Summary

טכניקת cytometry הזרימה מבוססת תמונה כדי להעריך את השינויים בפונקצית granulocyte<em> במבחנה</em

Published: December 26, 2014
doi:

Summary

This method demonstrates a technique for assessing granulocyte function by simultaneously measuring phagocytosis of bacteria and oxidative burst. Image-based flow cytometry allowed for the identification of three distinct subsets of activated granulocytes that all differed in their relative functional capacity.

Abstract

Granulocytes play a key role in the body’s innate immune response to bacterial and viral infections. While methods exist to measure granulocyte function, in general these are limited in terms of the information they can provide. For example, most existing assays merely provide a percentage of how many granulocytes are activated following a single, fixed length incubation. Complicating matters, most assays focus on only one aspect of function due to limitations in detection technology. This report demonstrates a technique for simultaneous measurement of granulocyte phagocytosis of bacteria and oxidative burst. By measuring both of these functions at the same time, three unique phenotypes of activated granulocytes were identified: 1) Low Activation (minimal phagocytosis, no oxidative burst), 2) Moderate Activation (moderate phagocytosis, some oxidative burst, but no co-localization of the two functional events), and 3) High Activation (high phagocytosis, high oxidative burst, co-localization of phagocytosis and oxidative burst). A fourth population that consisted of inactivated granulocytes was also identified. Using assay incubations of 10, 20, and 40-min the effect of assay incubation duration on the redistribution of activated granulocyte phenotypes was assessed. A fourth incubation was completed on ice as a control. By using serial time incubations, the assay may be able to able to detect how a treatment spatially affects granulocyte function. All samples were measured using an image-based flow cytometer equipped with a quantitative imaging (QI) option, autosampler, and multiple lasers (488, 642, and 785 nm).

Introduction

גרנולוציטים מייצגים רכיב אחד של המערכת החיסונית של הגוף המולדת, אשר מספקת את קו הגנה הראשון נגד אנטיגנים פולשים. שיטות קודמות להערכת תפקוד granulocyte התמקדו בקיבולת phagocytosis או פרץ חמצוני בשיטות נפרדות, ולכן קשה לקבוע באופן קולקטיבי איך גרנולוציטים השתנו 1-4. התקדמות בתחום הזרימה cytometry הביאו בייצור של מכשירים המעבדתיים מסוגלים ברזולוציה גבוהה, הדמיה צבע רב של תאים באופן תפוקה גבוהה 5. היכולת לשלב הדמיה עם זרימה מסורתית cytometry מייצגת התקדמות שמספקת את הפלטפורמה הטכנולוגית הדרושה כדי לחדש בתוך זרימה הקיימת cytometry שיטות ולחלץ מידע חדש על המערכת החיסונית.

במהלך עשר השנים האחרונות, המעבדה שלנו, בין יתר, התמקדה בחריפות על ההשפעה של patte התזונתי וטיפולי מימוש השוניםRNS על תפקוד מערכת חיסון מולדים 6-9. יש השיטה הוכיחה בכתב היד הזה השלכות מעשיות בתחום האימונולוגיה קלינית. השיטה הנוכחית ממנפת את הכח של הזרימה cytometry מבוסס תמונה למדוד phagocytosis של חלקיקי חיידקים ופרץ חמצוני בו זמנית. שימוש בגישה זו, אחד הוא מסוגלת להפריד גרנולוציטים מופעלים באמצעות משתנים הניתנים על ידי החלק מבוסס דמותו של הניתוח. תת אלה היו רק זיהוי לאחר הערכת התמונות הסלולריות על גרנולוציטים הבודדים. זמן הדגירה assay נוסף השפיע על המעבר בין תת הפעלת שלוש 10. לכן, זה מתקבל על הדעת ששימוש במספר רבה של פעמים דגירה עשוי לאפשר שיטה לבחון את השינוי בתפקוד granulocyte הבא טיפול ניסיון ספציפי. המטרה של כתב היד הזה הייתה להדגים שיטה של ​​פונקצית granulocyte הערכה באמצעות זרימה cytometry מבוסס תמונה למדוד phagocytosis עם oxidat בו זמניתive פרץ.

