The therapeutic potential of mesenchymal stem/stromal cells (MSCs) is well-documented, however the best method of preparing the cells for patients remains controversial. Herein, we communicate protocols to efficiently generate and administer therapeutic spherical aggregates or ‘spheroids’ of MSCs primed under xeno-free conditions for experimental and clinical applications.
Mesenkymala stamceller / stromaceller (MSC) är mycket lovande i bioteknik och regenerativ medicin. MSCs kan isoleras från flera vuxna vävnader via deras goda vidhäftning till vävnadsodlingsplast och sedan vidare expanderas in vitro, oftast med användning av fetalt bovint serum (FBS). Eftersom FBS kan orsaka MSCs att bli immunogena, dess närvaro i MSC kulturer begränsar både kliniska och experimentella tillämpningar av cellerna. Därför studier arbetskraft i kemiskt definierade xeno-fria (XF) media för MSC kulturer är mycket värdefulla. Många positiva effekter av MSC har tillskrivits deras förmåga att reglera inflammation och immunitet, främst genom utsöndring av immunmodulerande faktorer såsom tumörnekrosfaktor-stimulerad gen 6 (TSG6) och prostaglandin E2 (PGE2). Men MSC kräver aktivering för att producera dessa faktorer och eftersom effekten av MSC är ofta övergående, har stort intresse framkommit att upptäcka sätt att i förväg aktivera celler prior för att deras användning, vilket eliminerar fördröjningstiden för aktivering in vivo. Här presenterar vi protokoll för att på ett effektivt sätt aktivera eller prime MSCs i tredimensionella (3D) kulturer under kemiskt definierade XF förhållanden och att administrera dessa föraktiverade MSC in vivo. Specifikt vi först beskriva metoder för att generera sfäriska MSC mikro vävnader eller "sfäroider" i hängande droppar med hjälp av XF medium och visa hur sfärerna och konditionerat medium (CM) kan skördas för olika applikationer. För det andra, beskriver vi genuttryck skärmar och in vitro funktionella analyser för att snabbt bedöma graden av MSC aktivering i sfäroider, betonar den antiinflammatoriska och anticancer potential hos cellerna. För det tredje beskriver vi en ny metod för att injicera intakta MSC sfäroider i musen peritonealhålan för in vivo effektivitetstestning. Sammantaget protokollen häri övervinna stora utmaningar att få föraktiverade MSCs under kemiskt definierade XF conförhållanden och ger ett flexibelt system för att administrera MSC sfäroider för terapier.
Mesenkymala stamceller / stromaceller (MSC) har visat stor potential för olika regenerativ medicin metoder. MSC ursprungligen isolerades som en stromal komponent i benmärgen, men har sedan dess erhållits från många andra vuxna vävnader, inklusive fettvävnad en, två, tre. Intressant nog omfattar huvudisoleringsmetoden den anmärkningsvärda egenskapen hos MSCs att vidhäfta stadigt på vävnadsodlingsplast i närvaro av fetalt bovint serum (FBS). Även om detta traditionella isoleringsteknik medger enkel och snabb expansion av MSC i tvådimensionell (2D) kultur, är det också mycket artificiell och bortser betydelsen av nativa tredimensionella (3D) miljö som leder till potentiell förlust av viktiga cellegenskaper 4, 5 , 6. Därför studiet av MSCs i 3D-kulturer, somär mer fysiologiska än traditionella 2D kulturer, har dykt upp i sökandet efter "förlorade / minskade" MSC egenskaper. Dessutom har ett stort intresse ökat för att identifiera Xeno Fritt (XF) kemiskt definierade villkor för MSC kultur och aktivering, och därmed göra cellerna mer mottagliga för kliniska tillämpningar.
