Summary

Microscopia intravital de imágenes del hígado después<em> Leishmania</em> Infección: Una Evaluación de Hemodinámica hepática

Published: July 28, 2015
doi:

Summary

This article reports on a detailed method for the dynamic measurement and quantification of blood flow velocity within individual blood vessels of the mouse liver vasculature using intravital microscopy imaging in combination with a specific methodology for image acquisition and analysis.

Abstract

Microscopía intravital (IVM) es una poderosa técnica de imagen óptica que ha hecho posible la visualización, monitoreo y cuantificación de diversos eventos biológicos en tiempo real y en los animales vivos. Esta tecnología ha avanzado enormemente nuestra comprensión de los procesos fisiológicos y fenómenos patógenos mediada en órganos específicos.

En este estudio, IVM se aplica al hígado de ratón y protocolos están diseñados para imagen in vivo el sistema circulatorio del hígado y medir los glóbulos rojos (RBC) de velocidad en vasos hepáticos individuales. Para visualizar los diferentes subtipos de los vasos que caracterizan el órgano hepático y llevar a cabo mediciones de la velocidad del flujo sanguíneo, C57BL / 6 ratones se inyectaron por vía intravenosa con un reactivo de plasma fluorescente que etiqueta la vasculatura hepática asociada. IVM permite in vivo, en tiempo real, la medición de la velocidad de RBC en un recipiente específico de interés. El establecimiento de esta metodología permitirá ainvestigar la hemodinámica hepática bajo condiciones fisiológicas y patológicas. En última instancia, esta metodología basada en la proyección de imagen será importante para el estudio de la influencia de L. infección donovani en la hemodinámica hepática.

Este método se puede aplicar a otros modelos infecciosas y órganos de ratón y podría extenderse aún más para pre-clínica de pruebas del efecto de un fármaco sobre la inflamación mediante la cuantificación de su efecto sobre el flujo sanguíneo.

Introduction

Hemodinámica órgano-específicas son importantes características fisiológicas de cualquier órgano de mamífero. Anomalías en el flujo sanguíneo puede ser la consecuencia de la inflamación y un signo de disfunción de órganos 1. Por lo tanto, el flujo de sangre organización, estructura y función aparecen como parámetros críticos para el análisis en condiciones fisiológicas y patológicas. Las técnicas que se han utilizado comúnmente para el análisis de flujo de sangre en un órgano específico contienen varias limitaciones, incluyendo el límite de resolución de la técnica en sí (por ejemplo, formación de imágenes Doppler del flujo sanguíneo), la capacidad para la medición del flujo sanguíneo absoluta solamente (volumen de sangre por unidad que sirve un órgano) (por ejemplo, la tomografía de coherencia óptica) y la medición de los cambios en la velocidad promedio en una población grande y heterogéneo de los vasos sanguíneos 2,3. El sistema circulatorio del hígado vincula diferentes subtipos de los vasos que son heterogéneos en su tamaño, estructura y función. Enesta tecnología de imagen estudio, microscopía intravital (IVM) se aplica para evaluar la hemodinámica del hígado in vivo, en tiempo real, en alta resolución y en paralelo para descubrir las características de los vasos sanguíneos individuales que componen el órgano hepático. El reciente desarrollo de esta poderosa técnica de imagen óptica permite al investigador para recolectar datos dinámicos sobre los animales que viven en una alta resolución espacial y temporal. Al permitir la visualización directa y el monitoreo en tiempo real de los procesos biológicos específicos y rápidos en vivo, IVM ofrece una oportunidad única para el investigador a los vasos sanguíneos imagen individual, y medir y cuantificar la velocidad de los glóbulos rojos individuales (RBC) dentro de un seleccionado específicamente buque hepática.