Protocol

הערה: כל נהלי איסוף דם מתוארים בשיטה זו נערכו בהתאם להצהרת הלסינקי ואושרו על ידי המועצה לביקורת המוסדית UNT (IRB) לבני אדם. כל הנבדקים נתנו הסכמה בכתב לאיסוף דם, אשר היה בשימוש בשיטה הנוכחית כדי להבטיח שהם היו בריאים לכאורה, של משקל גוף תקין, וללא מחלה. 1. מגיב מקור והכנה שימוש CD66b-APC (# G10F5 שיבוט; DF = 1: 50) וCD45-APCeFluor780 (שיבוט # 2D1; DF = 1: 50) עבור assay זה. הערה: לפני המחקר, נוגדני CD45 וCD66b היו titered כדי לקבוע את הדילול האופטימלי שגרנולוציטים בבירור נפתרו (+ CD45 + / 66b) מכדוריות דם לבנות אחרים (CD45 + / 66b-) 11. על התוספת של הנוגדן המדולל למכתימים את הדילול הסופי בצינור היה 875. לרכוש ולהפשיר מניית S. aureus bioparticles שכותרתו עם צבע אדום pHrodo. להשעות בריכוז של 1 מ 'גרם של bioparticles לכל מיליליטר ב PBS סטרילי. bioparticles לדלל aliquot וחנות קפוא ב -20 ° C עד בשימוש assay. לפזר dihydroethidium (DHE), אשר מומר ברומיד ethidium ניאון בנוכחותם של רדיקלים חופשיים של חמצן (כלומר, פרץ חמצוני), בDMSO לריכוז סופי של 10 g / ml. מערבבים N-ethylmaleimide (המשמש למניעת phagocytosis נוסף הבא משך הדגירה assay צוין) עם PBS סטרילי בדילול 2 צעד של 200 מ"ג / מיליליטר ו -17.5 מ"ג / מיליליטר בהתאמה. בassay, להשתמש ריכוז סופי של 15 מ"מ. כאשר מפשיר N-ethylmaleimide, להשתמש גוש חום 37 מעלות צלזיוס, כמו N-ethylmaleimide לא יישאר בפתרון. לאחר שלב הקיבוע הסופי, להשתמש 7AAD להכתים DNA הגרעיני. לפני בנוסף, לדלל 7AAD מניית 1:10 עם PBS סטרילי. אוסף דוגמאות 2. דם שאל נושאים להגיע למעבדה הבאה O / N (> 8hr) המהיר וabstentiמפעילות גופנית (> 12 שעות). לאחר ניקוי העור עם כרית הכנת אלכוהול, להכניס מחט סטרילית איסוף דם לוריד זרוע היקפי. איסוף דם לתוך צינורות פונו כי הם מלאים באופן מסחרי עם הפרין סודיום. לאחר איסוף, להחיל תחבושת דבק לזרועו של הנושא. היפוך צינורות דם לערבב 10 פעמים ולאחר מכן למקם על כיסא נדנדה עד לניתוח. טכניקת 3. phagocytosis Assay bioparticles ההפשרה S.aureus (RT), DHE (RT), ו- N-ethylmaleimide (37 ° C). הוסף 20 L של bioparticles S.aureus 4 1.2 מיליליטר צינורות בודדים בעת שעבדה בשכונה סטרילי. הוסף 40 L של DHE לכל צינור המכיל את bioparticles. לטפוח בעדינות את הצינורות על משטח הספסל כדי לאסוף את חומרים כימיים בחלק התחתון של הצינור. הוספה של כל דם מעורב 100 L על צינור אחד שכבר מלא בbioparticles וDHE. נגב את הקצה הפנימי של הצינורות עם המוליך כותנה שקצהו כדי להסיר כל דם מזהם. מערבבים את הדם וחומרים כימיים עם pipet אלקטרוני להגדיר לערבב את הדם וחומרים כימיים לשלושה מחזורים לאחר תוספת דם. מניחים צינורות assay בדלי קרח ולכסות כדי להגן מפני אור. דגירה צינורות assay 10, 20, ו -40 דקות. התחל עם צינור 40-דקות כדי להבטיח את כל צינורות assay לסיים באותו הזמן. ההפשרה N-ethylmaleimide באמבטיה חרוז 37 ° C. Pipet 15 L של N-ethylmaleimide (שתואר לעיל ב1.4) לתוך צינור אחד assay, דגירה במשך 30 דקות-. Pipet 10 L של CD66b-APC ו -10 L של CD45-APCeFluor780 נוגדנים מדוללים (שתוארו לעיל בסעיף 