Många studier har publicerats som visar 3D-kulturen i MSC både i biomaterial och som sfäriska aggregat eller sfäroider. MSC i biomaterial ursprungligen avsedd för vävnadstekniska metoder för att ersätta skadade vävnader med cell seedade ställningar, medan sfäroida kulturer av MSC sågs som ett sätt att förstå MSC beteende in vivo efter administrering av cellerna för behandlingar i prekliniska och kliniska prövningar 4, 5, 7. Intressant MSC bildar sfäroider spontant när vidhäftning till vävnadsodlingsplast är inte tillåtet8, 9, 10. Traditionellt har cell aggregering underlättas genom spinnerflaska metoder eller flytande tekniker overlay, metoder som används initialt i cancerbiologi i arbetet med att försöka efterlikna tumörmikromiljö. På senare tid har ytterligare metoder dykt upp som visar cell aggregering i odlingsskålar i förväg belagd med specifika kemikalier för att förhindra cell-till-plast vidhäftning 4, 5, 6. Ett av de enklaste och mest ekonomiska metoder för att generera MSC sfäroider är att odla dem i hängande droppar, en teknik som ofta användes för att producera embryoidkroppar från embryonala stamceller. Med hängande droppe odlingstekniken, är cellvidhäftning till vävnadsodlingsplast förhindras genom att suspendera cellerna i en droppe medium på undersidan av en vävnadsodlingsskål lock och låta tyngdkraften för att underlätta cell aggregation i apex av droppen. Sfäroiddiametern storlek kan lätt manipuleras genom att ändra cellkoncentrationen eller den droppvolymen, vilket gör hängande droppe kulturer speciellt lätt att kontrollera.
Tidiga studier på 3D kultur MSC visade radikala skillnader i egenskaper hos cellerna i 3D jämfört med sina 2D motsvarigheter 6, 8, 9. Samtidigt, rapporter visat att de gynnsamma effekterna av MSC: er in vivo förlitat sig på deras förmåga att bli aktiverad av mikromiljö signaler och som svar, för att producera anti-inflammatoriska och immunmodulerande faktorer 11. Intressant nog många av dessa faktorer såsom prostaglandin E2 (PGE2), tumörnekrosfaktor-stimulerad gen 6 (TSG6), och hepatocyte growth factor (HGF) producerades i mycket större mängder av MSC spheroids än traditionella 2D MSC banar väg för idé ommed hjälp av 3D-kulturer för att aktivera cellerna 8, 12, 13. Dessutom genaktivering i 3D-kulturer tycktes rekapitulera mekanismer, åtminstone delvis, av cellaktivering efter injektion i möss 12. Genom att aktivera MSCs innan deras användning i experiment, kan effekterna av cellerna förlängas och mer framträdande som den traditionella MSC effekt in vivo är ofta försenade och övergående, och kan beskrivas som "hit and run". Under de senaste åren har viktiga funktionella studier med användning av MSC sfäroider visat att de kan undertrycka inflammatoriska reaktioner och modulera immunitet in vivo genom att påverka effektorceller såsom makrofager, dendritiska celler, neutrofiler och T-celler gör sfäroider en attraktiv form av primade MSC 2 , 3. Dessutom produktion av anti-cancermolekyler, såsom interleukin-24 (IL-24) och tumömekrosfaktor-relaterad apoptosinducerande ligand (TRAIL), ökar i 3D-kulturer av MSCs i förhållande till monoskiktet MSC: er, ett fenomen som skulle kunna utnyttjas för riktade cancerterapier 8, 10, 14.
Som den traditionella MSC kultur krävs inte bara användningen av vävnadsodling plast men också FBS till en annan hinder gör MSC sfäroider mer mottaglig för klinisk användning hade övervinnas. Att ta itu med detta hinder, vi nyligen visade bildandet av MSC sfäroider under specifika kemiskt definierade XF förhållanden och konstaterat att de resulterande MSC sfäroiderna aktiverades för att producera samma anti-inflammatoriska och anti-cancermolekyler som sfäroiderna genereras under förhållanden med FBS 14. Här är dessa resultat presenteras i flera detaljerade protokoll som visar genereringen av föraktiverade MSCs i 3D kulturer använder XFmedia. Dessutom är protokoll presenteras som beskriver effektiva sätt att bedöma aktiverings nivåer av MSCs i avseende på deras anti-inflammatoriska, immunmodulerande och anti-cancer effekter, tillsammans med en praktisk metod för att leverera intakta sfäroiderna i möss.
