Summary

Fluorescentie en Bioluminescentie beeldvorming van Subcellulaire Ca<sup> 2+</sup> In Aged hippocampus Neuronen

Published: December 01, 2015
doi:

Summary

Intracellular Ca2+ remodeling in aging may contribute to excitotoxicity and neuron damage, processes mediated by Ca2+ overload. We aimed at investigating Ca2+ remodeling in the aging brain using fluorescence and bioluminescence imaging of cytosolic and mitochondrial Ca2+ in long-term cultures of rat hippocampal neurons, a model of neuronal aging.

Abstract

Gevoeligheid voor neuron celdood geassocieerd met neurodegeneratie en ischemie zijn zeer toegenomen in de leeftijd van hersenen, maar mechanismen die verantwoordelijk zijn slecht bekend. Excitotoxiciteit een proces zou kunnen bijdragen aan zenuwbeschadiging veroorzaakt door zowel beledigingen wordt gemedieerd door activering van glutamaatreceptoren die Ca2 + influx en mitochondriale Ca2 + overload bevordert. Een belangrijke verandering in de intracellulaire Ca 2+ homeostase of verbouwen van de intracellulaire Ca 2+ homeostase kan neuron schade in het oude neuronen bevorderen. Voor het onderzoeken van Ca 2+ remodeling bij veroudering hebben we gebruik live cell imaging op lange termijn culturen van de rat hippocampus neuronen die lijken op sommige aspecten neuronen in vivo jaar. Voor dit doel, de hippocampus cellen, op de eerste plaats, vers verspreid van nieuwe zeepaardjes geboren rat en uitgeplaat op poli-D-lysine gecoat glas dekglaasjes. Daarna kweken worden in gecontroleerde media gedurende meerdere dagen of meerdere wEeks voor het onderzoeken van jong en oud neuronen, respectievelijk. Ten tweede worden gekweekte neuronen geladen met fura2 en onderworpen aan metingen van cytosolische Ca2 + -concentratie die digitale fluorescentieverhouding imaging. Ten derde worden gekweekte neuronen getransfecteerd met plasmiden die een tandem lage affiniteit aequorine en GFP gericht op mitochondria. Na 24 uur wordt aequorine in de cellen gereconstitueerd met coelenterazine en neuronen worden blootgesteld aan bioluminescentie beeldvorming voor monitoring van mitochondriale Ca2 + -concentratie. Dit drietrapsprocedure maakt het monitoren van cytosolische en mitochondriale Ca2 + responsen op stimuli zoals bijvoorbeeld de glutamaat receptor agonist NMDA wensen of deze en andere reacties worden beïnvloed door veroudering. Deze procedure kan nieuwe inzichten opleveren over hoe veroudering beïnvloeden cytosolische en mitochondriale Ca2 + respons op geselecteerde stimuli en het testen van de geselecteerde geneesmiddelen ter voorkoming neuronenceldood in leeftijd gerelateerde ziekten.

Introduction

Excitotoxiciteit is een van de belangrijkste mechanismen die bijdragen aan neuronale schade en celdood in neurologische beledigingen zoals ischemie, en in sommige neurodegeneratieve ziekten zoals de ziekte van Alzheimer 1. Dit type neurotoxiciteit wordt voornamelijk gemedieerd door glutamaat handelen over Ca 2+ -doorlaatbare, ionotrope NMDA-receptoren (NMDAR) 2. Blootstelling van gekweekte neuronen glutamaat excitotoxiciteit kan tot 3, waarbij neuronale apoptose 4 veroorzaakt. Wij en anderen hebben eerder gemeld dat neuronale gevoeligheid voor NMDA-geïnduceerde apoptose kan veranderen in vitro ontwikkeling en veroudering 5-8.

Het is algemeen aanvaard dat een toename van de vrije cytosolische Ca2 + -concentratie ([Ca2 +] cyt) leidt tot activatie cellen. Als dit echter aanleiding te hoog is en / of voldoende duurzame, kan celdood 9 leiden. Bovendien is voorgestelddat excitotoxiciteit vereist mitochondriale Ca2 + opname 10, aangezien het behandelen neuronen met een mitochondriale ontkoppelaar beschermd neuronen tegen door glutamaat geïnduceerde celdood 11. Indien mitochondriën te veel Ca2 +, kan de opening van de mitochondriale permeabiliteittransitieporie plaatsvinden, waardoor los van cytochroom C en andere pro-apoptotische factoren, en het induceren van apoptose. We hebben onlangs aangetoond dat mitochondriële Ca2 + opname direct gerelateerd aan de leeftijd afhankelijke gevoeligheid voor excitotoxiciteit, door direct meten van NMDA-geïnduceerde mitochondriale Ca2 + opname in enkele hippocampale neuronen 5, een werkwijze die is beschreven in dit artikel. De hippocampus, die betrokken zijn bij fysiologische processen zoals leren, geheugen en andere cognitieve processen 12, zeer gevoelig voor veroudering en neurodegeneratieve aandoeningen 13. Voorgesteld is dat, na een aantal weken in vitro gekweekthippocampale neuronen tonen een aantal typische kenmerken van oude neuronen 14. Dienovereenkomstig kan op lange termijn gekweekte hippocampale neuronen een alomvattend model Ca 2+ gemedieerde mechanismen van verbeterde excitotoxiciteit bij veroudering onderzoeken bieden.