1.1), דגירה של 60 דקות. Pipet 750 L של תיקון פתרון lyse / RBC WBC לתוך צינור אחד assay, דגירה של 60-דקות. צנטריפוגה (10 דקות ב 400 XG) צינורות assay כדי לאסוף את התא גלולה. אבק לשאוב את פתרון lyse WBC / תיקון RBC, עוזב fl שיירנפח uid (100 ליטר) מעל התא גלולה. Pipet 10 L של פתרון המדולל 7AAD (שתואר לעיל ב 1.5) ו -50 ליטר של PBS לתוך צינור אחד assay. הוסף טיפה אחת של חרוזים כיול (~ 25 L) על צינור אחד assay, כובעי מקום בצינורות assay, צינורות לעטוף בנייר כסף, ומכניס למקרר. טען את צינור המדגם לתוך הזרם מבוסס תמונת cytometer ולאסוף מינימום של 3,000 אירועי granulocyte באמצעות פרמטרים שהוגדרו מראש: autosampler, הכחול (ננומטר 488; 60 mW), אדום (640 ננומטר; 100 NW), SSC (ננומטר 785; 8.5 לייזרי mW) (איור 1). איור 1. רכישת שיטה ותבנית. דוגמאות נרכשו על זרימה מבוססת תמונה cytometer (). במהלך רכישה, מגרשי נקודה של יחס ממדים מואר שדה לעומת CD66b-APC נוצרו לגרנולוציטים הופרדו מחרוזי כיול ממוסמר using INSPIRE v. 100.2.292.0 תוכנה (B). מינימום של 5,000 גרנולוציטים נרכש עבור כל דגימות באמצעות autosampler, כחולה (488 ננומטר; 60 mW), אדום (640 ננומטר; 100 NW), SSC (785 ננומטר; 8.5 mW) לייזרים. אנא שים לב כי מספר היסטוגרמות נמצא במהלך הרכישה לפקח הגדרות לייזר והיבטים אחרים של נתונים לאסוף. כל היסטוגרמות אלה הם אופציונליים ונחוצים רק אם נהלי עבודה במעבדה מחייבים אותם כבקרת איכות. אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. 4. לדוגמא רכישה וניתוח השתמש באשף פיצוי תוכנה האוטומטי של תוכנת הרעיונות ליישם מטריצת פיצויים לקבצי גלם תמונה (RIF) וליצור לפצות קבצי הדמיה (CIF). לטעון קבצי CIF בודדים בתוכנת רעיונות וליצור החלקות הבאות כדי לזהות את תת granulocyte: </li> הקמת שערים ראשוניים לזהות תאים שנחשבו להיות בפוקוס באמצעות היסטוגרמה לRMS הבהיר שיפוע שדה (איור 2 א). לקבוע זאת עבור כל דגימת מטופל באמצעות שליטת unstimulated כסטנדרט התייחסות. השתמש במגרשים משניים לתאי גופייה נפרדים מפסולת וכפילויות באמצעות עלילת נקודה של יחס בהיר היבט שדה (יחס בין גובה תא לעומת רוחב) לעומת אזור שדה הבהיר (איור 2). לקבוע זאת עבור כל דגימת מטופל באמצעות שליטת unstimulated כסטנדרט התייחסות. ברגע שאוכלוסייה נקייה של תאים שזוהתה, להקים עלילת נקודה של CD45 לעומת CD66b (איור 2 ג) כדי לזהות באופן חיובי גרנולוציטים (+ CD45 + / 66b). צור עלילת בת (איור 3) בעוצמה פירוט בהירה לS. aureus (ציר x) לעומת עוצמת פירוט בהירה לפרץ חמצוני (DHE, ציר y) לזהות תת קבוצות של גרנולוציטים הופעלו. לאסוף brתמונות שדה ight בערוץ 1 ו -9, bioparticles בערוץ 2, בערוץ 4 DHE, 7AAD בערוץ 5, CD66b בערוץ 11, וCD45 בערוץ 12. איור 2. ניתוח תבנית. נתון זה הסדרה של מגרשים שנוצרו כדי לזהות תאים שהיו בפוקוס (), תאים בודדים (B), גרנולוציטים (C). חלקות נוספות המשמשות לזיהוי שלוש תת קבוצות של גרנולוציטים הופעלו נגד גרנולוציטים לא פעילים. כל הניתוח של קבצי תמונה שנרכשו הושלם באמצעות תוכנת v.6 רעיונות. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Representative Results

