Sublimatie van DAN Matrix voor de detectie en Visualisatie van gangliosiden in Rat Brain Tissue voor MALDI Imaging Mass Spectrometry

Matrix-geassisteerde laserdesorptie / ionisatie (MALDI) Imaging Mass Spectrometry (IMS) is steeds een zeer gewilde techniek voor visualisatie van de ruimtelijke verdeling van lipiden, peptiden en eiwitten over intact monster oppervlakken. MALDI IMS werd voorheen een analytische techniek voor pre-gezuiverde analyten, maar de laatste jaren, is de aandacht in vele disciplines vanwege de mogelijkheid om de nauwkeurigheid van massaspectrometrie in combinatie met hoge resolutie visuele / anatomische referentiepunten zonder behoefte aan externe labeling. De wetenschappelijke onderzoekerswereld gebruik van deze techniek blijft groeien, is er meer behoefte aan gestandaardiseerde, gemakkelijk te volgen protocollen om te helpen bij de ontwikkeling en optimalisatie van IMS experimenten. Gangliosiden, een groep van membraanlipiden veel voorkomt in het centrale zenuwstelsel, zijn geschikt voor MALDI IMS experimenten hun locatie, ingebed in het membraan zorgt ervoor species onmogelijk op te sporen met behulp van conventionele Immuno-labeling. Bovendien hebben we aangetoond, middels MALDI IMS, dat deze lipiden, die functioneren als modulatoren van celsignalering, onder andere, hebben unieke anatomische verspreidingspatroon in de gezonde knaagdierhersenen die gewijzigd na hersenletsel ^{3, 4, 5.} Gangliosiden worden bij een hogere massabereik vergelijking met de meeste soorten lipiden, en dus best overeenstemt met de MALDI imaging platform.

Figuur 1: Workflow van MALDI IMS Experiment. Diagram van de algemene workflow van een MALDI IMS experiment met behulp van sublimatie. Weefsel ingevroren bij -80 ° C is verdeeld in een cryostaat en 10 urn secties zijn ontdooien gemonteerd op geleidende ITO slides. Het objectglaasje wordt vervolgens in een exsiccator tot sublimatie. Slides worden in de sublimatie-inrichting en een gelijkmatige laag matrix wordt toegepast op het weefsel monsteroppervlak. De monsters worden gedurende de nacht ingevroren in een -20 ° C vriezer daarna in een exsiccator geplaatst gedurende 10 min. Zodra normen zijn toegepast, worden de monsters ingebracht in de MALDI instrument waarbij een laser is gericht aan de overkant van het weefsel veroorzaakt gedesorbeerde moleculen in de matrix te ioniseren. De ionen reizen naar beneden een vlucht buis en apart op basis van hun massa (time-of-flight / TOF) totdat ze de detector bereiken. De gegevens over de ionische overvloed van analyten binnen een vooraf bepaalde massa-tot-lading (m / z) bereik wordt als zowel een molecuulgewicht beeld en massaspectrum. Deze gegevens kunnen worden gebruikt om zowel visualiseren en kwantificeren van de ionische overvloed van de analyt van belang in het afgebeelde weefsel. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

monstervoorbereidingvoor MALDI IMS is zeer variabel als elke stap van het proces moet worden aangepast aan de analyten. Het kenmerk van MALDI-gebaseerde experimenten is het gebruik van een matrix bekleding op het monsteroppervlak vóór de analyse afgezet. Naast de rol absorberen en overdragen stralingsenergie van de laser gedurende het ablatieproces, de matrix dient ook om diverse analyten te isoleren van het monster, waardoor de analyse van de van belang zijnde verbindingen ^{6, 7} vergemakkelijkt. Homogene toepassing van de matrix op het monsteroppervlak is de meest cruciale stap in het monster bereidingsproces. Onjuiste matrixafzetting kan leiden tot grote heterogene matrix kristalformaties en de ontwikkeling van artefacten, lage ion-signaal en slechte reproduceerbaarheid ^7.

Door de affiniteit van bepaalde matrices specifieke analyten te isoleren, het type matrix gekozen voor een experiment kanaanzienlijke verandering van de uitkomst. De matrices voor beeldvorming van eiwitten en peptiden dikwijls verschillen van die welke voor de beeldvorming lipiden en het proces wordt verder bemoeilijkt door de behoefte aan aanvullende procedures zoals wassen en rehydratatie stappen om signalen uit weefsel succesvol detecteren. Hoewel wasstappen aanwezig voor de verhoging van lipide signalen ^8, zij geen voorwaarde voor het detecteren van de meeste soorten lipiden. Bij het selecteren van een matrijs voor een lipide imagingexperiment, is het belangrijk om de polariteit van het lipide van belang, omdat dit gegeven moment het bereik van geschikte matrices beperken. Bijvoorbeeld gangliosiden bevatten siaalzuurresten waardoor ze een algemene negatieve polariteit geven. Er zijn een aantal matrices die effectief kan desorberen en ioniseren gangliosiden uit weefsel; evenwel moeten factoren als matrix afgeleide pieken in het spectrum en de stabiliteit van de matrix onder vacuüm behandeling genomen. 1,5-diaminonapthalene (DAN) matrix voldoende stabiel onder vacuüm instrument voor de meeste beeldvormende toepassingen en heeft een hoge mate van gevoeligheid voor lipide desorptie aangetoond en kan worden gebruikt voor de analyse van lipiden in zowel positieve als negatieve ion modus ^2. DAN matrix, in vergelijking met andere negatieve lipide affiniteitsmatrices zoals dihydroxybenzoëzuur (DHB), 9-aminoacridine (9-AA) en 5-chloor-2-mercaptobenzothiazol (CMBT), kon gangliosiden uit rattenhersenen meest efficiënt desorberen weefsel in negatieve ionen-modus (manuscript in voorbereiding).

