Wir stellen hier ein Zellkulturverfahren für die auf Basis von kombinierten ektopische Expression von microRNA-200 Familienmitgliedern und grainyhead-like 2 (GRHL2) mesenchymale-epithelialen Transitionen (MET) in Sarkomzellen zu induzieren. Dieses Verfahren ist für eine besseren geeignet, die biologische Wirkung der phänotypischen Plastizität auf Krebs Aggressivität und Behandlungen zu verstehen.
Phänotypische Plastizität bezieht sich auf ein Phänomen, bei dem Zellen, die transient Züge eines anderen Abstammungslinie gewinnen. Während Karzinom Progression treibt phänotypische Plastizität Invasion, Verbreitung und Metastasierung. Tatsächlich, während die meisten Studien der phänotypischen Plastizität im Zusammenhang mit der epithelialen abgeleiteten Karzinome waren, stellt sich Sarkome aus, die mesenchymalen Ursprungs sind, auch phänotypische Plastizität aufweisen, mit einer Teilmenge von Sarkomen ein Phänomen unterziehen, die eine mesenchymal- ähnelt epithelial Übergang (MET). Hier entwickeln wir ein Verfahren mit der ich-200-Familie und grainyhead-like 2 (GRHL2) diese MET-Phänomene wie in Sarkom Patienten beobachtet samples.we nachzuahmen sequentiell GRHL2 exprimieren und die ich-200-Familie unter Verwendung von Zell-Transduktion und Transfektion bzw. zu verstehen, um besser auf die molekularen Grundlagen dieser phänotypischen Übergänge in Sarcomzellen. Sarcoma-Zellen, ich-200s und GRHL2 demonstrierten verbesserten epithelialen characteristICs in der Zellmorphologie und den Umbau von epithelialen und mesenchymalen Biomarker. Zukünftige Studien mit Hilfe dieser Methoden können besser genutzt werden, um die phänotypischen Folgen der MET-ähnlicher Prozesse auf Sarkom-Zellen zu verstehen, wie Migration, Invasion, metastasierendem Neigung und Therapieresistenz.
Phänotypische Plastizität bezieht sich auf einen reversible Übergang zwischen zellulären Phänotypen, und wird allgemein in zwei Typen unterteilt, epithelial-to-mesenchymalen (EMT) Transitionen und mesenchymalen-to-epithelialen Transitionen (MET). Diese phänotypische Plastizität spielt eine wichtige Rolle bei der normalen Prozessen mehrzelliger Organismen, wie Entwicklung und Wundheilung 1; jedoch können dieselben Wege und Genexpressionsprogramme auch zu Krankheiten führen, wie Fibrose ( beschrieben in 2, 3, 4) und Karzinom – Metastasen (rezensiert in Referenzen 5, 6, 7, 8). Während Metastasierung zum Beispiel stört EMT Zellpolarität, Zell-Zell – Wechselwirkungen und fördert Invasion 9, 10. Zusammen EMT beitragens zu einem phänotypischen Zustand, dass Krebszellen Verbreitung erleichtert. Außerdem führt EMT auch mit vielen anderen phänotypischen Veränderungen , die einen aggressiven Phänotyp treiben, einschließlich der Deregulierung von Krebszellmetabolismus 6, der Entwicklung der Arzneimittelresistenz 11, 12, erhöhte Tumor-Initiierungsfähigkeit 13, 14 und Host Immunevasion 15.
Phänotypische Plastizität wurde in Karzinom Progression gut untersucht; zeigen jedoch Sarkome auch phänotypische Plastizität. Interessanterweise scheint es, als ob einige der gleichen Treiber der phänotypischen Plastizität bei Karzinomen auch Sarkom Plastizität und Aggressivität beitragen. Zum Beispiel zirkulierende Tumorzellen (CTCs) von Sarkom – Patienten wurden EpCAM, ein Zelloberflächenprotein exprimieren gezeigt , die typischerweise auf epithelialen Zellen 16 zu finden ist. Additional wurden 250 Weichteilsarkom Proben als Epithel-ähnlichen oder mesenchymalen artigen basierend auf Genexpression kategorisiert. Den Patienten in der Epithel-ähnlichen Biomarker Unterschrift hatten eine bessere Prognose als Patienten mit der mesenchymalen ähnlichen Biomarkers Signatur 17. Dies steht im Einklang mit vielen Karzinomen, in denen Patienten mit Epithel-ähnlichen Karzinome haben bessere Ergebnisse im Vergleich zu Patienten mit mesenchymalen artigen Tumoren 18.
