的视觉跟踪,例如囊泡轨迹, 通常是在培养皿中尝试体外。

对于这种细胞和亚型分析的目的, 适当的标签是至关重要的。肠内-或等离子膜领域, 结, 骨架结构, 细胞核和其他亚细胞细胞器可以通过标记其特定的分子成分来可视化。许多此类组件已被定性并继续被发现 (表 1提供了几个示例并引用了资源)。例如, 不同的分子区分管状和/或水泡室的肠道膜系统, 从 ER 到高尔基通过后高尔基囊泡到等离子膜, 已被确定为22。特定的蛋白质 (以及脂质和糖) 可以直接标记, 或通过结合蛋白间接。本协议侧重于原位固定标本的抗体染色, 这是两种标准标记技术之一 (参见排泄运河 tubulogenesis 的附文, 用于描述其他技术2 –体内标记通过荧光蛋白融合-这是直接适用于肠道;Table2提供了一些肠道特异促进剂的例子, 可以用来驱动这种融合蛋白在肠道中的表达。双或多个标签的两种方法, 或结合额外的化学染色, 允许更大的 in-depth 视觉分辨率和检查的空间和时间的变化, 在共存和招募特定分子或亚细胞组分 (图 2)。本协议中描述的固定和染色程序支持在免疫过程中保存绿色荧光蛋白 (GFP) 标记。对于成像, 通过标准显微程序 (荧光解剖和共聚焦显微镜) 检测和表征 tubulogenesis 表型的关键点被描述(图 3, 4)。这些可以扩展到更高的分辨率成像方法, 例如超显微镜和透射电子显微镜 (这里没有描述)。

这个系统的一个关键力量是能够在不同发育阶段的个体细胞中分析极性, 从胚胎发育到成年。例如, 顶端膜领域和流明生物可以跟踪整个开发在单细胞水平通过标记与 ERM-1, 高度保守的膜肌动蛋白链接器的 Ezrin-Radixin-Moesin 家族23,24.ERM-1 形象化顶端膜生物 (1) 在胚胎管形态发生时, 当它伴随极化细胞分裂和迁移 (细胞移动顶部在流明期间在插层期间)15;(2) 在晚期胚胎和幼体管延长期间, 在没有细胞分裂或迁移的情况下进行;和 (3) 在成人肠道, 在那里的极化膜域保持 (图 1)。在扩张的有丝分裂幼虫上皮, 从头极化膜生物因此可以从极化组织形态发生分离, 这是不可能在大多数 体内和体外上皮极性模型,包括具有单细胞分辨率的 (例如3D MDCK 囊肿模型8)。对于其他成分的标签, 这个设置提供了机会 (特别是在 L1 幼虫阶段, 当细胞具有较高的细胞质/核比), 以区分这些细胞内的变化是特定的极化膜生物 (例如重新定向贩运的轨迹), 使之与极化细胞分裂和迁移所需的同时进行。

遗传多样性的线虫是众所周知的25, 并使它成为一个强大的模型系统的分子分析的任何生物问题。例如, 对形态发生的研究可以从一种野生型菌株开始, 这种转基因菌株的结构利益 (例如膜) 是用荧光标记标记的, 或者是有缺陷的功能突变体。结构.一个典型的反向遗传研究可能会产生一个突变体, 在系 (例如被目标删除) 中删除感兴趣的基因 (通常是产生点突变, 随之而来的损失、减少或增加功能的基因), 或者它的转录减少的 rna 干扰。在线虫26中, 通过喂养方便地进行 rna 干扰, 还有助于设计有针对性的屏幕, 以检查更大的一组感兴趣的基因。一个遗传模型生物体可以说是最大的力量是能够进行在体内前向屏幕 (如诱变, 系统或全基因组的 rna 干扰屏幕), 允许公正的调查分子原因的表型兴趣.例如, 一个无偏的视觉线虫rna 干扰 tubulogenesis 屏幕, 开始与 ERM-1-labeled 顶端膜的转基因动物, 发现了一个有趣的可逆性肠道极性转换和异位腔表型, 使用这里是这类分析的一个例子。这个屏幕确定了糖的损耗 (GSLs; 强制膜脂质, 通过他们的生物合成酶鉴定) 和囊泡涂层的组分格和它的 AP-1 适配器作为特定分子瑕疵导致这个极性转换表型, 从而将这些贩运分子定性为在体内提示心尖膜极性和流明定位12,13。当从特定的基因突变/形态发生表型开始时, 这样的屏幕 (或单一的基因/rna 干扰交互实验) 也可以检查两个或多个感兴趣的基因之间的功能相互作用 (参见随附的纸张排泄运河为这样分析的例子)2。该协议的重点是 rna 干扰, 除了它的能力, 以直接确定的基因, 其损失导致表型在前屏幕, 提供了具体的优势, 分析的形态发生。由于基因产物对形态发生的作用通常以剂量依赖性的方式起作用, 所以 rna 干扰通常是成功地生成了一个表型的频谱。产生信息性部分功能表型的能力也有助于解决大多数重要的 tubulogenesis 基因是必不可少的, 它们的损失导致不孕和早期胚胎致死的问题。该协议包括有条件的 rna 干扰策略, 以克服这一困难, 并建议的方法, 以优化生成更广泛的表型, 如位系列产生的突变。