Den optimala MSC för användning i vissa forskning och kliniska tillämpningar bör vara mycket aktivt för att maximera sin fördel, och företrädesvis framställts under kemiskt definierade XF villkor för att minimera leverans av potentiella antigener från xenogena mediumkomponenter såsom FBS. I protokollen som beskrivs här, har vi visat metoder för att 1) aktivera MSC i 3D-kulturen genom bildning av sfäroider, 2) uppnå 3D aktiveringen av MSCs i XF förhållanden, 3) utvärdera aktiveringsnivåer sfäro…
The authors have nothing to disclose.
This work was funded in part by grant P40RR17447 from the National Institute of Health and award RP150637 from the Cancer Prevention and Research Institute of Texas. We would like to thank Dr. Darwin J. Prockop for his support on the project.
MEM-α (minimal essential medium alpha) | ThermoFisher/Gibco | 12561049; 12561056; 12561072 | minimal essential medium for preparation of MSC growth medium (CCM) |
FBS (fetal bovine serum), premium select | Atlanta Biologicals | S11595; S11510; S11550; S11595-24 | component of complete culture media for all types of cells |
L-glutamine | ThermoFisher/Gibco | 25030081; 25030149; 25030164 | component of complete culture media for all types of cells |
Penicillin/Streptomycin | ThermoFisher/Gibco | 15070063 | component of complete culture media for all types of cells |
Sterilization Filter Units, 0.22 µm PES membrane | MilliporeSigma | SCGPU01RE; SCGPU02RE; SCGPU05RE; SCGPU10RE; SCGPU11RE | media sterilization |
150 mm cell culture dish | Nunc | D8554 SIGMA | cell culture |
Thermo Forma water-jacketed CO2 humidified incubator | Thermo Fisher | Model 3110 | incubation of cultured cells |
Early passage MCSs | Center for the preparation and Distribution of Adult Stem Cells at The Texas A&M Health Science Center College of Medicine Institute for Regenerative Medicine at Scott & White | NA | preparation of 2D and 3D cultures of MSCs |
water bath | VWR | 89501-468 | warming media to 37 °C |
Pipettes | Eppendorf | 492000904 | manual liquid handling |
Pipete-Aid | Drummond Scientific Company | 4-000-300 | handling sereological pipetes |
Costar sterile serological pipet (5, 10, 25 and 50 ml) | Corning | 4487; 4101; 4251; 4490 | liquid handling |
PBS (phosphate buffered saline), pH 7.4 | ThermoFisher/Gibco | 10010023; 10010072; 10010031; 10010049 | cell culture processing |
0.25% trypsin/EDTA solution | ThermoFisher/Gibco | 25200056; 25200072; 25200114 | lifting adherent cells and dispersing cell aggregates |
15 ml conical tube | Corning/BD Falcon | 352097 | cell centrifugation |
50 ml conical tube | Corning/BD Falcon | 352098 | cell centrifugation |
Eppendor refrigerated centrifuge | Eppendorf/Fisher Scientific | Model 5810R | cell centrifugation |
hemocytometer | Fisher Scientific | 26716 | cell counting |
trypan blue | Sigma-Aldrich | T8154 SIGMA | dead cell exclusion during cell counting in hemacytometer |
Defined xenofree MSC medium-1 (XFM-1) | ThermoFisher/Gibco | A1067501 | Xeno-free media specifically formulated for the growth and expansion of human mesenchymal stem cells |
Defined xenofree MSC medium-2 (XFM-2) | Stem Cell Technologies | 5420 | Defined, xeno-free medium for human mesenchymal stem cells |
HSA (Human serum albumin) | Gemini | 800-120 | Component of xeno-free MSC media |
rHSA (recombinant Human serum albumin) | Sigma-Aldrich | A9731 SIGMA | Component of xeno-free MSC media |
8-channel pipette, 10 – 100 µL | Eppendorf | 022453904 | preparation of hanging drops |
Total RNA isolation Mini Kit | Qiagen | 74104 | Total RNA extraction |