Während einige Sarkome Biomarker und Genexpression Wege im Einklang mit MET, die molekularen Grundlagen dieser phänotypischen Plastizität zeigen noch schwer abzuschätzen. Um die Mechanismen und Fahrer von MET in Sarkom zu studieren wir ein Modell der MET Induktion entwickeln unter Verwendung von zwei epithelialen spezifischen Faktoren, die microRNA (du) -200 Familie und grainyhead-like 2 (GRHL2). Der miR-200s ist eine Familie von kleinem nicht-kodierenden RNAs, die die Genexpression regulieren, indem sie an den 3'-UTRs der Bindung messenger RNA und verhindert Übersetzung in ein Protein. Die miR-200-Familie besteht aus zwei Untergruppen – eines enthält, miR-141 und miR-200a, und das andere darunter miR-200b, miR-200c, miR-429 und. Mitglieder der ich-200 – Familie werden in epithelialen Geweben angereichert, und der Verlust von miR-200s ist mit Metastase in Karzinomen 19 verbunden. Die ich-200 – Familie ist auch in Weichteilsarkomen im Vergleich zu normalen Gewebe 20 nach unten reguliert. Ähnlich den miR-200s ist GRHL2 ein Schlüsselregulator für die Entwicklung epithelialer 21 wichtig ist. Der GRHL2 Transkriptionsfaktor wirkt auf zwei Arten epitheliale Gene, wie E-Cadherin hochzuregulieren: 1) in Epithelzellen, GRHL2 reprimiert direkt der EMT Master – Regulator, ZEB1 22; und 2) GRHL2 aktiviert direkt die Transkription von Genen epithelialer 23. Unsere bisherigen Untersuchungen haben gezeigt, dass die kombinierte Expression von miR-200s und GRHL2 in Sarcomzelleninduziert einen MET-ähnlichen Phänotyp 24. Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll ein in vitro – Modell der MET – Induktion in Sarkomzellen Verwendung ektopische Expression von miR-200s und GRHL2 zu schaffen.
Sarkome sind selten, aber sehr aggressive Krebsarten von einer mesenchymalen Abstammungslinie. Trotz ihrer mesenchymalen Abstammungslinie, wird eine Teilmenge von Sarkomen einen phänotypischen Übergang zu einem epithelial-ähnlichen Zustand zu unterziehen. Der MET-like – Schalter hat prognostische Relevanz, da Patienten mit Epithel-ähnlichen Tumoren sind weniger aggressiv 24. Trotz ihrer klinischen Relevanz, gibt es nur wenige Studien, die molekularen Mechanismen der Bewältigung dieser phäno…
The authors have nothing to disclose.
JA erkennt an Unterstützung von dem Duke Cancer Institute, The Duke University Genitourinary Oncology Laboratory, und die Duke University Abteilung für Orthopädie. HL wurde von der National Science Foundation (NSF) Zentrum für Theoretische Biologische Physik (NSF PHY-1.427.654) und NSF DMS-1361411 und als CPRIT (Cancer Prevention and Research Institute of Texas) Scholar in der Krebsforschung des Staates Texas unterstützt an der Rice University. KEW wurde vom NIH F32 CA192630 MKJ unterstützt und HL profitierte von nützlichen Gesprächen mit Mary C. Farach-Carson, JN Onuchic, Samir M. Hanash, Kenneth J. Pienta und Donald S. Coffey.