באמצעות זרימה cytometry מבוסס תמונה אפשר לנו להפריד בין אוכלוסייה הומוגנית של גרנולוציטים הופעלו לשלוש תת קבוצות שונות הפעלה (איור 3). בשיטה זו, הדרך היעילה ביותר לפתור את שלוש תת קבוצות ההפעלה היא על ידי התוויית עוצמת פירוט בהיר לphagocytosis (S. aureus) לעומת פרץ חמצוני (DHE) (איור 3; איור 4). כמו כן, שימוש באשף שיתוף הלוקליזציה בתוכנת רעיונות יאפשר לכימות של הנוכחות של phagocytosis בו זמנית ופרץ חמצוני, וזה סימן היכר של גרנולוציטים הופעלו מאוד. זיהוי איור 3. של תת granulocyte הופעל. לאחר זיהוי של גרנולוציטים באמצעות סמנים על פני קרום תא (+ CD45 + / 66b), עלילת בת נוצרה עם inten פירוט הבהירsity לphagocytosis לעומת עוצמת פירוט בהירה לפרץ חמצוני. שימוש בגישה זו, אחוז לא פעיל (סגול), נמוך-אקטיבי (אדום,), מתון-אקטיבי (כחולה, B), וגרנולוציטים גבוהים פעילים (צהובים, C) נקבעו. טכניקת gating זה היה בשימוש גם על מנת להעריך את ההשפעה של זמן הדגירה assay בשפע היחסי של תת granulocyte הופעל השונים. האחוז הגבוה ביותר של גרנולוציטים "גבוהים-אקטיביים" היה נוכח הבא הדגירה 40 דקות. כל הניתוח של קבצי תמונה שנרכשו הושלם באמצעות תוכנת v.6 רעיונות. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. בנוסף הוכחת הנוכחות של שלוש תת קבוצות שונות של גרנולוציטים הופעלו, זה היה הראה כי זמן הדגירה assay השפיע השפע היחסי של כל תת-קבוצה גרנולוציטים הופעלה. באופן ספציפי, inc 40 דקותubation הביא את האחוז הגדול ביותר של גרנולוציטים "גבוהים-אקטיביים". על ידי ובם לפחות שלושה משכי דגירה assay זה עשוי להיות אפשרי כדי לקבוע כיצד טיפול קליני ניתנו משנה את מצב ההפעלה הזמני של גרנולוציטים. זוהי השיטה הראשונה שפורסמה באמצעות זרימה cytometry מבוסס תמונה לזהות תת granulocyte הופעל שונים כפונקציה של מדידות בו זמנית של phagocytosis ופרץ חמצוני. איור 4. נציגי תמונות של סמנים תאיים. גלריית תמונות של תאים שסווגו כגבוה פעיל (), מתון-אקטיבי (B), ונמוך-אקטיבי (C) מוצגות בנתון זה. Bioparticles S.aureus נמצאות בCh03 , פרץ חמצוני הוא בCh04, 7AAD לגרעין הוא בCh05, פיזור הצד הוא בCh06, CD66b הוא בCh11, וCD45 הוא בCh12. כמו כן, תמונת מיזוג-מקומי שיתוף של phagocytosis (Ch03) לעומת פרץ חמצוני (Ch04) מוצגת. תחומי צהובים בתמונה המיזוג לציין כי פרץ phagocytosis והחמצונים מתרחשים באותו המקום האנטומי באותו הזמן. לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Discussion