Protocol

1。标记 C. 线虫 小肠 注意: 有关排泄管 tubulogenesis 2 用于组织特异性荧光标记物的分析, 请参阅所附文件质粒和转基因动物的产生, 包括讨论转录和转化融合蛋白 (后者需要的亚细胞定位的一个分子的兴趣)。这些程序可以通过使用特定的促进剂来驱动肠道中的分子来适应。请参见 表 1 , 以了解用于可视化 C. 线虫 肠道内和细胞膜…

Representative Results

该协议描述了如何分子分析和可视化极化膜生物和流明形态发生在线虫肠道, 在单细胞和亚细胞水平。二十细胞单线虫小肠是由细胞分裂和迁移过程中形成的中期胚胎。在这个时候, 极化膜领域成为建立, 但de 从头极化膜生物继续在成熟, 但扩大上皮整个四幼体阶段, 直到成年, 允许集中分析极化膜生物 (图 1A)。 <p class="jove_content"…

Discussion

本协议描述了如何将标准的功能遗传/rna 干扰和成像 (标记和显微) 方法结合起来, 利用线虫小肠上皮作为体内的视觉和分子解剖模型偏光膜和腔生物。

标签

本协议着重于抗体染色。原位抗体标记是一种高度特定的替代方法, 通过荧光融合蛋白 (在排泄管膜生物的附文中描述)2。虽然抗体染色不允许活体成?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢马里奥de博诺 (分子生物学, 剑桥, 英国), 肯尼思 j. Kemphues (康奈尔大学, 伊萨卡, 美国), 米歇尔 Labouesse (Institut de Biologie 巴黎塞纳河, 大学皮埃尔和居里夫人, 巴黎, 法国),搜索米修 (大学de雷恩 1, 雷恩, 法国) 和 CGC, 由 NIH 研究基础设施项目 (P40 OD010440) 资助, 为菌株和抗体。这项工作得到了资助, NIH GM078653, MGH 是224570和223809至 iii

