We present a method for the electroretinographic (ERG) analysis of zebrafish larvae utilizing micromanipulation and electroretinography techniques. This is a simple and straightforward method for assaying visual function of zebrafish larvae in vivo.
Elektroretinogrammet (ERG) er en noninvasiv elektrofysiologisk metode til bestemmelse af retinal funktion. Gennem anbringelse af en elektrode på overfladen af hornhinden, elektriske aktivitet genereret som reaktion på lys kan måles og anvendes til at vurdere aktiviteten af retinale celler in vivo. Dette håndskrift beskriver anvendelsen af ERG at måle visuel funktion i zebrafisk. Zebrafisk har længe været anvendt som en model for hvirveldyr udvikling på grund af den lette gensuppression med morpholino oligonukleotider og farmakologisk manipulation. 5-10 dpf kun kegler er funktionelle i larvernes retina. Derfor zebrafisk, i modsætning til andre dyr, er en kraftfuld modelsystem til undersøgelse af kegle visuel funktion in vivo. Denne protokol anvender standard anæstesi, mikromanipulering og stereomikroskopi protokoller, der er almindelige i laboratorier, som udfører zebrafisk forskning. De skitserede metoder gør brug af standard elektrofysiologi eqUDSTYR og en lav lys kamera til at styre placeringen af optagelsen mikroelektrode på larvernes hornhinden. Endelig demonstrere vi, hvordan en kommercielt tilgængelig ERG stimulator / recorder oprindeligt designet til brug med mus kan let tilpasses til anvendelse med zebrafisk. ERG af larver zebrafisk giver en fremragende metode til analyse kegle synsfunktionen hos dyr, der er blevet modificeret ved morpholino oligonukleotid injektion samt nyere genom teknikker såsom zink Finger nukleaser (ZFNs), Transskription Activator-Like Effector Nucleaser (Talens), og Clustered Regelmæssigt indbyrdes afstand Short palindromisk gentagelser (CRISPR) / Cas9, som alle i høj grad har øget effektiviteten og effekten af genmålretning i zebrafisk. Desuden, vi drage fordel af evnen af farmakologiske midler til at trænge zebrafisk larver at evaluere de molekylære bestanddele, der bidrager til photoresponse. Denne protokol beskriver en opsætning, der kan ændres og bruges af forskeremed forskellige eksperimentelle mål.
Elektroretinogrammet (ERG) er en non-invasiv elektrofysiologisk metode, der har været anvendt i udstrakt grad i klinikken til at bestemme funktionen af nethinden hos mennesker. Den elektriske aktivitet som respons på en lys-stimulering måles ved at placere optagelse elektroder på den ydre overflade af hornhinden. Kendetegnene for stimulus paradigme og svaret bølgeform definerer de retinale neuroner, der bidrager til svaret. Denne fremgangsmåde er blevet tilpasset til anvendelse med en række dyremodeller, herunder mus og zebrafisk. Den typiske hvirveldyr ERG respons har fire hovedkomponenter: a-bølge, som er en hornhinde-negative potentiale afledt fra fotoreceptor celleaktivitet; b-bølge, en hornhinde-positivt potentiale afledt af ON bipolare celler; d-bølge, en hornhinde-positive potentiale tolkes som aktiviteten af OFF bipolære celler; og c-bølge, som forekommer flere sekunder efter b-bølge og afspejler aktivitet i Müller glia og RETginal pigment epitel 1-4. Yderligere referencer for at forstå historien og principperne for ERG analyse hos mennesker og dyremodeller er online lærebog, WebVision, fra University of Utah og tekster såsom principperne og praksis for Klinisk Elektrofysiologi af Vision 4, 5.
Danio rerio (zebrafisk) har længe været begunstiget som en model for hvirveldyr udvikling, på grund af sin hurtige modning og gennemsigtighed, som giver mulighed for noninvasiv morfologisk analyse af organsystemer, adfærdsmæssige analyser og fremadgående og tilbagegående genetiske skærme (til gennemgang, se Fadool og Dowling 6). Zebrafisk larver er meget modtagelige for genetisk og farmakologisk manipulation, som, når kombineret med deres høje frugtbarhed, gør dem en fremragende dyremodel for højt gennemløb biologiske analyser. Jo højere forholdet mellem kegler til stænger i larvernes zebrafisk – ca. 1: 1 i forhold til mus (~ 3% kegles) – gør dem særligt anvendelige til undersøgelse af kegle funktion 7-9.
I hvirveldyr nethinden, kegler udvikle før stængerne 10. Interessant, zebrafisk kegler er operative så tidligt som 4 dpf, der giver mulighed for selektiv elektrofysiologisk analyse af kegler på det tidspunkt 6, 11,12. I modsætning hertil ERG respons i stænger vises mellem 11 og 21 dpf 13. Derfor zebrafisk larver på 4-7 dpf tjene funktionelt som en all-kegle nethinden. Imidlertid er det native fotopiske ERG respons på 4-7 dpf larver domineret af b-bølgen. Anvendelse af farmakologiske midler, såsom L – (+) – 2-amino-4-phosphono-smørsyre (L-AP4) en agonist for metabotrope glutamatreceptorer (mGluR6) receptor ved den udtrykkes på bipolære celler, effektivt blokerer generation af b-bølge og afslører den isolerede kegle masse receptor potentiale ("a-bølge") 14-17.
