Summary

inoculant<em> Anopheles gambiae</em> Les moustiques avec perles à induire et mesurer la réponse immunitaire mélanisation

Published: January 12, 2017
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Summary

Through inoculation with beads, the described technique enables the stimulation of the mosquito melanization response in the hemolymph circulating system. The amount of melanin covering the beads can be measured after dissection as a measure of the immune response.

Abstract

La stimulation de la réponse immunitaire est un outil commun dans les études d'invertébrés afin d'examiner l'efficacité et les mécanismes de l'immunité. Cette stimulation est basée sur l'injection de particules non pathogènes dans les insectes, les particules seront détectés par le système immunitaire et induisent la production d'effecteurs immunitaires. Nous nous concentrons ici sur la stimulation de la réponse de la mélanisation chez le moustique Anopheles gambiae. Les résultats de la réponse de la mélanisation dans l'encapsulation de particules étrangères et les parasites avec une couche sombre de la mélanine. Pour stimuler cette réponse, les moustiques sont inoculées avec des billes dans la cavité thoracique à l'aide de tubes en verre microcapillaire. Puis, après 24 h, les moustiques sont disséquées pour récupérer les perles. Le degré de la mélanisation de la bille est mesurée en utilisant un logiciel d'analyse d'image. Perles ne possèdent pas les effets pathogènes des parasites, ou leur capacité à se soustraire ou suppriment la réponse immunitaire. Ces injections sont un moyen de mesure efficacité immunitaire et l'impact des stimulations immunitaires sur d'autres traits d'histoire de vie, tels que la fécondité ou la longévité. Il est pas exactement le même que l'étude directe des interactions hôte-parasite, mais il est un outil intéressant pour étudier l'immunité et de son écologie évolutive.

Introduction

Les insectes se fondent sur les réponses immunitaires pour se protéger contre les parasites et les agents pathogènes 1 3 tout abus par leur cuticule ou leur intestin épithélium 4. Dans les moustiques, ces réponses sont efficaces contre les bactéries, les virus 5 6, les nématodes filariens 7, et les parasites du paludisme 1,8,9. Dans les moustiques, une réponse immunitaire clé est l'encapsulation des particules étrangères avec la mélanine 10-12. Cette encapsulation peut se produire dans l'intestin ou dans le système de circulation hémolymphe 10-12. Cette réponse de mélanisation est le résultat de la pro-phenoloxidase cascade 10-12, et elle peut conduire à la mort des parasites ou à leur phagocytose. Dans les moustiques adultes, où le nombre de cellules hémocytes est limitée, mélanisation est une réponse humorale, comme contre les parasites Plasmodium ou nématodes filariens 7.Dans d'autres insectes, il est directement les cellules hémocytes qui se rassemblent autour du parasite pour les 7 melanize. En outre, la mélanine est également essentielle pour plusieurs autres processus physiologiques comme la production d'œufs et les plaies de la cuticule guérison 7.

La stimulation de la réponse immunitaire est utilisé comme un outil pour étudier l' immunité des insectes dans plusieurs systèmes modèles de santé publique agricole et 13 18. Il est utilisé dans Anopheles gambiae moustiques, le principal vecteur du paludisme en Afrique, pour étudier les interactions hôte-parasite 14 16,19. Ces techniques sont basées sur la capacité des insectes pour détecter des parasites avec leurs récepteurs de reconnaissance des formes (PRR) 2. Les moustiques peuvent également détecter d'autres molécules interférant avec leur biologie tels que les motifs moléculaires associés à des pathogènes (PAMP), ou de détecter leurs propres cellules endommagées en raison de la libération de collagène et d'acides nucléiques. La cellule immunitaire contre les moustiquess tels que les hémocytes sont utilisés pour la détection 20 23. Les principales voies de signalisation immunitaires sont Imd, Toll, JAK / STAT 24, et l' interférence de l' acide ribonucléique (ARNi) 25,26. Les deux voies Toll et Imd influencent la réponse de mélanisation et d' interagir avec le pro-phenoloxidase cascade 10-12.

L'outil standard utilisé pour stimuler la réponse de la mélanisation est l'inoculation d'un moustique avec une petite perle dans l'hémolymphe de la cavité thoracique. Le degré de mélanine encapsulation peut ensuite être mesurée 19 après avoir récupéré la perle à travers la dissection du moustique. Dans la plupart des études, une seule perle a été injecté par les moustiques 15,16,27, mais injectant plus de perles est possible afin d'étudier les limites de la réponse de la mélanisation 19. Ces billes sont injectées à l'aide d'une solution d'injection (sérum physiologique) afin de limiter la perturbation de la physiologie du moustique etla dessiccation du moustique 15,16,27. Un colorant est ajouté à cette solution pour faciliter la sélection de perles. Il en est de même pour la solution de dissection utilisé pour récupérer la 15,16,27 de billes.

