Bu protokol yenidoğan farelerde ve prepubertal farelerden alınan bireysel yumurtalık folikülleri gelen yumurtalıklarını kullanarak, fare yumurtalık dokusunun primer kültür / ko-kültür açıklar. kültür teknikleri yumurtalık üzerindeki dışsal ajanların etkisi soruşturma olanak veren yüksek fizyolojik bir şekilde gelişimini desteklemek ve yumurtalık foliküllerinin arasındaki etkileşimlerin.
Memeli over yumurtalık foliküllerinin oluşur, somatik granüloza hücreleri ile çevrili tek bir oosit oluşan her folikül, bir bazal membran içinde birlikte kapalı. Folikül bir sonlu havuz mayotik tutuklama içinde oosit primordial folikül oluşturan, alçaltılmış granüloza hücreleri ile yakın dernek kurma embriyonik gelişim sırasında serilir. Tarafından veya doğumdan kısa bir süre sonra, memeli yumurtalıklar nokta itibaren büyüyen foliküler havuza köklerinin sürekli bir sürümü var hangi ilkel köklerinin kendi ömür boyu kaynağı içerir.
yumurtalık foliküllerinin kültürde yüksek fizyolojik bir şekilde artması ile, in vitro olarak geliştirilmesi için özellikle uygundur. Bu çalışma ilkel köklerini içeren tüm yenidoğan yumurtalıkların kültürünü ve bireysel over foliküllerinin kültürünü, preovu kadar bir olgunlaşmamış gelen köklerinin gelişimini destekleyen bir yöntem açıklanır, düzenleyici aşama, bundan sonra onların oosit in vitro döllenme geçmesi mümkün. Burada özetlenen çalışma yumurtalık dış bileşiklere maruz nasıl etkilendiğini belirlemek için kültür sistemlerini kullanır. Biz de büyüyen köklerinin ve ilkel köklerinin olmayan büyüyen havuz arasında gerçekleşen etkileşimlerin soruşturma sağlayan bir ko-kültür sistemi, tarif.
Memeli yumurtalık oosit bir dişinin ömür boyu kaynağı, bir yumurtalık folikülü içinde bulunan her oluşmaktadır. foliküllerinin dinlenme de doğumdan önce oluşur, ilkel aşama: folikül havuzu kurulduktan sonra, büyüyen folikül havuza ilkel gelen köklerinin sürekli ve kademeli hareket var. Folikül büyümeye başlar gibi onlar preovulatuvar veya Graaf, sahne ulaşana kadar, onlar, birincil, ikincil, preantral ve sonra antral aşamalardan geliştirmek. Preovulatuar köklerinin sadece oosit döllenmiş ise, dönem embriyonik gelişimini desteklemek mümkün tam gelişimsel yetkinlik var.
yumurtalık uzun in vitro çok fizyolojik bir şekilde geliştirmek için bilinmektedir. Bunun nedeni içindeki olgunlaşmamış aşamada bir oosit t yoluyla (hangi onun mayoz bölünme tamamlayamadığında işaret) desteklemek için gerekli hücreleri içeren her yumurtalık folikülü olması muhtemeldirO gelişimsel yetkili aşama (hangi tamamen mayoz, gübreleme ve dönem elde edilen embriyonun gelişimi tamamlanmasına destek olabilir işaret).
in vitro over gelişme fizyolojik yapısı yumurtalık kültür tekniklerinin geniş kullanımına yol açmıştır. Sonuç olarak, in vitro yöntemler (örneğin bu polikistik over sendromu, PKOS ve), kimyasallara maruz etkilenen nasıl Yumurtalıklar / oosit incelenmesi ve aynı zamanda pratik amacı ile yumurtalık gelişimi, yumurtalık patoloji düzenlenmesi araştırmak için kullanılmıştır ilkel yumurtalık foliküllerinin gelen üreyebilen oosit elde. Insanlar dahil olmak üzere, büyük memelilerden köklerinin kullanılarak kültür teknikleri, büyük ölçüde son yıllarda 2,3 geliştirilmiş olmasına rağmen bugüne kadar, son olarak anılan yalnızca fare yumurtalık dokusu 1 kullanılarak elde edilmiştir.
Biz burada fare yumurtalık dokusu kullanılarak çeşitli kültür yöntemleri açıklanmaktadır. İlk yöntemiid tüm yenidoğan fare yumurtalıklar kullanır, ve ilkel köklerinin 4 oluşumunu ve erken gelişimini destekler. İkinci sistem preovulatuvar aşamaya geç preantral bireysel, sağlam yumurtalık köklerinin gelişimini destekler; Bu tekniği kullanarak, folikülleri tek tek kültür, ya da çift 5,6 edilebilir. Son olarak, büyüme ve ilkel yumurtalık foliküllerinin 7 arasındaki etkileşimlerin incelenmesi sağlayan bir yöntemde ilk iki tekniklerini kullanarak, bir ko-kültür sistemi tarif eder.
