Summary

Approccio preciso di ablazione cellulare per la modellazione di lesioni acute del rene nello sviluppo di zebrafish

Published: June 03, 2017
doi:

Summary

Questo lavoro presenta un nuovo modello in vivo di lesioni segmentali del rene utilizzando gengive transgenici GFP reni. Il modello permette l'induzione dell'ablazione mirata delle cellule epiteliali del rene per mostrare i meccanismi cellulari di lesioni nefroniche e di riparazione.

Abstract

L'infortunio acuto del rene (AKI) è una condizione medica comune con un elevato tasso di mortalità. Con le abilità di riparazione del rene, è possibile ripristinare adeguata funzione renale dopo un trattamento di supporto. Tuttavia, è necessaria una migliore comprensione del modo in cui la morte e la riparazione della nefronica si verificano a livello cellulare per ridurre al minimo la morte cellulare e per migliorare il processo rigenerativo. Il pronephros di zebrafish è un buon modello di sistema per realizzare questo obiettivo perché contiene segmenti anatomici simili al nefrone mammifero. In precedenza, il modello più comune per studiare le lesioni renali nei pesci era il modello farmacologico di gentamicina. Tuttavia, questo modello non consente un preciso controllo spatiotemporale delle lesioni e quindi è difficile studiare i processi cellulari e molecolari coinvolti nella riparazione del rene. Per ovviare a questa limitazione, questo lavoro presenta un metodo attraverso il quale, in contrasto con l'approccio gentamicinico, una specifica Proteina Fuorescente Verde (GFP) -exIl segmento del nefrone premendo può essere fotografato mediante una luce laser violetta (405 nm). Questo nuovo modello di AKI offre molti vantaggi rispetto agli altri metodi di lesioni epiteliali. I suoi principali vantaggi sono la capacità di "comporre" il livello di lesioni e il preciso controllo spatiotemporale nel robusto modello animale in vivo . Questo nuovo metodo ha il potenziale per aumentare in modo significativo il livello di comprensione dei meccanismi di lesioni renali e di riparazione.

Introduction

La lesione acuta del rene (AKI) 1 , 2 , che può essere chiamata anche insufficienza renale acuta, è ampiamente definita come improvvisa compromissione della funzione renale 3 . Mentre il livello di comprensione di questa condizione è stato notevolmente migliorato nel corso degli anni, i tassi di morbilità e mortalità sono rimasti alti 1 , 2 . Il trattamento attuale per questa condizione è per lo più sostenuto, dato che i risultati di più studi clinici della terapia farmacologica sono stati negativi 4 , 5 . Il rene è unico in quanto ha la capacità di ripararsi. Pertanto, la terapia di supporto dopo una diagnosi precoce dell'AKI è il modo migliore per limitare la morbilità 6 . Tuttavia, è difficile rilevare AKI presto, e il tasso di mortalità è un 50-80% incredibile per coloro che necessitano di dialisi 5. Con la capacità dei reni di ripararsi e la mancanza di opzioni di trattamento per questa condizione, è importante sviluppare metodi per migliorare questo processo di rigenerazione dei nefroni.

Sono stati utilizzati molti modelli diversi per la ricerca AKI che include diversi agenti di lesioni e modelli animali. In termini di agenti di danno renale, la gentamicina antibiotica aminoglicosidica è stata utilizzata come agente nefrotossico che porta all'AKI 7 , 8 . Tuttavia, diversi gruppi hanno riscontrato che il trattamento con gentamicina è letale per l'embrione zebrafish 9 . Provoca danni tubolari troppo gravi per il recupero degli embrioni, rendendo difficile lo studio della rigenerazione senza alcun tipo di intervento. I modelli mammiferi, come il topo e il topo, sono considerati anche preziosi, ma devono affrontare molte limitazioni durante lo studio dell'AK. Forse il principale svantaggio dei modelli di roditori è la difficoltà di visuaDimagrendo il rene del roditore e determinando così i precisi processi spatiotemporali che portano alla morte epiteliale e alla riparazione.

Johnson et al. Hanno riportato una tecnica basata sull'ablazione laser per indurre lesioni acute del rene negli zebrafish embrionali e larvali 9 . Usavano l'ablazione laser pulsata per danneggiare il rene dopo un'iniezione intramuscolare con coniugati di dextran. La fluorescenza dei coniugati di dextran consente la visualizzazione dei danni e la rigenerazione nell'epitelio tubulare 9 . Questo modello supera le due limitazioni di cui sopra, ma non consente livelli di lesioni graduati e è difficile da svolgere su grandi gruppi arbitrari di cellule.

Il nuovo modello di zebrafish basato sull'ablazione laser di AKI qui descritto affronta tutte le limitazioni di cui sopra. Il rene pronebrofico in zebrafish larvale è un organo maturo e funzionante che contiene segmenti analoghi ai mammiferiPhron, inclusi un tubo glomerulus, prossimale e distale e un condotto di raccolta 10 . Le larve di zebrafish sono anche otticamente trasparenti, rendendo possibile osservare il rene attraverso tecniche di fluorescenza. Così, i pesci zebra sono un prezioso modello in vivo di AKI e il rene pronoferico larvale (5-12 giorni dopo la fecondazione (dpf)) può essere utilizzato per studiare i processi cellulari e molecolari coinvolti in lesioni renali e riparazioni.

