这里,我们描述协议破坏由固态研磨哺乳动物细胞在低温下,产生从所得细胞粉细胞提取物,并且在抗体偶联微米级的顺磁珠亲和捕获隔离感兴趣的蛋白质复合物。
亲和捕获是隔离的内源性蛋白复合物的进一步研究的有效方法。当在与抗体结合使用,这种技术也经常被称为免疫沉淀。亲和捕获可在实验室规模和中高通量上下文被应用。当与蛋白质质谱偶联,亲和捕获已被证明是相互作用组分析的主力。虽然有许多潜在的方法来执行所涉及的许多步骤,以下协议实现我们的青睐方法。两个功能特色:采用cryomilled细胞粉产生细胞提取物和抗体偶联顺珠亲和力网上平台。在许多情况下,我们已经获得了优异的结果,以与更常规的亲和捕获做法获得的那些。低温球磨避免了与其他形式的细胞破碎的相关联的许多问题。它提供了材料的有效破损,同时避免代纳用加热或发泡关联uration问题。它保留了天然蛋白质浓度高达萃取的点,减轻大分子的离解。它减少了时间提取的蛋白质花费在溶液中,限制有害的酶活性,并且其可以由亲和介质减少蛋白质的非特异性吸附。微米级磁性亲和介质已成为在过去几年越来越普遍,越来越多地取代了传统的琼脂糖和基于琼脂糖的介质。磁介质的主要优点包括通常较低的非特异性蛋白质吸附;没有排阻限制,因为蛋白复合物发生结合珠表面,而不是毛孔内的;并利用磁铁易于操纵和处理。
的呈现过程的一个典型应用是稳定,将获得的利益内源蛋白质复合体的高收率和纯度为interactomic表征1。可以理解的是这两个稳定地和瞬时相关大分子复合物,主要是由蛋白质的动态网络,协调细胞过程2,3。虽然有用于识别蛋白质-蛋白质相互作用的许多实验方法,亲和捕获是用于分离和解剖生理蛋白质复合物4-6的最广泛使用的方法之一。此外,这种技术具有产生的大分子复合物作为物理实体,而不是仅仅在一个读出的数据点的优势;有利的是,所得到的复合物因此可以在附加的下游的生化,酶和结构测定法7-9中的主机使用。所提出的协议已被开发响应于需要映射protei正蛋白相互作用网络,并在其为细胞生物学效应分子的作用表征大分子复合物。它们相对于它们的应用,以在组织培养物中生长的哺乳动物细胞详细,但也同样适用于广泛的给予适当的系统特定的调整生物样品。
亲和捕获的历史可以追溯到二十世纪初与第一免疫亲和层析实验 – 类似于通常所说时下的免疫沉淀(IP) – 由20世纪50年代初出现在文献中。主流利用技术的进一步通过这个世纪之交,到现在10-13开发。不同的细胞和分子生物学研究已经通过在低温下,至少在过去的四十年磨14-19利用细胞的机械破坏;并利用(超)顺磁珠分离分子BEC有青梅在过去的二十年里20越来越普遍。结合这些不同的技术曾协同改善,可以在复杂的蛋白亲和捕获实验1中可以得到的结果,由我们自己生产工作的多种身体和更广泛的研究团体证明7,9,11,18,19,21 -23。支承结果示于图1中。
注意事项以及适用于执行有效的亲和捕获实验考虑的一个集合在参考文献1中找到。通常这种方法是最合适的:(Ⅰ)编目交互件的目标蛋白, 即,使用蛋白质谱(MS)来识别迄今未知copurifying蛋白质(探索性分析); (II)的测定对于特定相互作用伴侣的存在下, 即用MS或免疫印迹来检测怀疑在蛋白质的特定蛋白或有限集teract与感兴趣(假设检验)的蛋白质;或(III)制备含有用于通过其他技术进一步研究(制备后处理)感兴趣的蛋白质内源性组装的蛋白质复合物。在开始的亲和捕获试验制度之前它具有结合靶蛋白质,典型地针对感兴趣天然靶蛋白或针对附加到的融合蛋白的标签的IP能力的抗体的高品质的亲和试剂是绝对必要的。它也是关键的是具有代替实验读出的适当的方法:一般蛋白染色(如考马斯亮蓝,SYPRO Ruby或银,以下SDS-PAGE),蛋白质印迹,和蛋白质的MS都常用于与亲和捕获结合使用1。所提出的协议利用抗体复合体的磁珠的亲和力网上平台。而亲和介质的功能,可以最初在利用几个实验参数试验进行验证,以得到每个实验应凭经验优化1,11,24最好的结果。该协议被分成三个不同的阶段:(1)冷冻的细胞材料的准备; (2)通过在低温下的固态研磨细胞破裂;和(3)蛋白提取和使用抗体偶联的顺磁珠亲和捕获。