Bireysel sağlam yumurtalık folikül kültür ortamı analiz folikül / yumurtalık hormon üretiminin incelenmesi izin verirken folikül gelişimi, kültür süresi boyunca günlük folikül ölçümler sonucunda tespit edilmesini sağlar. Bundan başka, doku analizi histolojik / immünohistolojik analizler için veya örneğin elde etmek için daha sonraki işleme için, kültür sonunda köklerinin veya yumurtalık doku toplanması ile elde edilebilirmRNA veya protein.
Burada, aynı zamanda, sadece erken folikül aşamaları tek tek preantral yumurtalık folikül ve iki doku kültürlerinden ihtiva eden bütün yenidoğan yumurtalık kullanarak, in vitro fare yumurtalık folikül gelişimini desteklemek için kullanılan farklı kültür sistemleri tarif etmektedir.
Yenidoğan fare yumurtalıkların Kültür erken yumurtalık gelişimi, ikincil folikül aşamasına kadar özellikle folikül gelişimi başlatılmasını desteklemektedir. Yenidoğan farelerin yaş bir dizi ilgi gelişim aşamalarında bağlı olarak, aşağıdaki kültürler için kullanılabilir. Yumurtalıklar doğmuş farelerden elde edilirse, folikül oluşumu devam ama henüz tamamlanmış olacaktır: Kültür, en azından kısmen folikül büyümesi ardından devam folikül oluşumunu destekleyecektir. Alternatif olarak, yaş dört-beş gün etrafında farelerin yumurtalıkların kullanımı ilkel ve büyüyen FOLLI daha fazla sayıda kültürü sonuçları (hangi zaman folikül oluşumu zaten tamamlandı)kartılması 12. Burada anlatılan özel bir teknik Faydalı özellikleri örneğin, serum gibi tanımlanmamış katkı maddelerinin kullanımının önüne, sadece αMEM ve BSA içeren bir çok temel bir ortam içinde daha fazla doku oksijenasyonu ve kültür izin değişken polikarbonat membran, kullanımını içerir. Bütün yumurtalıkların Kültür tür kültürlü yenidoğan yumurtalıktan 1 folikül granüloza hücre komplekslerinin diseksiyonu olarak tekniğinde bir değişiklik gerektiren sonraki gelişimi ile, ikincil folikül aşamasının ötesine gelişimini desteklemek için görünmüyor.
Folikül gelişiminin daha sonraki safhaları bunların üç-boyutlu yapıyı muhafaza etmek sureti ile kültür içinde ovülasyon öncesi aşamasına yetiştirilebilir bireysel, sağlam geç ön-antral folikülleri, kesilmesi yoluyla in vitro olarak geliştirilebilir. in vivo meydana geldiği gibi, bu kültür tekniği bozulmadan köklerinin kullanımı farklı foliküler bileşenleri arasındaki ilişkiyi korur. This kültürü sistemi gübreleme ve sonraki embriyo gelişimini destekleyen oosit elde etmek için kullanılabilir.
Üreyebilen oositler da oosit granüloza hücre kompleksleri vitro 1 'de yetiştirilen sırasında ikinci bir aşama takip burada tarif edildiği gibi çok bir başlangıç kültürü protokolü kullanılarak Yeni doğan fare yumurtalık elde edilebilir. Oldukça sık günümüzde kullanılan diğer sistemler destek sağlamak için, aljinat hidrojel olarak bir malzeme ile kapsüllenmiş olan folikül veya yumurtalık doku kültürü veya örn (bakınız örneğin, Tagler ve ark. 13). Yöntem geliştirme odak çoğu artık insanlar da dahil olmak üzere türlerin bir dizi, gelen ilkel köklerinin gelen fertilisable oosit elde uzun vadeli amacı ile, yumurtalıklar ve büyük memelilerin folikülleri için kültür teknikleri geliştirmektir.
Herhangi bir anda, memeli yumurtalıklar interactio ile, gelişim aşamalarının aralığında folikülleri ihtivaonların düzenleme etkileyen köklerinin arasında ns. Yumurtalık fonksiyonunun bu yönü tam olarak bilinmemektedir ve zor in vivo incelenmesi. Burada tarif edilen son yöntem, in vitro olarak folikül farklı aşamalarında gelişimini desteklemek için, ko-kültür sistemleri kullanmaktadır. Gerekirse, bir veya her iki doku önce ortak-kültür, in vivo veya in vitro olarak ön-işleme tabi tutulabilir. Bu gibi ko-kültür sistemleri büyüyen nasıl Örneğin, folikül-folikül etkileşimlerini incelemek için ideal bir yol sağlar, antral foliküller ilkel folikül havuzu etkileyen, zor kanıtlanmış yumurtalık biyoloji yönleri şimdiye kadar incelemek.
