Presented is a concise battery of mouse neonatal motor tests. Using these tests, neonatal motor deficits can be demonstrated in a variety of neonatal motor disorders. By having a standardized set of tests, results from different studies can be compared, allowing for better and accurate reporting between groups.
As the sheer number of transgenic mice strains grow and rodent models of pediatric disease increase, there is an expanding need for a comprehensive, standardized battery of neonatal mouse motor tests. These tests can validate injury or disease models, determine treatment efficacy and/or assess motor behaviors in new transgenic strains. This paper presents a series of neonatal motor tests to evaluate general motor function, including ambulation, hindlimb foot angle, surface righting, negative geotaxis, front- and hindlimb suspension, grasping reflex, four limb grip strength and cliff aversion. Mice between the ages of post-natal day 2 to 14 can be used. In addition, these tests can be used for a wide range of neurological and neuromuscular pathologies, including cerebral palsy, hypoxic-ischemic encephalopathy, traumatic brain injury, spinal cord injury, neurodegenerative diseases, and neuromuscular disorders. These tests can also be used to determine the effects of pharmacological agents, as well as other types of therapeutic interventions. In this paper, motor deficits were evaluated in a novel neonatal mouse model of cerebral palsy that combines hypoxia, ischemia and inflammation. Forty-eight hours after injury, five tests out of the nine showed significant motor deficits: ambulation, hindlimb angle, hindlimb suspension, four limb grip strength, and grasping reflex. These tests revealed weakness in the hindlimbs, as well as fine motor skills such as grasping, which are similar to the motor deficits seen in human cerebral palsy patients.
El desarrollo de nuevos modelos de lesión o enfermedad pediátrica usando roedores es a menudo difícil debido a la sorprendente capacidad de ratas y ratones a recuperarse rápidamente de la lesión neurológica. Por lo tanto, con el fin de validar cualquier nuevo modelo de enfermedad pediátrica, examinando a fondo los cambios celulares y moleculares deben ir mano a mano con los resultados conductuales. En muchos sentidos, la recuperación funcional de la conducta puede ser más importante que los cambios celulares subyacentes en términos de relevancia terapéutica o de traslación. A medida que los investigadores aprenden más sobre lesiones en el adulto y el recién nacido, es evidente que sus respuestas son muy diferentes y no se pueden extrapolar entre los dos. Por ejemplo, los ratones neonatales muestran diferentes niveles de factor de crecimiento nervioso, factor neurotrófico derivado del cerebro, neurotrofina-3 y el factor neurotrófico derivado de la línea celular glial después de una lesión de la médula espinal 1,2. Además, los recién nacidos tienen significativa permeabilidad de la barrera hematoencefálica después del accidente cerebrovascular 3, demonstrate reordenamiento neurona cortical después de la lesión del nervio periférico 4, y tienen una astrogliosis retrasado o desacelerado después de una lesión de la médula espinal y la hipoxia-isquemia 5,6. Por lo tanto, es importante que la investigación pediátrica de traslación utilizar modelos de desarrollo equivalentes y que esos modelos se evalúan para los cambios moleculares / celulares y pruebas de comportamiento apropiadas para la edad.
La parálisis cerebral (PC) es un trastorno motor que afecta a 3: 1000 nacidos vivos al año (NIH). Los niños con CP presentan una serie de síntomas y condiciones comórbidas, dependiendo de la gravedad de la enfermedad. Dificultad con el movimiento y la coordinación son los signos más comunes, junto con los retrasos en alcanzar los hitos del desarrollo motor. Otros signos incluyen tono muscular anormal (ya sea aumentado o disminuido), la reducción de las habilidades motoras finas, dificultad para caminar, tragar y babeo excesivo y retrasos en el habla (NIH). La causa subyacente de CP se cree que esuna falta de oxígeno y / o el flujo de sangre al cerebro durante el período de pre- o periparto, o hasta un año después del parto. Además, la inflamación es ahora cree que es un componente clave en el desarrollo de CP.