Materials

Antibody staining
poly-L-lysine Sigma P5899
Methanol Fisher Scientific A452-4
Acetone Fisher Scientific A949SK-4
Tween Fisher Scientific 50-213-612
Permount Fisher Scientific SP15-100
Powdered milk Sigma MT409-1BTL
Primary antibodies
MH27 (mouse) Concentration: 1:20 Resources: Developmental Studies Hybridoma Bank.
MH33 (mouse) Concentration: 1:10 Resources: Developmental Studies Hybridoma Bank.
anti-ICB4 (rabbit) Concentration: 1:5 Resources: A gift from MariodeBono (Medical Research Council, England)
anti-PAR-3 (rabbit) Concentration: 1:50 Resources: A gift from Kenneth J. Kemphues (Cornell University)
Secondary antibodies
Alexa Floor 568 (anti-rabbit) ABCam AB175471 Concentration: 1:200
Cy5 (anti-mouse) Life technologies A10524 Concentration: 1:200
TRITC (anti-rabbit) Invitrogen T2769 Concentration: 1:200
FITC (anti-mouse) Sigma F9006 Concentration: 1:100
Labeled chemicals
Texas Red-Phalloidin Concentration: 1:100 Resources: Molecular Probes-T7471
Materials
Vacuum Grease Silicone Beckman 335148
Microscope slides Fisher Scientific 4448
Microscope coverslips (22×22-1) Fisher Scientific 12-542-B
C. elegans related see reference29 for standardC. elegans culture and maintenance procedures.
LB Medium and plates see reference29 for protocols.
Tryptone Acros Organics 611845000
Yeast Extract BD Biosciences 212750
NaCl Sigma S7653
Bacto Agar BD Biosciences 214040
Ampicillin Sigma A0116
Tetracycline Fisher Scientific BP912
M9 Medium see reference29 for protocols.
NaCl Sigma S7653
KH2PO4 Sigma P0662
Na2HPO4 Sigma S7907
MgSO4 Sigma M2773
NGM plates see reference29 for protocols.
NaCl Sigma S7653
Peptone BD Biosciences 211677
Tryptone Acros Organics 611845000
Bacto Agar BD Biosciences 214040
MgSO4 Sigma M2773
CaCl2 Sigma C3881
Cholesterol Sigma C8667
K2HPO4 Sigma P3786
KH2PO4 Sigma P0662
RNAi plates see reference30 for protocols.
NaCl Sigma S7653
Peptone BD Biosciences 211677
Tryptone Acros Organics 611845000
Bacto Agar BD Biosciences 214040
MgSO4 Sigma M2773
CaCl2 Sigma C3881
Cholesterol Sigma C8667
K2HPO4 Sigma P3786
KH2PO4 Sigma P0662
IPTG US Biological I8500
Carbenicillin Fisher Scientific BP2648
NaOH Fisher Scientific SS266-1
Sodium hypochlorite Fisher Scientific 50371500
Bacteria
OP50 bacteria CGC
HT115 bacteria CGC
Genome-wide RNAi libraries Ahringer genome-wide RNAi feeding library (ref 30,49,50) Source BioScience
C. elegans ORF-RNAi feeding library (ref51) Source BioScience
Imaging related
Sodium azide Fisher Scientific BP9221-500
Equipment
dissecting microscope Nikon SMZ-U
dissecting microscope equipped with a high-power stereo fluorescence attachment (Kramer Scientific), CCD camera with Q capture software and X-Cite fluorescent lamp (Photonic Solutions) Olympus SZX12
Laser-scanning confocal microscope Leica Microsystem TCS SL
laser-scanning confocal mounted on an ECLIPSE Ti-E inverted microscope Nikon C2
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References