השיטה הנוכחית מייצגת עידון של שיטות קיימות להערכת תפקוד granulocyte באמצעות זרימת cytometry 1,3,4,12-14. השלבים הקריטיים של assay זה נוטים להיות קשור לערבוב נכון של דגימת הדם עם bioparticles וDHE. ערבוב שלם יביא לתוצאות לא מדויקות. בעוד ערבוב מלא הוא קריטי, שיטת הערבוב צריכה להיות עדינה בטבע. הוא הציע כי הערבוב להתבצע באמצעות pipet אלקטרוני עם פונקצית ערבוב ולא מיקסר מערבולת. עוד צעד קריטי בassay הוא תמיד כדי להבטיח שאין דם מזהם את חיצו העליון של צינור assay. דם שיורית זו ניתן להסיר באמצעות המוליך כותנה שקצה סטרילי. הסרה מלאה היא חשובה משום שכישלון לעשות זאת עלולה לזהם את הכנת assay הסופית עם תאי דם אדום-lysed un.

לפני השימוש בשיטה זו בקרות פיצוי הולמות יש להוסיף לשלוט על spחפיפה בין ectral חומרים כימיים המשמשים לזיהוי ההיבטים השונים של תפקוד granulocyte. לשיטה זו, בקרות פיצוי כרוכות לאסוף דגימות דם שהוצעו הדגירה assay 40 דקות ולאחר מכן תיוג עם סמן יחיד (כלומר, E. coli, DHE, וכו '). לאחר תיוג, אירועים חיוביים יחידים נאספים ומטריצת פיצוי מופקת באמצעות אשף אוטומטי בתוכנת ניתוח רעיונות. זה קריטי, כי אם נעשה שימוש assay זה, בקרות פיצוי הולמות הושלמו כדי להבטיח ביצועי assay נכונים.

ניתוח מתבצע באמצעות אשפי מאתר התכונה ושיתוף לוקליזציה לזהות שעוצמת פירוט בהירה היא משתנה הטוב ביותר להפריד בין האוכלוסיות וגם לזהות כמה חפיפה קיימת בין פרץ חמצוני ואותות phagocytosis. באופן ספציפי, השימוש בcytometry מבוסס תמונה סיפק את היכולת להפריד גרנולוציטים הופעלו לשלוש תת קבוצות. Tפירוט משנו נקבע באמצעות עוצמת פירוט בהירה של phagocytosis לעומת פרץ חמצוני. בנוסף לבחינת פונקציות תא היחידה אלה, תאים שהציגו שני אירועים באותו הזמן באותו מיקום האנטומי (שיתוף לוקליזציה) זוהו. גרנולוציטים שנפלו לקבוצת המשנה "גבוה-האקטיבי" היו פנוטיפ היחיד שהפגין שיתוף לוקליזציה עקבית בין phagocytosis ופרץ חמצוני. זיהוי זה של תת granulocyte מופעל הוא האזור הגדול ביותר שבו יש צורך בפתרון בעיות. זה מאוד חשוב עבור משתמש חדש כדי לקחת את הזמן כדי להבין את זרימת העבודה תהליך הדגימה ברעיונות ולהבין את המכניקה של gating אוכלוסיות תאים באמצעות רכיב ההדמיה. שינויים אחרים שהמשתמש יכול לנסות ולהפוך כוללים מבחר של פעמים דגירה assay חלופיות או נוספות. השיטה הנוכחית מצביעה על השימוש בתקופות של 10-40 דקות; עם זאת, בהתאם לדגם הניסיוני שבה שיטה זו היאכדי לשמש, זה עשוי להיות נחוץ כדי לבחור משכי assay עוד. כגון שינוי היית צריך להיות מוערך על בסיס פרטני.