Het algemene doel van de gepresenteerde methode is dan ook aanzienlijke veranderingen in intracellulaire Ca2 + homeostase of Ca2 + remodellering in de ouder wordende hersenen onderzoeken waaronder differentiële Ca2 + responsen opgewekt door NMDA receptor agonisten op lange-termijn gekweekte hippocampale neuronen . De werkwijze bevat een gedetailleerde beschrijving van de cultuur van rat hippocampale neuronen en de controle cytosolische en mitochondriale Ca2 + concentraties van fluorescentie en bioluminescentie beeldvorming in individuele neuronen, respectievelijk. Fluorescentiebeelvorming van cytosolisch Ca2 + in gekweekte neuronen is een standaardprocedure. Deze methode is minder betrouwbaar voor subcellulaire Ca2 + metingen zoals mitochondriale Ca2 +. Redenen hiervoor zijn onder andere het ontbreken van een goede afstemming van de synthetische probes en ongepast affiniteit voor Ca 2+ concentraties die kunnen veranderen in de mitochondriën van de lage uM niveau zelfs tot het mM niveau. Het gebruik van Ca2 + probes op basis van eiwitten zoals bijvoorbeeld aequorine, kon de targeting naar subcellulaire organellen en gebruik van derivaten verschillende Ca2 + affiniteiten met verschillende coelenterazines of gemuteerde probes ontbreekt specifieke Ca2 + bindingsplaatsen 15. Op deze wijze kan bioluminescentie beeldvorming van cellen die aequorine-mitochondriën gerichte monitoring van mitochondriale Ca2 + concentraties in individuele neuronen mogelijk te maken. Toch kan deze procedure het gebruik van fotontellende camera's of ultragevoelige CCD camera's voor bioluminescentie 16-18 vereist. Deze werkwijze kan nieuwe resultaten op die in meer establ worden bevestigdished hersenen veroudering modellen als, bijvoorbeeld, de hersenen plakjes van oude dieren.

Protocol

Ethiek Verklaring: Procedure waarbij proefdieren zijn behandeld in het kader van protocollen door de Valladolid University stallen faciliteit goedgekeurd in overeenstemming met de Europese Conventie 123 / Raad van Europa en Richtlijn 86/609 / EEG. 1. korte en lange termijn Cultuur van Rat hippocampus Neuronen Bereiding van poly-D-lysine beklede, 12 mm dekglaasjes. Steriliseren 12 mm diameter glazen dekglaasjes in ethanol gedurende tenminste 24 uur. Laat ze drogen onder steriele omstand…

Representative Results

Hier beschrijven we een eenvoudige methode om Ca2 + remodeling en de effecten van NMDA op cytosolische en mitochondriale evalueren [Ca 2,] in oude neuronen. Figuur 1 toont het schema van de werkwijze voor het isoleren en kweken van hippocampale neuronen van neonatale ratten. Voordat u begint, moeten we steriele, poly-D-lysine gecoat glas dekglaasjes bereiden en vinden ze in een 4-goed gerecht. Vervolgens worden neonatale ratten gedood en de hersenen verwijderd. Na het isoleren van …

Discussion

De herinrichting van intracellulaire Ca2 + homeostase in het ouder wordende hersenen is gerelateerd aan cognitieve verliezen, verhoogde gevoeligheid voor ischemische schade, excitotoxiciteit en neurodegeneratie. Om deze hypothese in vitro onderzoeken, Ca 2+ beeldvormende procedures beschikbaar. Helaas, levensvatbare kweken van hippocampale neuronen oude niet betrouwbaar. Recentelijk is waargenomen dat langdurige culturen van de rat hippocampale neuronen onderhavige veel van de typische ken…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by Ministerio de Economìa y competitividad (BFU2012-37146) and Junta de Castilla y Leòn (BIO103/VA45/11, VA145U13 and BIO/VA33/13), Spain. MCR was supported by Junta de Castilla y Leòn (Spain) and the European Social Fund. We thank the late Dr. Philippe Brûlet (1947-2013) for the mitochondrial GFP Aequorin plasmid.