Het selecteren van de juiste methode van matrix afzetting is van even groot belang voor de keuze van de matrix zelf. Natte matrixafzetting methoden waarbij de vaste matrix wordt opgelost in een organisch oplosmiddel, en afgezet door pneumatische of geautomatiseerde sproeiers of spotters, zijn bijzonder effectief voor de desorptie van eiwitten en peptiden als de vloeistof doordringt het monster mogelijk te maken extractie van verbindingen en co-kristallisatie met de matrix. Hoewel deze technieken ook kunnen worden gebruikt voor lipide toepassingen analyt delocalisatie en onregelmatige matrix kristalformaties gemeenschappelijk gebeurtenissen vanwege de hoge dichtheid en oplosbaarheid van lipiden in oplosmiddelen, met name in weefsel ^{2, 9.} Omdat lipiden gemakkelijk geïoniseerd uit weefsel, droge matrix depositietechnieken, zoals sublimatie, bieden een eenvoudige, kosteneffectief alternatief voor spuitmachines te omzeilen vele nadeel van deze technieken. Het succes van sublimatie in MALDI IMS experimenten wordt toegeschreven aan functies zoals microkristallijne matrix morfologie met een oppervlakte van matrix-bindende analyt verhoogt, verhoogde zuiverheid matrix en homogeen matrixafzetting leidt tot verhoogde reproduceerbaarheid in vergelijking met natte matrix technieken ^{1, 10.}

sublimatie involves het verwarmen van een poedervormig matrix onder vacuüm onmiddellijk onder een gekoelde monster oppervlak resulteert in een vaste stof naar gas-fase-overgang van de gepoederde matrix gevolgd door afzetting op het weefselmonster oppervlak. Tijdens sublimatie kan matrixafzetting worden geregeld door factoren zoals tijd, temperatuur en druk zeer reproduceerbare resultaten opleveren. Eén sublimatie experiment kan variëren van 5 tot 20 minuten afhankelijk van het type matrix gekozen, die kan worden hergebruikt meerdere malen voor verwijdering. De inrichting kan commercieel worden gekocht bij een fractie van de prijs van automatische sproeiers en gemakkelijk uit elkaar gehaald voor reiniging en onderhoud. De lage kosten en relatieve eenvoud van deze matrix depositie techniek maakt het ideaal voor onderzoekers beginnen of uit te breiden op lipide imaging toepassingen in MALDI IMS. Hoewel de informatie detaillering protocollen voor sublimatie van weefsels voor IMS zijn gemeld ^11, enkele gestandaardiseerde protocollen bestaan which focus op de basiswerkstroom betrokken bij het uitvoeren van een experiment voor het afbeelden sublimatie hoogmis lipiden in de negatieve ion modus, waardoor het moeilijk om de techniek te vestigen zonder uitgebreide trial and error. Het volgende is een experimentele protocol als doel om die kloof voor de sublimatie van DAN matrix op hersenen van de rat secties voor hoge resolutie beeldvorming en detectie van gangliosiden vullen.

Figuur 2: de sublimatie Apparatuur. Foto (A) en schema (B) van de sublimatie-inrichting. De vacuümpomp is verbonden met rubberen slang aan een koude val gevuld met 300 ml ethanol. De koude val wordt dan verbonden met rubberen slang aan op de sublimatie apparaat. De inrichting bestaat uit twee afzonderlijke stukken glaswerk die aan elkaar afgedicht met een metalen U-joint. De bovenste helft van het sublimatorbevat de condensator die is gevuld met ijs slush. De monsterplaat wordt geplakt op de bodem van de condensor, in het afgesloten glazen inrichting. De onderste helft van de sublimatie apparaat bevat de DAN matrix, verspreid gelijkmatig tegenover het monster plaat. Tijdens sublimatie, wordt het glaswerk geplaatst op een zandbad verwarmd tot 140 ° C door een hete plaat eronder. De temperatuursensor helpt om een ​​stabiele temperatuur in de sublimatie experiment door middel van feedback van de zand badtemperatuur vergeleken met de ingestelde temperatuur voor het experiment. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.