Summary

Una nueva técnica de trasplante de grasa mamaria para visualizar la generación de vasos de células madre endoteliales vasculares

Published: August 03, 2017
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Summary

Este trabajo demuestra un nuevo enfoque para evaluar la proliferación, la diferenciación y el potencial de formación de vasos de células madre endoteliales vasculares (VESCs) a través de trasplante de almohadillas de grasa mamaria seguido de preparación de tejido de montaje completo para la observación microscópica. También se presenta una estrategia de seguimiento de linaje para investigar el comportamiento de VESCs in vivo .

Abstract

Las células endoteliales son los bloques fundamentales de la arquitectura vascular y median el crecimiento vascular y la remodelación para asegurar el desarrollo adecuado de los vasos y la homeostasis. Sin embargo, los estudios sobre la jerarquía del linaje endotelial siguen siendo esquivos debido a la falta de herramientas para obtener acceso, así como para evaluar directamente su comportamiento in vivo . Para abordar esta deficiencia, se ha desarrollado un nuevo modelo de tejido para estudiar la angiogénesis utilizando la almohadilla de grasa mamaria. La glándula mamaria se desarrolla principalmente en las etapas posnatales, incluyendo la pubertad y el embarazo, durante los cuales la proliferación robusta del epitelio se acompaña de un extenso remodelado vascular. Las almohadillas de grasa mamaria proporcionan espacio, matriz y estímulos angiogénicos ricos a partir del epitelio mamario en crecimiento. Además, las almohadillas de grasa mamaria están situadas fuera de la cavidad peritoneal, haciéndolas un sitio de injerto fácilmente accesible para evaluar el potencial angiogénico de las células exógenas. Este trabajo también describe unaNt utilizando ratones reporteros fluorescentes para etiquetar específicamente la población diana de células madre endoteliales vasculares (VESCs) in vivo . Este método de rastreo de linaje, junto con la posterior microscopía de montaje completo de tejidos, permite la visualización directa de células diana y sus descendientes, a través de los cuales se puede cuantificar la capacidad de proliferación y el compromiso de diferenciación puede ser asignado al destino. Usando estos métodos, recientemente se ha identificado una población de receptor B bipotente (Procr) que expresa VESCs en múltiples sistemas vasculares. Procr + VESCs, que dan lugar tanto a nuevas CE como a pericitos, contribuyen activamente a la angiogénesis durante el desarrollo, la homeostasis y la reparación de lesiones. En general, este manuscrito describe un nuevo trasplante de almohadillas de grasa mamaria y técnicas de rastreo de linaje in vivo que pueden usarse para evaluar las propiedades de células madre de VESCs.

Introduction

Durante el desarrollo y la homeostasis, el crecimiento vascular y la remodelación se llevan a cabo fielmente de acuerdo con el crecimiento y la reparación del órgano. La angiogénesis describe la generación de nuevos vasos a partir de vasos sanguíneos preexistentes y se considera una fuerza principal que media en estos cambios vasculares dinámicos. Cada vaso sanguíneo está revestido interiormente con una capa de células endoteliales (ECs), y parecen ser la base de la arquitectura de los vasos. Durante mucho tiempo, el mecanismo a través del cual se repone el pool de EC durante la homeostasis permaneció incierto, y se discutieron si la rotación vascular es el resultado de la proliferación madura de la EC o es la contribución de las actividades vasculares de la madre / progenitor. Debido a la falta de evidencia fisiológica directa, la existencia y la identidad celular de las células madre endoteliales vasculares (VESCs) también permanecieron controversiales.

Uno de los métodos más comunes utilizados para verificar el comportamiento de las células madre es a través del transplanTación de células madre putativas en ratones receptores. Este método mide el potencial stemness de células madre candidatas in vivo. El trasplante se aplicó por primera vez al estudio de las células madre de la médula ósea 1 , lo que contribuyó al establecimiento de las características jerárquicas del sistema hematopoyético 2 . En el campo endotelial, un tapón de matriz de membrana basal ( por ejemplo, matrigel) insertado subcutáneamente bajo la piel de flanco ha sido un ensayo de angiogénesis in vivo estándar usado para dirigir las capacidades de formación de vasos de ECs trasplantadas. Múltiples métodos experimentales, incluyendo la formación de colonias en sistemas de cultivo 3D y el trasplante, han sugerido potencial de EC progenitor / VESC poblaciones 3 , 4 , 5 , 6 . Sin embargo, dado que las CE incrustadas en la matriz de la membrana basal están relativamente separadas deEl tejido circundante, esto no proporciona el ambiente de nicho óptimo requerido para explorar completamente el potencial angiogénico de las células trasplantadas. Como resultado, los vasos formados dentro del tapón de la matriz son predominantemente capilares y son funcionalmente no medibles.