עוד נקבע כי משך הדגירה assay יש השפעה משמעותית על המראה של שלוש תת קבוצות הופעלו. הגישה המתוארת בדוח זה מייצגת הארכת איזה מידע ניתן להשיג בעבר לגבי תפקוד granulocyte 3,4,13,15. מעבדות אחרות לא הוכיחו את החשיבות של הערכת שינויים בתפקוד granulocyte כחלק מהערכה מקיפה של חסינות ומחלות 15-17. למרות הפוטנציאל של assay זה זה לא בלי מגבלות. אחת המגבלות העיקריות הוא דרישת עלות וזמן הקשורים גבוה מדגם עיבוד תפוקה. כאשר עיצוב מחקר דורש מספר רב של דגימות ביום נתון, אלה יכולים להיות קשים לעיבוד. עיבוד הוא יעיל על ידי השימוש במכשירים אלקטרוני וpipets,אבל אלה נוטים להיות יקרים ולא בהכרח זמינים בכל מעבדה.

האזור שלנו של מחקר מתמקד במחקר של כמה פעילות גופנית והרגלי תזונה משפיעים על בריאות מערכת חיסונית ולתפקד 6,8-10,18-20. יש יעדים כגון השלכות מעשיות משמעותיות עבור מגוון רחב של תחומי בריאות אדם. מעבר ללימוד השפעות הפעילות הגופנית ולתזונה בשיטת phagocytosis הפגינה בכתב יד זה יכול להיות שימושית בתחומים אחרים של אימונולוגיה קלינית בי הניטור של תפקוד phagocytosis הוא קריטי לתוצאות טיפול. Assay הנוכחי הוא הראשון מני רבים שמבחנים אימונולוגיים עם הפוטנציאל להיות מחדש שהומצאו על ידי לקיחת יתרונות של מידע ההדמיה הייחודי שיכול להיות יכול מזרימה מבוססת תמונה cytometer.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The present study was funded in part by a Research Initiation Grant (RIG) from the University of North Texas to Dr. McFarlin. The authors did not receive direct funding for the completion of this study and report no conflict of interest.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Vacutainers BD Life Sciences used for blood collection
WBC Fixative / RBC Lysis solution eBioscience 00-5333-57
CD66b-APC eBioscience clone G10F5
CD45-APCeFluor780 eBioscience clone 2D1
s.aureus bioparticles Life Technologies A10010
dihydroethidium Sigma-Aldrich D7008
N-ethylmalemide Sigma-Aldrich 4259
7AAD EMD Millipore
Hematology Analyzer Mindray BC-3200
96-channel pipet Integra Biosciences ViaFlo
Bead Bath Incubator LabArmour BeadBath
Imaging Flow Cytometer EMD Millipore Amnis FlowSight
INSPIRE Software EMD Millipore Amnis INSPIRE
IDEAS Software EMD Millipore Amnis IDEAS
X-Pierce Piercable Plate Sealer Excel Scientific, Inc. X-Pierce
Dell Precision Workstation Dell Computers Various Used for IDEAS analysis