Questo documento presenta un metodo attraverso il quale possono essere fotoablati specifici segmenti nefronici che esprimono GFP (Green Fluorescent Protein), utilizzando una luce laser violetta (405 nm) a basso consumo energetico (rispetto ad un impulso laser). La fluorescenza GFP consente di targetizzare un gruppo di cellule, rendendo visibili le modifiche attraverso l'osservazione della fotopolimerizzazione di GFP. Inoltre, GFP (assorbendo la luce viola) serve come un dispersore energetico per potenziare il danno nelle cellule renali che esprimono GFP. Time-lapse microsLa copia può quindi essere utilizzata per studiare il processo di riparazione. Gli studi hanno trovato la proliferazione cellulare, la migrazione cellulare e la metaplasia delle cellule 11 , 12 , 13 a tutti i processi potenziali che possono svolgere un ruolo importante nella riparazione del rene. Tuttavia, l'importanza relativa di questi processi e i dettagli della loro interazione è stata difficile da scoprire a causa delle limitazioni dei modelli esistenti di AKI. Utilizzando questo nuovo approccio, è stato possibile dimostrare che la migrazione delle cellule gioca un ruolo centrale nella riparazione del rene dopo lesioni acute 14 .

Protocol

Questo studio è stato condotto secondo le raccomandazioni contenute nella Guida per la cura e l'uso degli animali da laboratorio degli Istituti Nazionali di Salute. Il protocollo è stato approvato dal Comitato Istituzionale per la cura e l'uso degli animali di osteopatia (NYITCOM IACUC). Tutte le operazioni di chirurgia e sperimentazione in vivo sono state eseguite in anestesia tricaina e sono stati fatti tutti gli sforzi per ridurre al minimo la sofferenza. 1. Ottenere e ma…

Representative Results

Si prega di notare che questo protocollo è stato utilizzato con una serie di linee transgeniche GFP renali, tra cui ET (krt8: EGFP) sqet11-9, ET (krt8: EGFP) sqet33-d10 e Tg (atp1a1a.4: GFP). I risultati di esempio mostrati qui sono stati ottenuti utilizzando la linea ET (krt8: EGFP) sqet11-9. La figura 1 mostra il protocollo di fotoablation di esempio. L'intensità media GFP viene monitorata…

Discussion

Va notato che la potenza laser totale varia tra i sistemi. Tuttavia, l'utilizzo di percentuale di fotopolimerizzazione GFP consente una lettura dell'energia totale erogata al rene fluorescente, indipendente dalla variazione della potenza laser e compensata dalla lunghezza dell'esposizione. Tenga presente, tuttavia, che la risposta di diversi tessuti a questo metodo di fotoablazione varia. Anche durante la maturazione del rene, è significativamente più difficile ottenere una riduzione del 50% della fluoresc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vorremmo ringraziare il dottor Iain Drummond e il dottor Vladimir Korzh per la condivisione di linee transgeniche GFP del rene. Vorremmo anche ringraziare NYITCOM per fornire le risorse necessarie per condurre questo lavoro. Questo studio è stato in parte sostenuto da sovvenzioni: K08DK082782, R03DK097443 (NIH), e HSCI Pilot Grant (AV).

Materials

Petri Dishes, 35 x 10mm Genesee Scientific 32-103 Procedural Usage: Step 2.4,2.7
Petri Dishes, 100 x 15mm Midwest Scientific 910 Procedural Usage: Step 1
De-chorination forceps- Electron Microscopy Sciences Dumont Tweezers 5 Dumostar Fischer Scientific 50-241-57 Procedural Usage: Step 2.1.1
Plastic Transfer Pipet Globe Scientific 135030 Procedural Usage: Step 2.5, 3.6
Tricaine Sigma Aldrich A5040-25G Procedural Usage: Step 2.3, 3.4
Agarose Fischer Scientific BP165-25 Procedural Usage: Step 2.3
Pulled glass probe (manufactured manually from glass capillary tubes) Fischer Scientific 21-1640-2C Procedural Usage: Step 2.4
Stereomicroscope Nikon SMZ1270 Procedural Usage: Step 1.5
SOLA Light Engine Lumencor SOLA SM-5-LCR-SB Procedural Usage: Step 1.5
Eclipse C2 Plus Confocal Microscope System Nikon Procedural Usage: Step 3
1x E3 Solution Recipe used to generate: 5 mM NaCl, 0.17 mM KCl, 0.33 mM CaCl 2 , 0.33 mM MgSO 4 Procedural Step Usage: 1.2, 1.3, 2.2, 2.3
PTU Sigma P7629-10G Procedural Step Usage: 1.3, 2.2, 3.4, and 4.2
NIS Elements Software Nikon C2+ Procedural Usage: Step 3
Laser Unit Agilent MLC 400 Procedural Step 3.11
Propidium Iodide Sigma Aldrich P4170-100MG Procedural Step Usage: 4.2

References

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Cite This Article
Datta, R., Wong, A., Camarata, T., Tamanna, F., Ilahi, I., Vasilyev, A. Precise Cellular Ablation Approach for Modeling Acute Kidney Injury in Developing Zebrafish. J. Vis. Exp. (124), e55606, doi:10.3791/55606 (2017).

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