Countess automated counter | Life technologies | AMQAX1000 | |
Countess cell counting chamber slides | Invitrogen | C10283 | |
SimpliAmp Thermal Cycler | Thermo Fisher | A24811 | |
Odyssey Fc | LI-COR Inc | ||
ViiA7 Real Time PCR System | Thermo Fisher | 4453536 | |
PCR microplate | Corning | 321-29-051 | |
KAPA SYBR Fast Universal qPCR Kit | KAPA Biosystems | KK4602 | |
Starting Block (PBS) Blocking Buffer | Thermo Fisher | 37538 | BSA-based blocking buffer |
Agarose General Purpose LE | Genesee Scientific | 20-102 | |
10X Tris/Glycine/SDS Buffer | Bio-Rad Laboratories Inc | 161-0732 | Running buffer |
10X Tris/Glycine Buffer | Bio-Rad Laboratories Inc | 161-0734 | Transfer buffer |
RIPA Buffer | Sigma Life Sciences | SLBG8489 | |
Amersham Protran 0.45 μm nitrocellulose | GE Healthcare Lifesciences | 10600012 | |
Quick-RNA MiniPrep Kit | Genesee Scientific | 11-358 | |
Laemmli Sample Buffer (4X) | Bio-Rad Laboratories Inc | 1610747 | |
Mini Trans-Blot Cell | Bio-Rad Laboratories Inc | 1703930 | |
Mini-Protean Tetra Cell | Bio-Rad Laboratories Inc | 1658005EDU | |
DPBS | Life technologies | 14190-144 | |
0.05% Trypsin-EDTA | Life technologies | 11995-065 | |
DMEM | Life technologies | 11995-065 | |
Lipofectamine RNAi Max | Thermo Fisher | 13778150 | |
Lipofectamine 2000 Ragents | Thermo Fisher | 11668019 | |
Penicillin Streptomycin | Life technologies | 15140-122 | |
miRVana miRNA mimic negative control #1 | Thermo Fisher | 4464058 | neg miRNA |
hsa-miR-200 mirVana miRNA mimic | Thermo Fisher | 4464066 | miR200A |
has-miR-200 mirVana miRNA mimic | Thermo Fisher | 4404066 | miR200B |
has-miR-200 mirVana miRNA mimic | Thermo Fisher | 4404066 | miR200C |
Opti-MEM | Life technologies | 11088-021 | serum-free media |
anti-Ecadherin antibody | BD Bioscience | 610182 | |
anti-beta actin | Santa Cruz Biotechnology | sc-69879 | |
anti-EpCam | Ab Serotec | MCA18706 | |
anti-ZO1 | Invitrogen | 402200 | |
IRDye 800W | LI-COR Inc | 925-32210 | |
IRDye 680 | LI-COR Inc | 926-32223 | |
anti-mouse AlexaFluor 647 | Thermo Fisher | A211241 | |
anti-rabbit AlexaFluor 647 | Thermo Fisher | ab150075 | |
Halt Protease and Phosphatesse Inhibitor | Thermo Fisher | 1861281 | |
Precision Plus Protein Dual Color | Bio-Rad Laboratories Inc | 161-0374 | |
Partec CellTrics | Sysmex | 04-004-2326 | 30 μm filter for flow |
GAPDH-F | IDT | AGCCACATCGCTCAGACAC | |
GAPDH-R | IDT | GCCCAATACGACCAAATCC | |
Ecadherin-F | IDT | TGGAGGAATTCTTGCTTTGC | |
Ecadherin-R | IDT | CGCTCTCCTCCGAAGAAAC | |
ZEB1-F | IDT | GCATACAGAACCCAACTTGAACGTC | |
ZEB1-R | IDT | CGATTACACCCAGACTGC | |
NOTCH-F | IDT | GGCAATCCGAGGACTATGAG | |
NOTCH-R | IDT | CTCAGAACGCACTCGTTGAT | |
nitro blue tetrazolium | Sigma | N5514 | |
hexadimethrine bromide | Sigma | H9268 | polybrene |
3 mL syringe | BD Bioscience | 309657 | |
Sterile syringe filter | VWR | 28145-505 | |
5mL polypropylene round-bottom tube | 352063 | flow cytometry tubes | |
High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit | Thermo Fisher | 4368814 | reverse transcription kit |
4% paraformaldyhyde | Santa Cruz Biotechnology | sc-281612 | |
Triton-X100 | Sigma | 93443 | |
bovine serum albumin | Sigma | A7906 |