这三个协议协力工作以(1)通过低温球磨制备固态破损的细胞,(2)实现在行星式球磨机破损,以及(3)产生提取从细胞粉末与亲和捕获目的蛋白质在复合其生理作用因子。许多不同的细胞裂解技术存在,包括采用冲击粉碎,剪切和/或压力机械/物理方法,以及化学/酶学方法,各有不同的优点和缺点49,50。每个调查员鼓励探索最适合自己的方法分析,牢记细胞破损和蛋白提取任意选择的方法很可能会推出偏见51,52迫使经验优化(见下文)。机械方法可以产生高热量和/或剪切力可破坏蛋白质复合物。通过低温球磨采用凭借在t样品的液氮冷却避免了热效应该方法的他持续时间。行星球磨机被理解为依靠影响力和摩擦力,包括剪切应力,随着粒径的减小53,54的组成部分。在设置报道我们没有观察到蛋白质复合物变性。事实上,我们已经提取并回收显然完好〜50丙二醛核孔复合物11和酶不是采用'温柔'去污剂裂解7筹备参展更高的比活性的活性反转录转座子。细胞裂解的化学品/酶学方法从限制,即该单元的内容被释放到支持细胞膜和结构的大分子的破坏,但可能不适合于维持所述蛋白质复合物的完整性的体外环境(ES遭受) 出于兴趣。频繁,既不形成与感兴趣的蛋白质复合物的成分,也没有必要的条件,以稳定在目标配合物是预先已知的。固态铣的一个主要好处是,破碎和提取解耦,允许源材料中不含添加液体制备,贮存(-80℃以下),聚敛,方便按需检索实验; 例如,为了在亲和捕获体外条件探索优化。蛋白质的相互作用是在高浓度55,56最稳定的,因此最小化萃取剂的体积可以用于保持生理相互作用是有利的。另一方面,也有实际的考虑 – 蛋白质复合物就需要分区出细胞和成非粘性的水相,无不溶聚集体,以混在一起的亲和力介质靶复合物。此外,需要一种用于系统化和重复性在体外环境(pH值,盐浓度等 )一些标准化和控制。我们发现,提取公关oduced中的稀释范围1:4-1:9(W:V)满足实际和理论问题,产生高质量的结果。另外,也可以测定细胞提取物的最佳比例,以亲合介质的需求。这是根据经验通过提取物的滴定用不同量的亲和力介质的完成,可对试验的信噪比检测的效果,下面进一步讨论。靶蛋白的一个极好的消耗通常是靶蛋白的可溶部分的≥70%,但> 90%是可取的,可以是与提取条件小心参数实现的。许多这样的实际考虑覆盖在参考文献1。顺磁性珠粒在一个专门的微离心管架使用钕磁铁操纵,虽然自制替代方案是可行的。当放置在支架内时,小珠收集在管的磁场的影响下的一侧。溶液然后可未经二除去sturbing珠。
所提出的低温球磨协议的一个限制,以此处使用的行星式球磨机显影(见材料数据表 ),是材料的最小量以有效轧机和使用该装置(> 1克)回收细胞的粉末。这样的量很容易与许多微生物,细胞系,和模式生物获得,并且也经常与从实验室动物切下的组织来实现。然而,某些细胞系可能是非常困难的丰度和动物组织生长可能是稀少。材料可以将少量使用利用较小的容器的其他设备所取得的粉末细度的牺牲可比研磨,虽然可能。此外,机械研磨设备的成本可以是用于某些实验室昂贵。使用有害低温球磨可以使用多种替代设置14-19来实现,其中最经济地用手乐和迫击炮,虽然破损效率大幅下降。亲和捕获的协议典型地瞄准细胞裂解的具有高效率,以促进最大蛋白质提取到溶液中,因此,为对靶蛋白质复合物的捕获最大的潜力。另一方面,已经证明在体外剪接酵母提取该最大裂解可以不与体外生化活性57,58最大等同。我们并没有在我们迄今已经测试了系统观察到这样的问题,因此,在低温球磨不刻意限制我们的细胞破裂。然而,这种可能性应该考虑优化体外酶测定时承担。虽然低温球磨为破碎细胞的高效方法,超声处理有限数量往往有利于从哺乳动物组织生产均匀全细胞提取物,因为不均匀的聚集物有时可以通过视觉检查来观察:典型地在萃取条件下,使用低到中等盐(100-300毫米)和非离子型洗涤剂(0.1-1%V / V)的浓度。因为我们观察到,这些聚集体的存在可减少随后的亲和捕获的产率和/或质量,我们经常实施超声处理以分散它们(即使当它们不是用肉眼观察到的)。聚集体与团聚膜碎片,可比以前从研磨酵母细胞中提取58报道的一致。超声处理也用于某些协议剪切DNA和解放染色质片段成溶液,然而,在该协议施加超声处理的程度没有明显的片段的DNA。优异的亲和配体或抗体针对感兴趣的特定蛋白质的有限可用性(或成本高)可以是另一种障碍。市售的亲和试剂的广泛可利用,当模式生物是适合于基因组标记或TRansfection异位表达载体,允许的利益,因为亲和标记的融合蛋白质的表达。但是,生产定制的抗体已经越来越可行和多克隆和单克隆抗体可以在亲和捕获应用优异的性能。这些多方面的考虑,也包括在更详细的参考1。
