The described post-auricular surgical approach allows rapid and direct delivery into the mouse cochlear scala tympani while minimizing blood loss and animal mortality. This method can be used for cochlear therapy using molecular, pharmacologic and viral delivery to postnatal mice through the round window membrane.
感音難聴からの機能的回復を達成するために使用される遺伝子治療は、難聴に寄与する根本的な分子的および遺伝的メカニズムのより良い理解を与えることを約束する。内耳へのベクターの導入は、既存の構造への損傷を最小限に抑えながら、広く蝸牛全体にエージェントを配布する方法で行われなければならない。この原稿は、分子、薬理学的、およびマウス生後10日目と丸い窓膜(RWM)を介して、古いのウイルス送達を用いてマウス蝸牛治療に用いることができる後の耳介の外科的アプローチについて説明します。血液の損失を最小化し、動物の死亡を回避しながら、この外科的アプローチは、鼓室階への迅速かつ直接の受け渡しが可能になります。完全に聴力を維持しながら、この手法は、無視できるか、インナーと中耳の本質的な構造への損傷だけでなく、首の筋肉を伴う。この手術法、水疱glutamの有効性を実証するために、食べトランスポーター3ノックアウト(VGLUT3 KO)マウスは、アデノ随伴ウイルス(AAV-1)を使用して内耳にVGLUT3の送達後に聴力回復先天性難聴のマウスモデルの例として使用される。
遺伝子治療は、長い遺伝性難聴のための潜在的治療法として提案されているが、この分野での成功は、1とらえどころのないままである。現在までに、ウイルス媒介性の方法論は、比較的アクセス蝸牛内の特定の細胞型を標的とする理論的能力により優勢いる。アデノウイルス(AV)、アデノ随伴ウイルス(AAV)の両方が蝸牛遺伝子送達のために使用されている。のAAVは、多くの理由のために蝸牛で有利である。彼らは、複製欠損ウイルスであると効率的にニューロン、難聴の原因の数の重要な標的を含む、異なる種類の細胞に遺伝子導入する分子を転送することができます。細胞へのAAVのエントリは、特定の受容体2によって媒介される。このように、特定の血清型の選択は、形質導入される細胞型に適合しなければならない。のAAVは、効率的に有毛細胞3をトランスフェクトし、トラヒックの安定した長期発現をもたらす、宿主ゲノムに組み込むことができnsgenicタンパク質や細胞4における表現型の変化。毛髪細胞再生短期用途には必ずしも有利ではないが、長期発現は、遺伝的欠陥を安定救助のために非常に重要である。 AAVは、任意のヒト疾患または感染に関連しない耳毒性5,6,7を示さないれていないので、彼らは損失8聴力の遺伝型の遺伝子治療に使用するための理想的な候補である。
ウイルスベクターを用いて哺乳動物の内耳への外因性遺伝物質の移動は、過去10年間研究されており、損失9聴力の遺伝的および後天両方の形態を治療するための有望な技術として浮上している。蝸牛は、潜在的にいくつかの理由のために、遺伝子治療のための理想的な標的である:1)その小さな容積は、必要なウイルスの限定された量を必要とする。他の器官系の制限副作用2)の相対的な単離; 3)その流体充填チャンバは、ウイルスを容易にする迷路10、11,12,13,14、15を通じて配信。
先天性難聴のマウスモデルは、系統的、複製可能な方法で、内耳の開発を監視するための研究の多くの方法の使用を可能にする。マウス蝸牛の小さいサイズは、いくつかの外科的困難を提示しませんが、マウスが他の種16に比べていくつかの実験的な利点で、遺伝性難聴の研究に極めて重要なモデルとなる。マウスモデルは、遺伝的連鎖解析、詳細な形態学的観察の収集、および病原性のシナリオをシミュレートを通して特性の範囲の評価を可能にする。のような、それらがウイルス媒介遺伝子治療のための良好な候補である。技術の進歩と組み合わせたマウスでの広範な遺伝学的研究は研究室17,18、19、20,21全体で再現可能な方法で、遺伝子改変されたマウスを作製することが可能になりました。 Furthermor両方を取得し、この動物モデル22、23,24で厳密なテストを可能にする、マウスにおける難聴表現型を継承するための電子、多数のモデルが存在する。従って、マウスモデルにおいてウイルス媒介遺伝子治療を用いて聴覚を補正するヒト疾患の治療法の探索において適切な最初のステップである。
我々は以前胞性グルタミン酸輸送体3(VGLUT3)を欠くトランスジェニックマウスによるIHCリボンシナプス25におけるグルタミン酸放出の欠如のために聴覚障害者が生まれていることが示されている。この変異は感覚毛細胞の一次変性につながらないので、これらの変異マウスは、潜在的に先天性難聴のための蝸牛遺伝子治療をテストするに優れたモデルである。
現在までに、蝸牛遺伝子治療のためのウイルス送達技術の数が正円窓膜拡散、正円窓膜注射、および蝸牛を介した送達を含む、記載されている。強力ありますIAL利点及びこれらのアプローチ9のそれぞれの短所。
ここでは、正円窓膜(RWM)を介してVGLUT3 KOマウス内耳へのウイルス媒介遺伝子送達のための外科的方法を報告している。耳介RWM注入法は、優れた聴覚保護と低侵襲性であり、かつ比較的高速である。我々は以前に公開しているように、このマウスモデルで聴力回復するための努力で、VGLUT3遺伝子(AAV1-VGLUT3)を運ぶAAV1ベクターは、生後12日目にこれらの聴覚障害のマウスの蝸牛に導入した(P!@)、その結果26聴力の回復。導入遺伝子のタンパク質発現を免疫蛍光(IF)を使用して確認しながらVGLUT3 KOマウスにおいて聴力は、聴性脳幹反応(ABR)によって確認した。この方法論は、このように、ウイルス媒介遺伝子治療は、そうでなければ難聴になるだろう遺伝的欠陥を修正することができることを実証している。
本研究では、遺伝的欠陥によって損なわれている通常の聴覚機能を回復または救助を目的とし、詳細に蝸牛遺伝子治療に使用することができる技術が記載されている。それは典型的に非外傷性であるように、このアプローチは、人工遺伝子導入または他の潜在的な分子の治療法30に安全である。蝸牛療法のための他のアプローチは、腹側のアプローチ24、マウスおよびモルモ?…
The authors have nothing to disclose.
This work is supported by an R21 grant from the National Institutes of Health and by a grant from Hearing Research, Incorporated.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ketamine | Butler Schein | ||
Xylazine | AnaSed | ||
Acepromazine | Provided by UCSF LARC | ||
Carprofen analgesia | Provided by UCSF LARC | ||
Betadine | Betadine Puredue Pharma | ||
dexamethasone ophthalmic ointment (TobraDex) | Alcon | ||
Heating pad | Braintree scientific, inc. | ||
25G needle | BD | 305127 | |
Borosilicate capillary pipette | World precision instruments, inc. | 1B100F-4 | |
Suture PDS*plus Antibacterial | Ethicon | PDP149 | |
Tissue glue (Vetcode) | Butler Schein | 31477 | |
Rabbit Anti-GFP antibody | Invitrogen | A11122 | |
Dissecting microscope | Leica | MZ95 | |
Flaming/ Brown Micropipette | Sutter Instrument Co | ||
Puller Model P-97 | |||
TDT BioSig III System | Tucker-Davis Technologies |