Qiashredder | Qiagen | 79654 | Sample homogenization prior to total RNA extraction |
RNAse-free DNase Set | Qiagen | 79254 | On-column DNA elimination during total RNA extraction |
β-mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M6250 ALDRICH | inhibition of RNAses in RLT buffer |
Vortex | VWR | 97043-562 | mixing sample |
Spectrophotometer | Biorad | NA | RNA concentration and quality |
High capacity cDNA Reverse Transcription Kit | ThermoFisher/Applied Biosystems | 4368814 | transcription of total RNA into cDNA |
Gene Expression Assays | ThermoFisher/Applied Biosystems | varies | primer/probe combination for real-time PCR |
Fast Universal PCR Master Mix | ThermoFisher/Applied Biosystems | 4352042; 4364103; 4366073; 4367846 | master mix for real-time PCR reaction |
Real-time PCR system (ABI Prism 7900 HT Sequence Detection System) | ABI Prizm | NA | real-time PCR |
1.5 ml centrifuge tube | Eppendorf | 22364111 | cell centrifugation, sample collection and storage |
(-80°C) freezer | Thermo Fisher | Model Thermo Forma 8695 | sample storage |
PGE2 (Prostaglandin E2) ELISA Kit | R&D Systems | KGE004B | estimation of cytokine concentration in the sample |
DMEM (Dulbecco’s modified Eagle medium) | ThermoFisher/Gibco | 10566-016; 10566-024;10566-032 | macrophage culture media |
J774 mouse macrophages | ATCC | TIB-67 | mouse macrophage cell line |
12-well plate | Corning | 3513 | in-vitro macrophage stimulation |
LPS (lipopolysaccharide) | Sigma-aldrich | L4130 | in vitro macrophage stimulation |
Mouse TNF-a ELISA kit | R&D Systems | MTA00B | estimation of cytokine concentration in the sample |
Mouse IL-10 (interleukin 10) ELISA kit | R&D Systems | M1000B | estimation of cytokine concentration in the sample |
RPMI-1640 medium | ThermoFisher/Gibco | 11875-085 | splenocyte culture media |
BALB/c mice | The Jackson Laboratory | 651 | in vivo spheroid delivery; splenocyte preparation |
Anti-Mouse CD3e Functional Grade Purified | eBioscience | 145-2C11 | In vitro splenocyte stimulation |
70 μm strainer | Corning | 352350 | Splenocyte preparation |
Red blood cell lysis solution (1x) | Affymetrix eBioscience | 00-4333 | removal of red blood cells during splenocyte isolation |
Mouse IFN-y (interferon gamma) ELISA kit | R&D Systems | MIF 00 | estimation of cytokine concentration in the sample |
LNCaP prostate cancer cells | ATCC | CRL-1740 | study the effect of 3D MSCs on cancer cell lines in vitro |
DNA-based cell proliferation assay kit | ThermoFisher | C7026 | cell number measurement based on DNA content |
NaCl | Sigma-Aldrich | S5150 | component of lysis reagent |
EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) | ThermoFisher | FERR1021 | calcium chelator, component of lysis reagent |
Rnase A | Qiagen | 19101 | RNA degradation for measurement of DNA |
Filter-based multi-mode microplate reader | BMG Technology | NA | Microplate assays (ELISA, cell quantification, e.t.c.) |
HBSS (Hanks balanced salt solution), no calcium, no magnesium, no phenol red | ThermoFisher/Gibco | 14175079 | resupsension of MSC spheroids prior to in vivo injections |
Isoflurane | MWI Vet Supply | 502017 | Anesthesia for in vivo injections |
Oxygen, compressed gas | Praxair | NA | For use with isoflurane |
Thermo Forma BSL-2 cabinet | Thermo Fisher | Model 1385 | Sterile cell culture |
Safety I.V. catheter/needle stiletto, 20G, 1 inch | Terumo | SR*FNP2025 | Delivery of shperoids into peritoneal cavity |
Sterile micropipette tips | Eppendorf | varies | liquid/cells handling |