Her beskriver vi en enkel og reliable fremgangsmåde til ERG analyse under anvendelse af kommercielt tilgængelige ERG udstyr beregnet til brug med mus, der er blevet tilpasset til brug med zebrafisk larver. Dette system kan anvendes på zebrafisk larver af varierende genetiske baggrunde, såvel som dem behandlet med farmakologiske midler, for at hjælpe forskerne i identifikationen af signalveje, der bidrager til visuel følsomhed og let tilpasning 16. De eksperimentelle procedurer i denne protokol vil guide efterforskere i brugen af ERG analyse til at besvare en række biologiske spørgsmål vedrørende visioner, og demonstrere opbygningen af en fleksibel ERG setup.
I denne protokol en enkel procedure for ERG optagelser af larver zebrafisk er detaljeret. Denne procedure giver mulighed for en hurtig og omfattende analyse af visuel function.There er flere kritiske trin hele proceduren, der bør holdes for øje. Zebrafisken larver skal være sundt før forsøget for at forhindre dødsfald i løbet af potentielle lægemiddelbehandlinger og sikre langvarig udkomme i løbet af ERG optagelser. Desuden er det vigtigt, at den anvendes i eksperimenter larver er tæt aldersmatchning. Dette sk…
The authors have nothing to disclose.
We thank members of the UNC Zebrafish Aquaculture facility for maintenance of the zebrafish. We would also like to thank Diagnosys, LLC for assistance with the setup of the ERG apparatus. Additional thanks go to Dr. Portia McCoy and the laboratory of Dr. Ben Philpot for assistance with electrophysiological methods. We also wish to thank Lizzy Griffiths for her illustration of a larval zebrafish. This work was supported by National Institutes of Health awards F32 EY022279 (to J.D.C) and R21 EY019758 (to E.R.W).
Name of the Material/Equipment | Company | Catalog Number | Comments/ Description (optional) |
Faraday cage | 80/20 Inc | custom | Custom designed aluminum "Industrial Erector Set" for Cage framework |
PVA sponge | Amazon | B000ZOWG1C | Provides a soft, moist platform for placement of zebrafish larvae |
150 ml Sterile Filter systems | Corning | 431154 | Filtering solutions to prevent small articulates from blocking micropipettes |
Espion E2 | Diagnosys, LLC | contact | Modular electrophysiology system capable of generating visual stimuli for any stimulator and digital recording and analysis of responses using propietary software, more information at http://www.diagnosysllc.com |
Colordome | Diagnosys, LLC | contact | Light stimulator with RGB LED and Xenon light sources for Ganzfeld ERG, more information at http://www.diagnosysllc.com |
Micromanipulator | Drummond | 3-000-024-R | Holding and positioning the recording microelectrode |
Magnetic ring stand | Drummond | 3-000-025-MB | Holding and positioning of the camera and refrence electrode |
Lead extensions | Grass Technologies | F-LX | Spare female to male 1.5 mm lead cables for connecting electrodes |
Male Pin to Female SAFELEAD Adaptor | Grass Technologies | DF-215/10 | Connecting 2 mm pins to 1.5 headboard pins |
Window screen frame (metal) and spline | Lowes or Home Depot | various | For attaching copper mesh to Faraday cage framework |
Steriflip 50 ml filters | Millipore | SCGP00525 | Filtering solutions to prevent small articulates from blocking micropipettes |
BNC adaptor | Monoprice | 4127 | Connecting camera to BNC cable |
BNC cable | Monoprice | 626 | Connecting camera to video adaptor |
Camera lens | Navitar | 1582232 | Visualizing the positioning of the recording microelectrode onto the larval cornea |
Camera coupler | Navitar | 1501149 | Visualizing the positioning of the recording microelectrode onto the larval cornea |
Luna BNC to VGA + HDMI Converter | Sewell | SW-29297-PRO | BNC to VGA adaptor allowing camera image to project on computer monitor |
APB | Sigma | A1910 | mGluR6 agonist, blocks b-wave allowing analysis of the isolated cone mass receptor potential |
Borosilicate glass | Sutter | BF-150-86-10 | Fire- polished borosilicate glass (metling temperature = 821°C) with filament and dimensions of 1.5mm x 0.86 mm (outer diameter by inner diameter) |
P97 Flaming/Brown puller | Sutter | P97 | For pulling glass micropipettes |
Sorbothane sheet | Thorlabs | SB12A | Synthetic viscoelastic urethane polymer, placed under Passive Isolation Mounts and ERG platform to absorb shock and prevent slipping, can be cut to size |
Breadboard | Thorlabs | B2436F | Vibration isolation platfrom for ERG stimulator and zebrafish specimen |
Passive Isolation Mounts | Thorlabs | PWA074 | Provides vibration isolation to breadboard |
Copper mesh | TWP | 022X022C0150W36T | To line Faraday Cage |
Pipette pump | VWR | 53502-233 | Used with Pasteur pipettes to carefully transfer zebrafish larvae |
Pasteur pipettes | VWR | 14672-608 | Used with Pipette pump to carefully transfer zebrafish larvae |
Camera | Watec | WAT-902B | Visualizing the positioning of the recording microelectrode onto the larval cornea |
Tricaine (MS-222) | Western Chemical | Tricaine-S | Pharmaceutical-grade anesthetic, |
Micro-fil | WPI | MF28G-5 | Filling microelectrode holder and microelectrode glass |
Microelectrode holder | WPI | MEH2SW15 | Holds glass microelectrode, connects to ERG equipment |
Reference Electrode | WPI | DRIREF-5SH | Carefully break off last centimeter of casing to drain electrolyte and expose sintered Ag/AgCl pellet electrode |
Reference Electrode (alternative) | WPI | EP1 | Alternative to DRIREF-5SH. Ag/AgCl electrode that must be wired/soldered to connecting lead |
Low-noise cable for Microelectrode holder | WPI | 13620 | Connecting recording microelctrode holder to adaptor/headboard |