En este estudio, hemos implementado la técnica de IVM en el hígado del ratón para investigar la influencia de la infección del ratón por el parásito Leishmania hepatotropos en la hemodinámica hepática. L. donovanies el agente responsable de la leishmaniasis visceral, una enfermedad grave caracterizada por respuestas inflamatorias agudas-sobre-crónica y una patología que está presente en múltiples órganos, incluyendo el bazo y el hígado. En un modelo experimental de ratón de leishmaniasis visceral, la infección del hígado es auto-resolver mientras que la infección esplénica es progresiva 4. Estos resultados de la infección por Leishmania con respecto a los órganos individuales son todavía no completamente entendidos. Investigación de la hemodinámica de hígado y bazo en condiciones patológicas arrojará nueva luz sobre las interacciones huésped-parásito y patogénesis de la enfermedad.

Nuestro sistema modelo experimental se basa en la exposición y la obtención de imágenes del hígado de un ratón anestesiado que recibió la inyección intravenosa de tintes fluorescentes específicas para el etiquetado de la intravasculature hepática. El hígado es un órgano favorable para microscopía intra-vital. Después de realizar un pequeño incision en el abdomen, el hígado se exterioriza y se coloca en una gasa húmeda, luego en un cubreobjetos con el objetivo de reducir los artefactos de movimiento debido a latidos del corazón y la respiración suavemente. El hígado se coloca entonces dentro de la vista de una lente de microscopio. En comparación con el nodo linfático y bazo que requiere el uso de dos fotones para los estudios de microscopía de IVM, la ventaja de que el hígado se encuentra en su arquitectura 3D homogénea / anatomía que permite el uso de un microscopio confocal convencional, con una profundidad máxima de penetración de aproximadamente 50 micras, para obtener imágenes de microscopía intravital 5-8.

Este estudio describe dos métodos de imagen independientes para la medición cuantitativa de RBC velocidad y la velocidad de flujo sanguíneo en los vasos sanguíneos individuales. En el primer método, el flujo de sangre del hígado se adquiere usando un modo de bi-dimensional xy con el tiempo. Los datos XYT resultantes se analizan usando el plugin MtrackJ en el software ImageJ libre, que permite el seguimiento de individUAL glóbulos rojos en el tiempo. En el segundo método, se selecciona un solo vaso sanguíneo y su correspondiente flujo de sangre se analiza usando el análisis de la línea modo de adquisición rápida del microscopio de escaneo láser confocal. El vaso de interés se escanea a alta frecuencia a lo largo de su eje central a través de una línea axial. La velocidad del flujo sanguíneo se cuantifica a continuación, en base a la diferencia de contraste entre los eritrocitos y el plasma oscuros sin etiqueta marcada con fluorescencia. Las intensidades de fluorescencia de los glóbulos rojos y el plasma adquiridos a lo largo de la línea de exploración se representan gráficamente contra el tiempo para obtener rayas, los ángulos de las cuales son proporcionales a las velocidades de un RBC individual.

El objetivo de este artículo es proporcionar un método simple y reproducible para la imagen y la medición de la velocidad del flujo sanguíneo dentro de los vasos sanguíneos individuales del hígado y de poner a disposición las herramientas básicas para el buen desarrollo de la cirugía ratón, IVM y análisis cuantitativos de la velocidad glóbulos rojos individuales. Tsu enfoque permitirá a los investigadores a obtener nuevos conocimientos sobre la velocidad de la sangre en condiciones patológicas.

Protocol

Declaración de Ética: se realizaron todos los estudios en animales, de acuerdo con las directrices y protocolos que fueron aprobados por el Comité de Cuidado y Uso de Animales Institucional de la Universidad de Aix-Marsella, Francia. Mujer C57Bl / 6 ratones a 8-10 semanas de edad se obtuvieron comercialmente y manejarse de acuerdo con las reglas del Decreto N ° 8 87-848, 19 de octubre de 1987, París. Todos los experimentos utilizando L. parásitos donovani LD1S se llevaron a cabo de acuerdo con no…

Representative Results

La organización arquitectónica específica de los sinusoides del hígado puede ser visualizado basa en la propiedad autofluorescente de este órgano (Figura 1, panel B y C, verde), la inyección intraperitoneal de Hoechst para el etiquetado de los núcleos de los hepatocitos (Figura 1B, azul) y la inyección intravenosa de BSA fluorescente para la tinción del sistema circulatorio hepática (Figura 1C, rojo). El hígado se compone de varios subtipos diferentes de los …