La glándula mamaria se desarrolla postnatalmente, con el crecimiento más robusto que se produce durante la pubertad y el embarazo. En la etapa puberal, el epitelio mamario experimenta una rápida expansión, para ocupar toda la almohadilla de grasa mamaria, acompañada de la remodelación eficiente de las estructuras vasculares circundantes. Así, la glándula mamaria ofrece un excelente modelo para el estudio de la angiogénesis. Proporciona espacio, matriz y estímulos angiogénicos ricos a partir del epitelio mamario en crecimiento y por lo tanto es un sitio de injerto ideal para evaluar el potencial angiogénico de células exógenas. Además, la almohadilla de grasa mamaria permite que los vasos exógenos formados se integren con el sistema de circulación del huésped, permitiendo además fY que representan una ventaja sobre el trasplante subcutáneo.

Aunque los ensayos de cultivo y trasplante in vitro son una manera eficaz de investigar las propiedades de regeneración de una población celular, se sabe que tales ensayos pueden estimular la plasticidad cuando las células son retiradas de sus hábitats nativos y pueden ser inducidos cuando las células se desconectan de Su entorno fisiológico 7 . Por lo tanto, obtener la evidencia directa in vivo del destino celular es el enfoque clave para avanzar en la comprensión actual del comportamiento de las poblaciones endoteliales.

El mapeo genético del destino ( es decir, el rastreo del linaje in vivo ) es imprescindible para la identificación de VESCs y para la investigación de sus propiedades en el sistema corporal, ya que puede revelar el comportamiento in vivo de las células madre en su contexto fisiológico y la stemness real puede ser juzgado. Lineage traciNg proporciona evidencia directa de la persistencia a largo plazo ( es decir, auto-renovación) de los VESC candidatos y su capacidad para producir tipos celulares para el tejido de origen ( es decir, la potencia de diferenciación).

Este protocolo describe una nueva técnica de trasplante de grasa mamaria y un método de seguimiento de linaje para observar la capacidad de generación de vasos de VESCs. Estas técnicas superan las deficiencias de los ensayos disponibles actualmente y proporcionan una nueva forma de evaluar óptimamente las propiedades de las células madre de los VESC. Estos enfoques son herramientas eficientes que pueden usarse para evaluar el comportamiento y las propiedades formadoras de vasos de las poblaciones endoteliales, así como para determinar la alteración de la potencia de las células vasculares en un ambiente patológico.

Protocol

Los procedimientos experimentales fueron aprobados por el Comité de Cuidado y Uso de Animales del Instituto de Bioquímica y Biología Celular de Shanghai, Academia China de Ciencias bajo el protocolo aprobado SIBCB-NAF-15-002-S335-003. 1. Aislamiento de VESCs de la Glándula Mamaria de Ratón Cosecha de glándulas mamarias y digestión de tejidos. Utilizar ratones reportero virgen maduro Actin-GFP de 8 semanas de edad, con pesos comprendidos en…

Representative Results

Mamario VESCs Aislamiento: Para aislar la población endotelial para el ensayo de trasplante consecuente, las glandulas mamarias maduras (de 8 semanas de edad) fueron cosechadas como material donante. Las células endoteliales se aislaron usando una técnica de clasificación de células basada en anticuerpos. Gráficos representativos de la FACS análisis de la población VESC en 8 semanas de edad C57BL / 6 glándulas mamarias E…

Discussion

Los ensayos de angiogénesis representan un buen enfoque experimental para estudiar la dinámica vascular. La vasculatura retiniana del ratón, que se desarrolla postnatalmente, ha demostrado ser un modelo atractivo para estudiar la angiogénesis [ 12] . A pesar de ser relativamente accesible, la manipulación real dentro del lecho vascular de la retina es bastante difícil. Hasta ahora, el trasplante in vivo mejor descrito ha sido el ensayo de tapón, que encierra células dentro de una…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (31530045 y 31371500 a YAZ, 31401245 a QCY), el Ministerio de Ciencia y Tecnología de China (2014CB964800), la Academia China de Ciencias (XDB19000000 a YAZ) y el chino Sociedad de Biología Celular (Early Career Fellowship to QCY).