如何亲和力介质的细胞裂解的方法和选择会影响结果的例子在图1中示出。由不同的萃取剂施加影响的例子可在参考文献1,11,24中可以看出。因为这些和其它实验参数影响亲和捕获的质量,使得难以辨别的FP,“珠蛋白质组”和计算方法的库,以消除非特异性的污染物已被开发,以协助确定的FP 40-43。然而,这种方法只substit尤特最佳样品制备在有限的程度59。观察最佳实践和经验优化亲和捕获实验将提供最优质的样本进行下游分析,下面进一步讨论。可提高样品纯度容易实现的做法是原生洗脱。天然洗脱最常用于获得亲和力分离的蛋白质复合物,完整的,用于进一步的实验;但是,因为它经常提高样品的纯度,但也可以用于单独这个原因。然而,如在图1中 ,面板II表明,天然洗脱来改善样品纯度的能力可取决于亲和力培养基在细胞提取物中的目标蛋白质的丰度的量的精确滴定-当介质是在过量,未被占用的互补位可以允许FP蛋白在原生洗脱级分观察到的脱靶的积累。使用此处描述的试剂和方法,它ħ如我们的经验是FP的我们的实验的一个最大的贡献者是被标记的蛋白质本身一旦从活细胞的上下文中除去。 (图1.II与图S1)。在这样的情况下,即在不存在抗原的产率无关蛋白质组亲代细胞系的控制是没有实际价值的;同样,对于标签的唯一或穗在那些缺乏什么,但靶抗原的控制。因此,每当实际我们实现的I-DIRT 7.38,直接测量用定量质谱裂解后-蛋白质相互作用的积累。在协议中的步骤3.2.7所提到的,用于本机洗脱程序将与所使用的亲和系统的细节而变化。天然洗脱最常由标签的标记的蛋白质复合物或蛋白水解切割的有竞争力的位移来实现,释放从亲和介质的复合物。由小表位标签的亲和力几个系统的存在,FOR,它的表位本身可作为肽用于标记蛋白质复合物60的竞争性洗脱有用。同样地,几种蛋白酶可特异性裂解的同源位点策略性地放置在亲和力标记的融合蛋白61。取决于所选择的亲和系统的具体情况,适当的洗脱方案可以被采用。
通常,所得到的结果的质量会显著由样品制剂的质量的影响。重要的是要通过这些协议的每一步仔细和精确地工作,并尽可能快速地,同时维持护理和精度。最好是通过每个步骤来跟踪感兴趣的蛋白质的分区来了解每个操作的效率。例如:如何丰富是在所讨论的细胞或组织目的蛋白质?也许正在研究(及其复合物)的蛋白质将是具有挑战性的质量来表征法因低丰度。如果纯化的复合物是由一般的蛋白染色(约纳克范围)检测,质谱法是有可能成功。如果感兴趣的捕获蛋白质只能由敏感增强化学发光Western印迹(约皮克范围)进行检测,质谱是不太可能是有效的。即使感兴趣的蛋白质是在细胞内丰富,如何丰富是它在细胞提取物产生的?是否蛋白分区的溶液或者是它在沉淀中?如果是后者,一个新的提取溶液可设计可提高回收率。一旦进入细胞提取物与亲和介质结合,如何有效地被该蛋白质捕获?是否仍然蛋白通过以后的洗涤约束?那么其他copurifying蛋白质?通过保存在协议的适当步骤的每个样品的等分试样这些问题可以容易地回答,一般是通过Western印迹针对感兴趣的蛋白或一般的蛋白质染色,但其它测定法也可以是合适的。优化每一步骤将提高捕获复合物的产率和纯度,虽然有可能在最大化一个属性或其他要作出折衷。
亲和捕获的许多研究人员的一个典型应用是在一个小数目的感兴趣的蛋白质的体内相互作用物鉴定候选;这些候选人通常经受验证通过正交方法在体内表现出的物理交互件的生物学意义。亲和捕获也由高通量研究用于产生copurifying一个(几乎)蛋白质组范围的基础上观察到的蛋白质,有利于有关体内络合物推定计算推断列表。这些研究的许多例子可在文献中找到。这种方法foregoes的捕获条件的优化对于任何给定的目标有利于探索的人ÿ目标;因此,推断络合物本身很少检索到的任何给定样品中充分完整和高纯度。相反,在许多不同的亲和捕获的样本之间观察到组合物的部分重叠用作推论42的基础。这两种方法提供宝贵的数据,我们对相互作用组的认识。然而,亲和捕获的一个主要的好处是,它不会经常提供的机会,以获得完整的和高度纯化的,其前提是作出努力来优化该过程的复合物。我们认为,该方法的未来在于增加的容易性和优化的内源性蛋白复合物11的捕获效率,对于生理交互件和在进一步的下游生化,酶学更经常地使用,和结构研究的色域的更准确的评估, 如引用7,9,23。
The authors have nothing to disclose.