La mayoría de los casos de CP están asociados con daño de la sustancia blanca alrededor de los ventrículos, conocidas como leucomalacia periventricular (PVL). Este sello neurológica sugiere que la lesión inicial que conduce a CP se produce durante el período de desarrollo del cerebro cuando los oligodendrocitos son más vulnerables a los insultos. El período de crecimiento rápido de los oligodendrocitos en un ser humano, también el período en que los oligodendrocitos son los más susceptibles a las lesiones, es entre 24 – 32 semanas de gestación. En los roedores, el período equivalente es días postnatales 2 – 7 7, y es cuando se induce CP en este modelo.
El modelo de ratón neonatal de CP que se utilizó para realizar las pruebas descritos aquí combina la hipoxia e isquemia con la inflamación para crear un injUry que mejor imita la neurodegeneración ven en CP humano. Este modelo aborda algunas de las principales deficiencias observadas en otros modelos animales de CP, que carecen de los déficits distintos de motor que se asemeja a los pacientes con PC humanos, así como distintos daño de la materia blanca. Estudios previos realizados por un colaborador con el mismo modelo han demostrado que la adición de la inflamación aumenta el daño de la sustancia blanca, por lo tanto emular mejor el PVL visto en niños con parálisis cerebral 8. Sobre la base de los datos anteriores, este trabajo presenta una batería de pruebas de motor neonatales con el fin de evaluar los cambios en la conducta motora como las edades de los animales.
El uso de modelos animales para estudiar enfermedades humanas sólo es relevante si existe una superposición entre la respuesta celular y molecular entre humanos y roedores, y que las pruebas de comportamiento realizadas tienen relación directa con los síntomas humanos. Uno de los principales problemas con los estudios de enfermedades pediátricas es que muchos investigadores utilizan roedores adultos para crear el modelo, así como la evaluación del comportamiento de roedores adultos, sin tener en cuenta las diferencias de desarrollo que pueden ser importantes para el proceso de la enfermedad. Debido a estos problemas, es importante que la investigación sobre el uso de enfermedad pediátrica no sólo el ajustada desarrollo puntos de tiempo apropiado (por ejemplo, el desarrollo de CNS humano a las 28 – 32 semanas es equivalente a un día post-natal 2-7 días roedor) 7, sino también las pruebas de comportamiento que se examinarán de motor adecuada, los comportamientos del desarrollo sensorial o reflexivos. Por lo tanto, a medida que se desarrolla cada nuevo modelo de enfermedad neonatal, debe ser probado rigurosamente para asegurar que el celulary las respuestas de comportamiento proporcionarán los datos traducibles más adecuadas entre roedores y humanos.
La parálisis cerebral es un trastorno motor, que persisten en la edad adulta. Un problema con muchos de los modelos disponibles en la actualidad la parálisis cerebral es la falta de pruebas de motor repetible, estandarizada que puede correlacionarse con los déficits observados en los pacientes pediátricos. En este nuevo modelo, que combina la hipoxia, la isquemia y la inflamación en un ratón neonatal, el comportamiento motor se evaluó usando una batería de pruebas específicas para ratones neonatales. Con el fin de disminuir la subjetividad y aumentar la información cuantitativa, varias pruebas han sido modificados para incluir muy específico, pero fácil de evaluar las medidas que pueden ser estandarizados. Además, las evaluaciones delanteros y los miembros posteriores se pueden realizar por separado, y las diferencias de izquierda / derecha se pueden determinar. Esta batería de pruebas es específica para ratones recién nacidos hasta dos semanas de edad.
Este modelo demuestra CPdificultad para caminar (ambulación, ángulo del pie de las extremidades posteriores), así como la debilidad de las extremidades específica (suspensión de cuatro extremidades, suspensión posterior), y los déficit en los reflejos del desarrollo (agarrar reflejo). Aunque en este estudio se examinó sólo un punto de tiempo, estos déficits pueden ser rastreados a través del tiempo.