Materials

0.05% Trypsin-Ethylene Diamine Tetraacetic Acid(EDTA) (1X) Gibco (Life Technologies) 25300-062 0.05% Trypsin
0.22 µm Filter Unit Merck Millipore Ltd. SLGP033RB 0.22 µm Filter
2-Methylbutanol-2, ReagentPlus Sigma-Aldrich 24, 048-6 Tert Amyl Alcohol
222, Tribromethanol Sigma-Aldrich T48402-25g 222, Tribromethanol
4',6-diamidino-2-phenylindole(DAPI) Invitrogen D1306 DAPI
70 µm Cell Strainer BD FAL 352350 70 µm Cell Strainer
Adhesion Microscope Slides CITOGLAS 188105 Glass slides
Anti-mouse CD105 APC eBioscience 17-1051-82, clone MJ7/18 for FACS analusis use at 1 µg/mL
Anti-mouse CD201 Biotin eBioscience 13-2012-82 for FACS analusis use at 2.5 µg/mL
Anti-mouse CD31 PE-Cyanine 7 eBioscience 25-0311-82, clone 390 for FACS analusis use at 1 µg/mL
BD FACSJazz Cell Sorter BD Biosciences 655489 FACS
Bovine Serum Albumin Sigma 100190332 BSA
Centrifuge Eppendorf 5810R Centrifuge
Collagenase type 3 Worthington-Biochem #LS004183 Collagenase III
Confocal microscopy Leica sp8 Confocal
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas Sigma D2463-5VL Dnase I
Donkey anti-Rat Cy3 Jackson ImmunResearch 712-165-150 Secondary antibody, use at 0.5 µg/mL
Dumont Forceps WPI 500342 Froceps
Dumont Forceps – Micro-Blunted Tips FST 11253-20 Forceps
Fetal Bovine Serum Hyclone SH30396.03 FBS
FITC Ms CD3/Gr1/CD11b/CD45R(B220)/Ter-119 BioLegend 78022 Blood lineage cocktail for FACS analysis, use at 25 µl per test
Glycerol Sigma G6279 Glycerol
Iscov's Modified Dulbecco's Medium Gibco (Life Technologies) 12440-053 IMDM
Isolectin GS-IB4 from Griffonia Simplicifolia, Alexa Fluora  647 Invitrogen Z32450 Isolectin-647
Matrigel  Matrix (growth factor reduced) BD 356231 Matrigel
Mouse strain (Actin-GFP) Jax Laboratories 3773 Actin-GFP
Mouse strain (C57BL/6) SLAC C57BL/6 C57BL/6
Mouse strain  (BALB/c nude) SLAC BALB/c nude Nude mice
Paraformaldehyde Sigma P6148 PFA
Penicilin Streptomycin Gibco (Life Technologies) 5140-122 Pen/Strep
Phosphate Buffered Saline (pH7.2) 1X Gibco (Life Technologies) c20012500BT PBS
PRIM1640 Gibco (Life Technologies) c11875500CP PRIM1640
ProLong Gold antifade reagent Life Technologies P36934 Mounting Medium
Rat anti CD144 BD Biosciences 550548 for whole-mount analysis, anti-VE-Cadherin / Cdh5 antibdy for endothelial tight junction, use at 2.5 µg/mL
Rat anti CD31-biotin BD Biosciences 553371 for whole-mount analusis, anti-CD31/PECAM1 antibody for endothelial surface adhesion molecule, use at 10 ug/mL
Red Cell Lysis Buffer Sigma R7767-100ML Red blood cell lysing buffer
Straight/Sharp-Blunt/10cm FST 14028-10 Fine Scissors
Streptavidin eFluor 450 eBioscience 48-4317-82 for FACS analysis use at 0.5 µg/mL
Tamoxifen Sigma 101551374 TAM
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787-250ML TritonX
Wax Coated Braided Silk (Size 5-0 USP (1 Metric), 18 inches (45 cm) BLACK on C-1 Needle) COVIDIEN S1173 Suture 
Sterile Disposable Scaplels Swann Morton #10 Scalpel
Betadine Yifeng Medical 20160101 Antiseptic solution

References

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Cite This Article
Yu, Q. C., Song, W., Lai, D., Zeng, Y. A. A Novel Mammary Fat Pad Transplantation Technique to Visualize the Vessel Generation of Vascular Endothelial Stem Cells. J. Vis. Exp. (126), e55795, doi:10.3791/55795 (2017).

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