我们感谢布赖恩T.蔡特教授的宝贵意见,支持和获得MS仪器,以及R.凯利女士莫洛伊优秀的技术支持。我们感谢凯利裸女士与副本编辑支持。这项工作是由美国国立卫生研究院资助P41GM109824,P41GM103314和P50GM107632的部分资助。
Growth media & cell culturing implements | For producing frozen cells (I) | ||
500 cm^2 culture dishes | Corning | 431110 | For producing frozen cells (I) |
Large beaker (1-2L) | For producing frozen cells (I) | ||
Rectangular ice pan | Fisher Scientific | 13-900-747 | For producing frozen cells (I), & cryomilling (II) |
Phosphate buffered saline (PBS) | For producing frozen cells (I) | ||
Large cell scrapers | Fisher Scientific | 08-100-242 | For producing frozen cells (I) |
Liquid nitrogen | For producing frozen cells (I), cryomilling (II), & affinity capture (III) | ||
50 ml conical tubes | Corning | 352098 | For producing frozen cells (I), & cryomilling (II) |
20 ml Luer lock syringe | For producing frozen cells (I) | ||
Leur lock syringe caps | www.dymax.com | T11182 | For producing frozen cells (I) |
Refrigerated centrifuge | For producing frozen cells (I) | ||
50 ml tube rack, 4 position | For producing frozen cells (I), cryomilling (II), & affinity capture (III) | ||
Styrofoam box | For producing frozen cells (I), cryomilling (II), & affinity capture (III) | ||
Planetary ball mill, PM 100 | Retsch | 20.540.0001 | For cryomilling (II) |
Stainless steel milling jar, 50 ml | Retsch | 01.462.0149 | For cryomilling (II) |
Stainless steel milling balls, 20 mm Ø | Retsch | 05.368.0062 | For cryomilling (II) |
Lid gasket: PFA encapsulated spring energized seal, 2.62 mm 44.63 mm | www.marcorubber.com | T1044-2.62×44.63 | For cryomilling (II) |
mini-LN2 decanter | homemade | see Ref 19 | For cryomilling (II) |
250 ml PTFE jar insulator (optional) | Retsch | custom order | For cryomilling (II) |
PTFE puck insulator (optional) | homemade | The Rockefeller University | For cryomilling (II); can be produced by The Rockefeller University High Energy Physics Instrument Shop, or design blueprints provided, upon request. |
5 bar/500 KPA pressure relief valve (optional) | http://www.leeimh.com/ | 558 series check valve | For cryomilling (II) |
1.5 – 2 ml microfuge tubes | For affinity capture (III) | ||
Extractant | For affinity capture (III) | ||
cOmplete EDTA free protease inhibitor cocktail tablets | Roche Applied Science | 11873580001 | For affinity capture (III) |
Vortex mixer | For affinity capture (III) | ||
Ice bucket | For affinity capture (III) | ||
Microtip sonicator, Q700 | Qsonica | Q700 | For affinity capture (III) |
low intensity 1/16” microtip probe | Qsonica | 4717 | For affinity capture (III) |
Bench-top refrigerated microcentrifuge | For affinity capture (III) | ||
Dynabeads M-270 Epoxy | Thermo Fisher | 14302D | For affinity capture (III) |
Antibody or affinity ligand coupled to Dynabeads | homemade | For affinity capture (III); see reference 19 | |
Sample rotator | For affinity capture (III) | ||
Neodymium magnet | Life Technologies | 123-21D | For affinity capture (III) |
SDS-PAGE sample buffer (no reducing agent) | For affinity capture (III) | ||
DTT | For affinity capture (III) | ||
SDS-PAGE system | For affinity capture (III) | ||
SDS-polyacrylamide gel | For affinity capture (III) | ||
Protein Stain | For affinity capture (III) |