Materials

Neurobasal Culture Medium Gibco 21103-049
HBSS medium Gibco 14170-088
Ham's F-12 medium Gibco 31330-038
DNase I (from bovine pancreas) Sigma D5025-15KU
Fetal Bobine Serum Lonza DE14-801E
B27 Gibco 17504-044
Gentamicin Gibco 15750
L-glutamine Gibco 25030-032
12 mm glass coverslips Labolan 0111520/20012
Papain Worthington LS003127
4-well multidish plaques Nunc 176740
Petry dishes JD Catalan s.l. 2120044T
Sterile pipettes Fisher Scientific 431030
Fura2-AM Life Technologies F1201
Lipofectamine2000 Invitrogen 11668-027
Coelenterazine n Biotium BT-10115-2250 uG
Digitonin Sigma D5628
NMDA Sigma  M3262
Glycine Sigma 50046
Zeiss Axiovert S100 TV microscope Carl Zeiss Inc.
Xcite ilumination system EXFO
ORCA ER fluorescence camera Hamamatsu
VIM photon counting CCD camera Hamamatsu
VC-8 valve controller Warner Instruments
SH-27B heating system  Warner Instruments
Aquacosmos Software Hamamatsu Photonics

References

  1. Sattler, R., Tymianski, M. Molecular mechanisms of glutamate receptor-mediated excitotoxic neuronal cell death. Molecular Neurobiology. 24 (1-3), 107-129 (2001).
  2. MacDermott, A. B., Mayer, M. L., Westbrook, G. L., Smith, S. J., Barker, J. L. NMDA-receptor activation increases cytoplasmic calcium concentration in cultured spinal cord neurones. Nature. 321 (6069), 519-522 (1986).
  3. Choi, D. W., Maulucci-Gedde, M., Kriegstein, A. R. Glutamate neurotoxicity in cortical cell culture. The Journal of Neuroscience. 7 (2), 357-368 (1987).
  4. Kure, S., Tominaga, T., Yoshimoto, T., Tada, K., Narisawa, K. Glutamate triggers internucleosomal DNA cleavage in neuronal cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 179 (1), 39-45 (1991).
  5. Calvo, M., Sanz-Blasco, S., Caballero, E., Villalobos, C., Nunez, L. Susceptibility to excitotoxicity in aged hippocampal cultures and neuroprotection by non-steroidal anti-inflammatory drugs: role of mitochondrial calcium. Journal of Neurochemistry. 132 (4), 403-417 (2015).
  6. Liu, Y., et al. NMDA receptor subunits have differential roles in mediating excitotoxic neuronal death both in vitro and in vivo. The Journal of Neuroscience. 27 (11), 2846-2857 (2007).
  7. Zhou, M., Baudry, M. Developmental changes in NMDA neurotoxicity reflect developmental changes in subunit composition of NMDA receptors. The Journal of Neuroscience. 26 (11), 2956-2963 (2006).
  8. Brewer, L. D. Increased vulnerability of hippocampal neurons with age in culture: temporal association with increases in NMDA receptor current, NR2A subunit expression and recruitment of L-type calcium channels. Brain Research. 1151, 20-31 (2007).
  9. Berridge, M. J. Calcium signalling remodelling and disease. Biochemical Society Transactions. 40 (2), 297-309 (2012).
  10. Stout, A. K., Raphael, H. M., Kanterewicz, B. I., Klann, E., Reynolds, I. J. Glutamate-induced neuron death requires mitochondrial calcium uptake. Nature Neuroscience. 1 (5), 366-373 (1998).
  11. Pivovarova, N. B., et al. Excitotoxic calcium overload in a subpopulation of mitochondria triggers delayed death in hippocampal neurons. The Journal of Neuroscience. 24 (24), 5611-5622 (2004).
  12. Morris, R. G., Garrud, P., Rawlins, J. N., O’Keefe, J. Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions. Nature. 297 (5868), 681-683 (1982).
  13. Geinisman, Y., Detoledo-Morrell, L., Morrell, F., Heller, R. E. Hippocampal markers of age-related memory dysfunction: behavioral, electrophysiological and morphological perspectives. Progress in Neurobiology. 45 (3), 223-252 (1995).
  14. Sodero, A. O., Weissmann, C., Ledesma, M. D., Dotti, C. G. Cellular stress from excitatory neurotransmission contributes to cholesterol loss in hippocampal neurons aging in vitro. Neurobiology of Aging. 32 (6), 1043-1053 (2011).
  15. Brini, M., et al. Transfected aequorin in the measurement of cytosolic Ca2+ concentration ([Ca2+]c). A critical evaluation. The Journal of Biological Chemistry. 270 (17), 9896-9903 (1995).
  16. Villalobos, C., Alonso, M. T., Garcìa-Sancho, J. Bioluminescence imaging of calcium oscillations inside intracellular organelles. Methods in Molecular Biology. 574, 203-214 (2009).
  17. Villalobos, C., et al. Redistribution of Ca2+ among cytosol and organella during stimulation of bovine chromaffin cells. FASEB Journal. 16, 343-353 (2002).
  18. Rogers, K. L., et al. Visualization of local Ca2+ dynamics with genetically encoded bioluminescent reporters. The European Journal of Neuroscience. 21 (3), 597-610 (2005).
  19. Barreto-Chang, O. L., Dolmetsch, R. E. Calcium imaging of cortical neurons using Fura-2 AM. Journal of Visualized Experiments. (23), 1067 (2009).

Play Video

Cite This Article
Calvo-Rodríguez, M., Villalobos, C., Nuñez, L. Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons. J. Vis. Exp. (106), e53330, doi:10.3791/53330 (2015).

View Video