Hay otras series de pruebas que pueden utilizarse en el recién nacido, tales como la batería del Fox de pruebas o evaluación de hitos del desarrollo de 15 Heyser. Sin embargo, estas pruebas comparan el recién nacido al adulto, cuyas respuestas no son necesariamente lo mismo porque el recién nacido aún está en desarrollo. La batería de Fox y pruebas Assement de Heyser se basan en información subjetiva de observación con evaluación dicotómica (sí o no), en lugar de los datos objetivos (ángulo de la postura, sobre la base de la fuerza, etc). Debido a la subjetividad de estas pruebas, muchos científicos se han adaptado, añadido o eliminado criterios, con lo que sus resultados incomparables a los demás y límiteing la utilidad de los datos en términos de establecer un déficit línea de base para una enfermedad o trastorno particular. Mediante el establecimiento de un conjunto de pruebas de motor estandarizados que son cualitativa y específicamente diseñado para probar los recién nacidos, los resultados de los grupos de investigación individuales pueden ser precisa y fiable y se comparan.
The authors have nothing to disclose.
We would like to thank everyone at Shriners Hospital Pediatric Research Center, in particular Dr. Mickey Seltzer, of whom without his support, this work would not have been funded. In addition, we would like to thank Isha Srivastava, who contributed to early data collection and Amy He, who helped with the figures. This study was funded by Shriners Hospitals for Children. No funding source played a role in experimental design or decision to submit the paper for publication.
C57BL/6 mice | Charles River Laboratories | STRAIN CODE: 027 | C57BL/6NCrl is the exact strain we use |
Anesthesia Dish, PYREX™ Crystallizing Dish | Corning Life Sciences Glass | 3140125 | Capacity: 25.03 oz. (740mL); Dia. x H: 4.92 x 2.55 in. (125 x 65mm). However, any small round glass container will work. A 2 cup capacity pyrex food storage bowl with flat bottom will also work and is much cheaper (Pyrex model number: 6017399). |
Covered lead ring | Fisher Scientific | S90139C | Lead ring for stablizing flasks in a water bath. It is used inside the anesthesia dish. |
Scalpel Blade #11 | World Precision Instrucments, Inc. | 500240 | |
Small Vessel Cauterizer | Fine Science Tools | 18000-00 | |
Micro Hook | Fine Science Tools | 10064-14 | |
Vetbond Suture Glue | 3M | 1469SB | n-butyl cyanoacrylate adhesive |
Lipopolysaccharide | Sigma Life Science | L4391 | Lipopolysaccaride from e.coli 0111:B4, gamma irradiated |
12×12 inch opaque box | Acrylic Display Manufacturing: A division of Piasa Plastics | C4022 | Colored Acrylic 5-Sided Cube, 3/16" Colored Acrylic, 12"W x 12"D x 12"H; http://www.acrylicdisplaymfg.com/html/cubes_19.html |
Camera/camcorder | JVC | GC-PX100BUS | Any camcorder that works well in low light and can be imported and edited. We use the JVC GC-PX100 Full HD Everio Camcorder. |
Covidien Tendersorb™ Underpads | Kendall Healthcare Products Co | 7174 | |
WypAll L40 | Kimberly-Clark Professional | 5600 | Any surface with moderate grip will do |
Surface at 45 degree incline | We use a cardboard box. | ||
Thin wire from a pipe cleaner | Creatology | M10314420 | Any pipe cleaner from any craft store will work. |
50mL conical tube | Falcon | 352070 | |
Fiberglass Screen Wire | New York Wire www.lowes.com | 14436 | Any supplier can be used as long as their screen is 16×16 or 18×16 |
Razor blade | Fisherbrand | 12-640 | A wooden stick applicator or wooden part of a cotton-tipped swab will also work. |
OPTIX 24-in x 4-ft x 0.22-in Clear Acrylic Sheet to make Clear Acrylic Walkway | PLASKOLITE INC | 1AG2196A | Clear acrylic (1/8" thick) with sides and a top to limit exploration. We bought a sheet of acrylic from a local hardware store and had them cut it to size. (2) 2"x2"; (3) 2"x 18"; (1) 2"x15.5"; (1) 2"x3". Using clear tape, tape all sides together, with the 15.5" piece on top. Tape the 3" piece to the end of the 15.5" piece to create a flap/entryway for the mice. Alternatively, part or all of the walkway can be glued together, and only taping on the top pieces. This design will allow for the walkway to be opened for easy cleaning. |
Protractor | Westscott | ACM14371 |