Discussion

El reciente desarrollo de la microscopía intravital del hígado del ratón abre nuevas posibilidades para la investigación de la respuesta fisiológica a la infección in vivo y en tiempo real 5,9,10. El flujo sanguíneo de órganos es un parámetro fisiológico crítico que a menudo se altera en muchas enfermedades. Sin embargo, el estado de la hemodinámica hepática en condiciones fisiológicas e infecciosas sigue siendo un área poco explorada. En este estudio, los métodos basados ​​en IVM…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta investigación fue apoyada por el INSERM, la Universidad de Aix-Marseille y un premio de Desarrollo Profesional de HFSPO obtenida por CL Forestier.

Materials

Hoechst 33342 Sigma Aldrich B2261
BSA-Alexa 647 lifetechnologies A34785
Dextran-FITC 500 mol wt SIGMA 46947
Ketamine PanPharma 20434
Xylazine Bayer KP07KEU
Vetedine Pharma Animal 6869029
Cyanoacrylate liquid Cyanolit 5833300005
Coverslip frame: Membrane slide for microdissection part N°: 5013 Molecular machines 50103
Coverslip DiaPath 24×60 ep: 1.6 mm DiaPath 61061
Confocal laser scanning microscope Leica  TCS-SP5
LAS-AF viewer  Leica software Version 3.1.0 buid 8587

References

  1. Vollmar, B., Menger, M. D. The hepatic microcirculation: mechanistic contributions and therapeutic targets in liver injury and repair. Physiol. Rev. 89, 1269-1339 (2009).
  2. Srinivasan, V. Absolute blood flow measured by optical methods. SPIE Newsroom. , (2011).
  3. Seifalian, A. M., Stansby, G. P., Hobbs, K. E., Hawkes, D. J., Colchester, A. C. Measurement of liver blood flow: a review. HPB. Surg. 4, 171-186 (1991).
  4. Engwerda, C. R., Ato, M., Kaye, P. M. Macrophages, pathology and parasite persistence in experimental visceral leishmaniasis. Trends Parasitol. 20, 524-530 (2004).
  5. Beattie, L., et al. Dynamic imaging of experimental Leishmania donovani-induced hepatic granulomas detects Kupffer cell-restricted antigen presentation to antigen-specific CD8 T cells. PLoS Pathog. 6, e1000805 (2010).
  6. Lee, W. Y., et al. An intravascular immune response to Borrelia burgdorferi involves Kupffer cells and iNKT cells. Nat. Immunol. 11, 295-302 (2010).
  7. Geissmann, F., et al. Intravascular immune surveillance by CXCR6+ NKT cells patrolling liver sinusoids. PLoS Biol. 3, e113 (2005).
  8. Marques, P. E., et al. Imaging liver biology in vivo using conventional confocal microscopy. Nat. protocols. 10, 258-268 (2015).
  9. Thiberge, S., et al. In vivo imaging of malaria parasites in the murine liver. Nat. protocols. 2, 1811-1818 (2007).
  10. Vacchina, P., Morales, M. A. In vitro screening test using Leishmania promastigotes stably expressing mCherry protein. Antimicrob. Agents Chemother. 58, 1825-1828 (2014).
  11. Ferrer, M., Martin-Jaular, L., Calvo, M., del Portillo, H. A. Intravital microscopy of the spleen: quantitative analysis of parasite mobility and blood. J. Vis. Exp. , (2012).
  12. Kamoun, W. S., et al. Simultaneous measurement of RBC velocity, flux, hematocrit and shear rate in vascular networks. Nat. Methods. 7, 655-660 (2010).
  13. MacPhee, P. J., Schmidt, E. E., Groom, A. C. Intermittence of blood flow in liver sinusoids, studied by high-resolution in vivo microscopy. Am. J. Phys. 269, G692-G698 (1995).

Play Video

Cite This Article
Dasari, S., Weber, P., Makhloufi, C., Lopez, E., Forestier, C. Intravital Microscopy Imaging of the Liver following Leishmania Infection: An Assessment of Hepatic Hemodynamics. J. Vis. Exp. (101), e52303, doi:10.3791/52303 (2015).

View Video