This publication demonstrates methods for successful sampling and culture of nasal epithelial mucosa from children, and reprogramming these cells to induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs).
Nasal epithelial cells (NECs) are the part of the airways that respond to air pollutants and are the first cells infected with respiratory viruses. They are also involved in many airway diseases through their innate immune response and interaction with immune and airway stromal cells. NECs are of particular interest for studies in children due to their accessibility during clinical visits. Human induced pluripotent stem cells (iPSCs) have been generated from multiple cell types and are a powerful tool for modeling human development and disease, as well as for their potential applications in regenerative medicine. This is the first protocol to lay out methods for successful generation of iPSCs from NECs derived from pediatric participants for research purposes. It describes how to obtain nasal epithelial cells from children, how to generate primary NEC cultures from these samples, and how to reprogram primary NECs into well-characterized iPSCs. Nasal mucosa samples are useful in epidemiological studies related to the effects of air pollution in children, and provide an important tool for studying airway disease. Primary nasal cells and iPSCs derived from them can be a tool for providing unlimited material for patient-specific research in diverse areas of airway epithelial biology, including asthma and COPD research.
Le cellule staminali pluripotenti indotte da campioni umani (hiPSCs) sono una tecnologia in rapido sviluppo della ricerca sulle cellule staminali. Essi offrono un'alternativa alle cellule staminali embrionali (hESC) ricerca con molti meno inconvenienti etici e morali 1,2. Anche se non sono identici a epigeneticamente hESC 3-5, hiPSCs offrono un modo unico per modello di sviluppo e di malattia fenotipi, e possono essere derivati da tessuti rilevanti per lo stato di malattia 5-8. Nuovi metodi di hiPSCs elettrogeni sono costantemente in fase di studio per identificare i tipi di cellule ottimali per cominciare, come un modo per preparare iPSCs GMP qualità adatte per il trapianto, e anche per aumentare la tempestività e l'efficienza del processo di riprogrammazione 6,9-11.
Cellule epiteliali delle vie aeree sono fondamentali per lo sviluppo di infiammazione allergica 12, e l'epitelio è una delle principali cause di reazioni allergiche e rimodellamento delle vie aeree attraverso l'interazione con immunE e stromali cellule. L'epitelio delle vie aeree gioca un ruolo essenziale nella genesi e la persistenza di malattie polmonari come asma. Tuttavia, più bassa delle vie aeree cellule epiteliali sono difficili da ottenere in un ambiente clinico, soprattutto da pazienti sani di controllo e bambini. I dati provenienti da diversi studi supportano la premessa che le cellule epiteliali da mucose nasali sono un proxy valido e pratico per vie aeree inferiori cellule epiteliali 13-20, soprattutto quando si studiano le risposte alle sostanze inquinanti e allergeni. La mucosa nasale si compone di oltre il 90% di cellule epiteliali ciliate delle vie aeree e di campionamento queste cellule epiteliali nasali (NEC) può essere facilmente effettuata in bambini di età quattro o cinque, in quanto è meno invasivo rispetto ad altre tecniche di campionamento di cellule / tessuti ed è associato con un rischio minimo di effetti collaterali come l'infezione 20-23. Esso offre un modo veloce e semplice per assaggiare sia i bambini sani e malati senza lunghe, inutili, e spesso doloroso Operazi broncoscopiares che necessitano di sedazione. Studi precedenti hanno dimostrato che i sottotipi di malattia correlati alla gravità dell'asma possono distinguere sia nella mucosa nasale e campioni di cellule bronchiali prelevati da bambini asmatici, e l'espressione genica tra i due tipi di tessuto era simile in circa il 90% dei geni non onnipresenti 22 , 24. Come fonte per iPSCs, NEC offrono vantaggi rispetto ad altri tipi di cellule utilizzate di frequente. I fibroblasti sono spesso utilizzati per la generazione COPSI, ma anche se queste cellule possono essere facilmente coltivate da una biopsia cutanea, questo processo richiede tipicamente anestesia locale, una incisione e suture, ed è associata con qualche rischio di infezione. Pertanto, ottenendo consenso informato dai pazienti per questo tipo di biopsia può essere difficile 25. Una alternativa al fibroblasti è cellule mononucleari del sangue periferico (PBMC). Tuttavia, può essere difficile ottenere sangue sufficiente per la generazione COPSI da pazienti pediatrici. In aggiunta, ci sono limitazioni di ap vallecomplicanze di fibroblasti e cellule del sangue iPSCs derivate, in particolare la loro capacità di differenziazione di alcuni tipi di cellule 5,26. Pertanto, data la relativa accessibilità e il basso rischio di effetti collaterali a seguito della loro raccolta, NEC rappresentano una fonte di cellule ideale per la generazione iPSC da popolazioni pediatriche.
iPSCs hanno ricevuto molta attenzione recentemente come una piattaforma per lo studio dello sviluppo umano, la generazione di modelli di malattia romanzo, e come una potenziale fonte di cellule per le terapie personalizzate. Prima di tutto il potenziale di questa tecnologia può essere realizzato, le basi molecolari del processo di riprogrammazione hanno bisogno di essere chiariti, ma per ora questo protocollo e le procedure descritte nel potranno chiarire gli studi di ricerca focalizzati sulle esposizioni delle vie respiratorie, oltre a fornire una piattaforma per studiare gli effetti della medicina personalizzata che coinvolgono iPSCs.