Dikkatli diseksiyon kazara doku hasarını önlemek için gerekli olmasına rağmen, tüm yumurtalık kültür teknikleri, oldukça basittir. Bireysel köklerinin diseksiyonu sağ aşamasında folikülleri over sağlam ve hasarsız dışarı disseke önce tekrarlanan uygulama gerektiren özel bir tekniktir. Bu kritikdikkatle bireysel folikülleri teşrih etmek, ya da diseksiyon protokolü sırasında sürekli hasar sonraki kültür döneminde folikül ölümle sonuçlanabilir. Doku kültürü tedavi plasticware kullanılırsa, folikül eklenecektir: folikül mikrotitre plakalarının kuyucuğu içine yerleştirildi yerlerde, plastik üzerinde thekal hücrelerin aşağı kaplama en aza indirmek için, sadece olmayan doku kültürü tedavi plastik kullanılması önemlidir Kuyunun taban ve yırtılması büyüdükçe. Tüm ko-kültür çalışması için dokular, birbiriyle doğrudan temas halinde yerleştirilmelidir.
folikül kültürü tekniğinde kullanım için yukarıda detaylı olarak orta fare serumu ilave edilmesini kapsar. Fetal sığır serumu ile fare serumu değiştirmek mümkündür, ancak toplu testi uygun kaynaklarını belirlemek için gerekli olan bu tür serumun sadece ara sıra partiler tam preovulatuvar aşamaya folikül gelişimini destekleyecektir. FSH Toplu testi Uluslararası Uni gibi, aynı zamanda tavsiye edilirFSH in vitro folikül büyümeye sadece kabaca korelasyonu değerlendirilir hangi ts. Folikül rüptürü rutin kültür döneminde ortaya çıkarsa, taze toplu stok askorbik asit yerine düşünün.
teknikleri, kesme mikroskop ve doku kültürü kuluçka dışında, özellikle özel ekipman gerektirmeyen bir laminar akış çeker ve iyi steril teknik kullanımı yumurtalık folikül burada açıklanan yöntemlerde olduğu gibi, antibiyotik yokluğunda kültürlenebilir izin rağmen. Bu, kültür, aşağıdaki döllenmesi için olan, özellikle oositlerde antibiyotik potansiyel zararlı etkilerini önlemek için yararlı olabilir. Steril bir ortamda çalışmak mümkün olmadığı durumlarda, bu diseksiyon ve kültür ortamı için antibiyotik eklemek için tavsiye edilir.
The authors have nothing to disclose.
Work was funded by MRC grant G1002118.
Name of the Material/Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Leibowitz L15 | Invitrogen | 11415049 | |
αMEM | Invitrogen | 22571020 | Supplied as sodium bicarbonate buffered (2200 mg/L) |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A9418 | For dissection medium |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A3311 | For culture medium |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A2153 | For coating glass pipettes |
Mouse serum | – | – | Collected from cardiac puncture |
FSH | Merck Serono | Gonal F | Batch testing is often necessary. Make up stock solution of 1IU/10µl in αMEM and store at -20°C. |
Ascorbic acid | Sigma Aldrich | A4034 | Make up stock of 5mg/ml in αMEM and store at -20°C. |
Silicon oil | VWR | 630064V | Dow Corning Silicone Fluid 200/50cS |
Syringe filters (25mm, 0.2µm) | Greiner | 16532K | Cellulose acetate filter: for filtering larger (> 5mls) volumes of medium. |
Syringe filters (13mm, 0.2µm) | Iwaki | 3032-013 | Cellulose acetate filter: for filtering smaller (< 5mls) volumes of medium |
Syringe filters (25mm, 0.45µm) | Iwaki | 2053-025 | Cellulose acetate filter: for filtering oil. |
Sterile tubes | Greiner | 187261 | |
24 well plate | Greiner | 662160 | |
96 well round bottom plate | Iwaki | 3875-096 | Use only non-tissue culture treated plates |
96 well flat bottomed well | Iwaki | 3860-096 | Use only non-tissue culture treated plates |
Whatman nucleopore membranes | Camlab | WN/110414 | Use shiny surface up, polycarbonate, 13mm diameter, 8.0µm pore size |
Insulin needles | BD medical supplies | 037-7606 | 0.33mm (29G) +1ml |
Glass embryo dishes | VWR | 720-0579 | Sterilise then warm before use |
Glass pipettes | Fisher Scientific | 10209381 | BSA coated before use |
Gel tips | AlphaLabs | LW1103 | |
Acupuncture needles | Acumedic LTD | 30mmx0.25 Type C | |
Bouin’s fixative | Sigma Aldrich | HT10132-1L | |
Formalin solution, neutral buffered, 10% | Sigma Aldrich | HT5014-120ml | |
1.5 ml polypropylene tubes | Greiner BioOne | 616201 |