L'avantage de inoculant insectes avec des stimuli non-pathogène est la capacité de se concentrer sur l'effet direct sur la réponse immunitaire. Il n'y a pas d' effets de complication due à parasite pathogénicité 28, immunosuppression 29-31, ou l' évasion immunitaire 31-34. En outre, les conséquences des stimulations sur d'autres traits d'histoire de vie, tels que la longévité ou la fécondité, peuvent également être étudiés. Ainsi, les chercheurs qui étudient l' écologie évolutive peuvent exiger de tels outils 2,35,36. Par exemple, les bourdons immunodéprimés contesté ont une durée de vie raccourcie sous la famine. effets négatifs similaires de stimulations immunitaires et les déploiements ont été observés dans différents modèles d'invertébrés, ce qui entraîne souvent une courteer la durée de vie ou moins de succès en matière de reproduction 13,27,37. De telles études peuvent être menées dans des environnements différents 2,4,38. Stimuler l' immunité est également d'intérêt pour ceux qui se concentrent directement sur immunopathologie 39,40.

Ce protocole est basé sur l'inoculation de perles avec des moustiques pour stimuler la réponse de la mélanisation et de mesurer directement la quantité de mélanine. Cela permet à l'étude quantitative et qualitative de la réponse mélanisation dans différents contextes expérimentaux. Un tel outil peut être étendue à la stimulation d'autres réponses immunes, telles que la réponse anti – bactérienne à des bactéries 41 tuées par la chaleur. Elle peut également être réalisée dans de nombreux contextes écologiques.

Protocol

1. Solution saline pour préparation injectable et Dissection Préparer la solution saline en y ajoutant du NaCl, KCl et CaCl 2 dans l'eau distillée pour obtenir 1,3 mM de NaCl, 0,5 mM de KCl et 0,2 mM de CaCl2 à pH = 6,8. Ajouter 1 ml de solution de vert de méthyle 0,1% à 99 millilitres de la solution saline pour colorer les perles transparentes. Ceci est le vert de méthyle "solution d'injection" de 0,001%. Ensuite, ajouter 5 ml de solution ver…

Representative Results

Les moustiques ne melanize pas toutes les perles de la même façon, comme certaines perles ont été recouvertes de moins de mélanine que les autres (figure 1). En effet, quelques perles sont restées bleu à cause d'un manque de mélanisation, tandis que d' autres étaient complètement sombre (Figure 1). La valeur de la mélanisation a été normalisée par interpolation linéaire à une valeur comprise entre 0 ( ce qui correspond à un…

Discussion

Cette technique d'injection est utile pour stimuler et étudier la réponse de mélanisation chez les moustiques. Par exemple, ici, nous avons étudié l'effet de la charge stimuli immunitaire.

L'étape critique dans cette procédure consiste à inoculer correctement le moustique. Tous les dommages excessifs aux muscles de vol ou le moustique lui-même peut empêcher le moustique de l'alimentation ou peut le tuer avant la dissection. Une deuxième étape clé est de garder le…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This research was possible through funding from the University of Neuchâtel. We would like to thank all the students that helped in improving this technique, namely our colleague Kevin Thievent. We would also like to thank the members of the Thomas Lab for making their laboratory available. We would like to thank Janet Teeple for her help with mosquito rearing. We would also like to thanks Loyal Hall in the laboratory of Pr. Tom Baker for his help in the preparation of the micro capillary glass tubes.

Materials

Microcapillary glass tubes GB120TF-10 science-products.com GB120TF-10 http://www.science-products.com/Products/CatalogG/Glass/Glass.html
Microcaps Capillary pipette bulb Drumond 1-000-9000
negatively charged Sephadex CM C-25 beads Sigma-Aldrich, Steinheim, Germany C25120 SIGMA need few to start
Methyl green Sigma-Aldrich 323829 ALDRICH need few to start
Software ImageJ opensource Version 1.47f7 or later

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Barreaux, A. M. G., Barreaux, P., Thomas, M. B., Koella, J. C. Inoculating Anopheles gambiae Mosquitoes with Beads to Induce and Measure the Melanization Immune Response. J. Vis. Exp. (119), e55013, doi:10.3791/55013 (2017).

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