References

  1. Kong, M., et al. The effect of alpha-fetoprotein on the activation and phagocytosis of granulocytes and monocytes. Hepatogastroenterology. 59, 2385-2388 (2012).
  2. Prakash, P. S., Caldwell, C. C., Lentsch, A. B., Pritts, T. A., Robinson, B. R. Human microparticles generated during sepsis in patients with critical illness are neutrophil-derived and modulate the immune response. J. Trauma Acute Care Surg. 73, 401-406 (2012).
  3. Salih, H. R., Husfeld, L., Adam, D. Simultaneous cytofluorometric measurement of phagocytosis, burst production and killing of human phagocytes using Candida albicans and Staphylococcus aureus as target organisms. Clin. Microbiol. Infect. 6, 251-258 (2000).
  4. Tsuji, S., Iharada, A., Taniuchi, S., Hasui, M., Kaneko, K. Increased production of nitric oxide by phagocytic stimulated neutrophils in patients with chronic granulomatous disease. J. Pediatr. Hematol. Oncol. 34, 500-502 (2012).
  5. Ortyn, W. E., et al. Sensitivity measurement and compensation in spectral imaging. Cytometry A. 69, 852-862 (2006).
  6. McFarlin, B. K., et al. A one-year school-based diet/exercise intervention improves non-traditional disease biomarkers in Mexican-American children. Matern. Child Nutr. 9, 524-532 (2013).
  7. McFarlin, B. K., Johnson, C. A., Moreno, J. P., Foreyt, J. P. Mexican-American Children have differential elevation of Metabolic Biomarkers that is proportional to Obesity Status. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. , (2013).
  8. Strohacker, K., et al. Moderate-intensity, premeal cycling blunts postprandial increases in monocyte cell surface CD18 and CD11a and endothelial microparticles following a high-fat meal in young adults. Appl. Physiol. Nutr. Metab. 37, 530-539 (2012).
  9. Carpenter, K. C., Breslin, W. L., Davidson, T., Adams, A., McFarlin, B. K. Baker’s yeast beta-glucan supplementation increases monocytes and cytokines post-exercise: implications for infection risk. Br. J. Nutr. , 1-9 (2012).
  10. McFarlin, B. K., Williams, R. R., Venable, A. S., Dwyer, K. C., Haviland, D. L. Image-based cytometry reveals three distinct subsets of activated granulocytes based on phagocytosis and oxidative burst. Cytometry A. 83, 745-751 (1002).
  11. McFarlin, B. K., Williams, R. R., Venable, A. S., Dwyer, K. C., Haviland, D. L. Image-based cytometry reveals three distinct subsets of activated granulocytes based on phagocytosis and oxidative burst. Cytometry A. 83, 745-751 (2013).
  12. Ichii, H., et al. Iron sucrose impairs phagocytic function and promotes apoptosis in polymorphonuclear leukocytes. Am J Nephrol. 36, 50-57 (2012).
  13. Ploppa, A., George, T. C., Unertl, K. E., Nohe, B., Durieux, M. E. ImageStream cytometry extends the analysis of phagocytosis and oxidative. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 71, 362-369 (2011).
  14. Van Amersfoort, E. S., Van Strijp, J. A. Evaluation of a flow cytometric fluorescence quenching assay of phagocytosis of sensitized sheep erythrocytes by polymorphonuclear leukocytes. Cytometry. 17, 294-301 (1994).
  15. Gullstrand, B., et al. Combination of autoantibodies against different histone proteins influences complement-dependent phagocytosis of necrotic cell material by polymorphonuclear leukocytes in systemic lupus erythematosus. J. Rheumatol. 39, 1619-1627 (2012).
  16. Fierro, M. T., et al. Functional and phenotypical impairment of polymorphonuclear cells in atopic dermatitis: an additional cause for the known susceptibility to infections. Dermatology. 224, 323-330 (2012).
  17. Gruger, T., et al. Negative impact of linezolid on human neutrophil functions in vitro. Chemotherapy. 58, 206-211 (2012).
  18. McFarlin, B. K., Venable, A. S. Measurement of Low Concentration Human Serum Cytokines using a Millipore High-Sensitivity Milliplex Assay. J. Vis. Exp. , (2014).
  19. McFarlin, B. K., Carpenter, K. C., Davidson, T., McFarlin, M. A. Baker’s Yeast Beta Glucan Supplementation Increases Salivary IgA and Decreases Cold/Flu Symptomatic Days After Intense Exercise. J. Diet. Suppl. 10, 171-183 (2013).
  20. McFarlin, B. K., Carpenter, K. C., Strohacker, K., Breslin, W. L. Comparison of blood monocytes and adipose tissue macrophages in a mouse model diet-induced weight gain. Comp. Med. 62, 462-465 (2012).

Play Video

Cite This Article
McFarlin, B. K., Venable, A. S., Prado, E. A., Henning, A. L., Williams, R. R. Image-based Flow Cytometry Technique to Evaluate Changes in Granulocyte Function In Vitro. J. Vis. Exp. (94), e52201, doi:10.3791/52201 (2014).

View Video