  1. Bryant, D. M., Mostov, K. E. From cells to organs: building polarized tissue. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 9 (11), 887-901 (2008).
  2. Zhang, N., Membreno, E., Raj, S., Zhang, H., Khan, L. A., Gobel, V. The C. elegans excretory canal as a model for intracellular lumen morphogenesis and in vivo polarized membrane biogenesis in a single cell. JoVE. , (2017).
  3. Rodriguez-Boulan, E., Macara, I. G. Organization and execution of the epithelial polarity programme. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 15 (4), 225-242 (2014).
  4. Mellman, I., Nelson, W. J. Coordinated protein sorting, targeting and distribution in polarized cells. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 9 (11), 833-845 (2008).
  5. Nelson, W. J. Adaptation of core mechanisms to generate cell polarity. Nature. 422, 766-774 (2003).
  6. Goldstein, B., Macara, I. G. The PAR Proteins: Fundamental Players in Animal Cell Polarization. Dev. Cell. 13 (5), 609-622 (2007).
  7. Rodriguez-Boulan, E., Kreitzer, G., Musch, A. Organization of vesicular trafficking in epithelia. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 6 (3), 233-247 (2005).
  8. Zegers, M. M., O’Brien, L. E., Yu, W., Datta, A., Mostov, K. E. Epithelial polarity and tubulogenesis in vitro. Trends Cell Biol. 13 (4), 169-176 (2003).
  9. Tepass, U. The apical polarity protein network in Drosophila epithelial cells: regulation of polarity, junctions, morphogenesis, cell growth, and survival. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 28, 655-685 (2012).
  10. Shivas, J. M., Morrison, H. A., Bilder, D., Skop, A. R. Polarity and endocytosis: reciprocal regulation. Trends Cell Biol. 20 (8), 445-452 (2010).
  11. Bryant, D. M. A molecular network for de novo generation of the apical surface and lumen. Nat. Cell Biol. 12 (11), 1035-1045 (2010).
  12. Zhang, H. Apicobasal domain identities of expanding tubular membranes depend on glycosphingolipid biosynthesis. Nat. Cell Biol. 13 (10), 1189-1201 (2011).
  13. Zhang, H. Clathrin and AP-1 regulate apical polarity and lumen formation during C. elegans tubulogenesis. Development. 139 (11), 2071-2083 (2012).
  14. Asan, A., Raiders, S. A., Priess, J. R. Morphogenesis of the C. elegans Intestine Involves Axon Guidance Genes. PLoS Genet. 12 (4), e1005950 (2016).
  15. Leung, B., Hermann, G. J., Priess, J. R. Organogenesis of the Caenorhabditis elegans intestine. Dev. Biol. 216 (1), 114-134 (1999).
  16. Altun, Z. F., Hall, D. H. Alimentary system, intestine. WormAtlas. , (2009).
  17. Sulston, J. E., Horvitz, H. R. Post-embryonic cell lineages of the nematode, Caenorhabditis elegans. Dev. Biol. 56 (1), 110-156 (1977).
  18. Rasmussen, J. P., English, K., Tenlen, J. R., Priess, J. R. Notch signaling and morphogenesis of single-cell tubes in the C. elegans digestive tract. Dev. Cell. 14 (4), 559-569 (2008).
  19. Maduro, M. F. Gut development in C. elegans. Seminars in cell & developmental biology. , (2017).
  20. McGhee, J. D. The Caenorhabditis elegans intestine. Wiley Interdiscip. Rev. Dev. Biol. 2 (3), 347-367 (2013).
  21. Gobel, V., Barrett, P. L., Hall, D. H., Fleming, J. T. Lumen morphogenesis in C. elegans requires the membrane-cytoskeleton linker erm-1. Dev. Cell. 6 (6), 865-873 (2004).
  22. Fehon, R. G., McClatchey, A. I., Bretscher, A. Organizing the cell cortex: the role of ERM proteins. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 11 (4), 276-287 (2010).
  23. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. 遗传学. 77, 71-94 (1974).
  24. Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263 (1-2), 103-112 (2001).
  25. Shakes, D. C., Miller, D. M., Nonet, M. L. Immunofluorescence microscopy. Methods Cell Biol. 107, 35-66 (2012).
  26. Kamath, R. S., Martinezcampos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome Biol. 2 (1), RESEARCH0002 (2001).
  27. Simmer, F. Loss of the Putative RNA-Directed RNA Polymerase RRF-3 Makes C. elegans Hypersensitive to RNAi. Curr. Biol. 12 (15), 1317-1319 (2002).
  28. Kennedy, S., Wang, D., Ruvkun, G. A conserved siRNA-degrading RNase negatively regulates RNA interference in C. elegans. Nature. 427 (6975), 645-649 (2004).
  29. Maddox, A. S., Maddox, P. S. High-resolution imaging of cellular processes in Caenorhabditis elegans. Methods Cell Biol. 107, 1-34 (2012).
  30. Netherlands, S. . Nomarski Differential Interference Contrast Microscopy. , (2008).
  31. Bates, M., Jones, S. A., Zhuang, X. Stochastic optical reconstruction microscopy (STORM): a method for superresolution fluorescence imaging. Cold Spring Harb. Protoc. 6, 498-520 (2013).
  32. Jorgensen, E. M., Mango, S. E. The art and design of genetic screens: caenorhabditis elegans. Nat. Rev. Genet. 3, 356-369 (2002).
  33. Lee, Y. U., Son, M., Kim, J., Shim, Y. H., Kawasaki, I. CDC-25.2, a C. elegans ortholog of cdc25, is essential for the progression of intestinal divisions. Cell Cycle. 15 (5), 654-666 (2016).
  34. Hall, D. H., Hartwieg, E., Nguyen, K. Modern electron microscopy methods for C. elegans. Methods Cell Biol. 107, 93-149 (2012).
  35. Shi, A., Grant, B. D. In vivo analysis of recycling endosomes in Caenorhabditis elegans. Methods Cell Biol. 130, 181-198 (2015).
  36. . Transgeneome website Available from: https://transgeneome.mpi-cbg.de/transgeneomics/index.html (2017)
  37. . National BioResource Project (NBRP)::C. elegans Available from: https://shigen.nig.ac.jp/c.elegans/ (2017)
  38. Kamath, R. Genome-wide RNAi screening in Caenorhabditis elegans. Methods. 30 (4), 313-321 (2003).
  39. Kamath, R. S. Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi. Nature. 421 (6920), 231-237 (2003).
  40. Rual, J. F. Toward improving Caenorhabditis elegans phenome mapping with an ORFeome-based RNAi library. Genome Res. 14 (10B), 2162-2168 (2004).

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C. ElegansIntestineIntercellular LumenMembrane BiogenesisPolarized MembraneSingle-cell LevelAntibody StainingRNAiLoss-of-function AnalysisImagingMorphogenesisApical MembraneBasolateral MembranePolarityTubulogenesisExcretory CanalTransgenic AnimalsFluorescent Fusion ProteinsLive ImagingImmunohistochemistryMembrane MarkersPromoters

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