Il lavoro di collaborazione di diversi laboratori ha portato alla generation di una tecnica efficace non solo per campionare la mucosa nasale, ma anche coltura NEC, e riprogrammare queste cellule per iPSCs 23. Questo articolo fornisce uno schema di un protocollo per il campionamento ottimale, coltura e condizioni di riprogrammazione.
Cellule epiteliali nasali (NEC) sono una piattaforma accessibile per studiare le malattie delle vie respiratorie, e NEC-iPSCs offrono un viale emozionante di esplorare lo sviluppo della malattia, il trattamento e la terapia 1,31,32. NEC può essere facilmente ottenuto senza procedure nocive stressanti o potenzialmente 6,23. Nella nostra esperienza, il campionamento della mucosa nasale come descritto in questo protocollo appare meno stressante e meglio percepita di raccolta sangue per i bambini. Per…
The authors have nothing to disclose.
Gli autori vorrebbero riconoscere il pluripotenti cellule staminali strumento e la Confocale Imaging Nucleo presso l'Ospedale dei bambini di Cincinnati. Questo lavoro è stato sostenuto da R21AI119236 (HJ), R21AI101375 (HJ), NIH / NCATS 8UL1TR000077-04 (HJ), U19 AI070412 (HJ) e 2U19AI70235 (GKKH).
15mL conical | Fisher Scientific | 14-959-49D | Protocol Step 1.1. |
BEGM | Lonza | CC-3170 | Protocol Step 1.1. |
Penn/Strep/Fungicide | Life Technologies | 15240-062 | Protocol Step 1.1. |
Penn/Strep | Life Technologies | 15140-122 | Protocol Step 4.a. |
cytosoft cytology brush | Fisher Scientific | 22-263-357 | Protocol Step 1.2. |
trypan blue | Fisher Scientific | MT-25-900-CI | Protocol Step 2.1. |
hemacytometer | Fisher Scientific | 02-671-54 | Protocol Step 2.1. |
PBS | Fisher Scientific | BP2438-4 | Protocol Step 2.2. |
Cytology Funnel Clips | Fisher Scientific | 10-357 | Protocol Step 2.2. |
cytospin funnel | Fisher Scientific | 23-640-320 | Protocol Step 2.2. |
Cytospin 4 | Fisher Scientific | A78300003 | Protocol Step 2.2. |
blank slide | Fisher Scientific | S95933 | Protocol Step 2.2. |
hema 3 stain kit | Fisher Scientific | 22-122-911 | Protocol Step 2.2. |
Bovine Dermal Colagen, type 1 | Life Technologies | A1064401 | Protocol Step 3.2. |
T25 flask | Fisher Scientific | 08-772-45 | Protocol Step 3.3. |
Trypsin | Lonza | CC-5012 | Protocol Step 5.2. |
Trypsin Neutralizing Solution | Lonza | CC-5002 | Protocol Step 5.2. |
Fetal Bovine Serum (FBS), heat sterilized at 65°C for 30min | Sigma-Aldrich | F2442 | Protocol Step 5.5. |
Dimethyl sulfoxide Hybri-Max™, sterile-filtered, BioReagent, suitable for hybridoma, ≥99.7% - | Sigma-Aldrich | D2650 | Protocol Step 5.5. |
polycistonic lentivirus* | e.g. Millipore | SCR511 | Protocol Step 6.4. A commercial source of reprogramming vector is listed. We routinely use the 4-in-1 plasmid reported by Voelkel et al (PMID: 20385817) to generate VSV-G-pseudotyped polycistronic reprogramming lentivirus in-house. This plasmid can be obtained by contacting |
polybrene | Santa Cruz Biotechnology | sc-134220 | Protocol Step 6.4. |
Irradiated CF1 MEFs | GlobalStem | GSC-6301G | Protocol Step 6.4. |
hESC media | See recipe included in protocol | Protocol Step 6.11. | |
SB431542 | Stemgent | 04-0010 | Protocol Step 6.11. |
PD0325901 | Stemgent | 04-0006 | Protocol Step 6.11. |
Thiazovivin | Stemgent | 04-0017 | Protocol Step 6.11. |
hESC-qualified Matrigel | BD Biosciences | 354277 | Protocol Step 6.13. |
Corning plate, 6 well | Fisher Scientific | 08-772-1B | Protocol Step 6.13. |
mTeSR1 | StemCell | 5850 | Protocol Step 6.13. |
250mL disposable filter flask (0.22µm) | Fisher | SCGP-U02-RE | |
dispase | StemCell | 7923 | Protocol Step 7.3. |
DMEM/F12 | Life Technologies | 11320-033 | Protocol Step 7.3. |
cell lifter | Fisher Scientific | 08-100-240 | Protocol Step 7.4. |
hESC Media** | Protocol Step 6.11. components should be mixed and then filter sterilized. Media can be kept at 4°C for up to two weeks. When warming media, do not leave at 37°C longer than 15 min |
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DMEM-F12 50/50 media | Invitrogen | 11330-032 | Final Concentration |
KO replacement serum (KO-SR) | Invitrogen | 10828-028 | 0.2 |
200mM L-glutamine | Invitrogen | 25030-081 | 1mM |
55mM ß-mercaptoethanol | Invitrogen | 21985-023 | 0.1mM |
100x non-essential amino acids | Invitrogen | 11140-050 | 1x |
2ug/mL Basic-Fibroblast Growth Factor (b-FGF) | Invitrogen | 13256-029 | 4ng/mL |