Summary

Transplantation av Tail Hud att Studera Allogen CD4 T-cellsvar hos möss

Published: July 25, 2014
doi:

Summary

Tail-skin transplantation is a powerful model for studying T cell-dependent rejection and tolerance induction during allogeneic immune responses in mice. The advantages of this protocol are minor invasive surgery, and ease of monitoring with no need to sacrifice the recipient mouse.

Abstract

The study of T cell responses and their consequences during allo-antigen recognition requires a model that enables one to distinguish between donor and host T cells, to easily monitor the graft, and to adapt the system in order to answer different immunological questions. Medawar and colleagues established allogeneic tail-skin transplantation in mice in 1955. Since then, the skin transplantation model has been continuously modified and adapted to answer specific questions. The use of tail-skin renders this model easy to score for graft rejection, requires neither extensive preparation nor deep anesthesia, is applicable to animals of all genetic background, discourages ischemic necrosis, and permits chemical and biological intervention.

In general, both CD4+ and CD8+ allogeneic T cells are responsible for the rejection of allografts since they recognize mismatched major histocompatibility antigens from different mouse strains. Several models have been described for activating allogeneic T cells in skin-transplanted mice. The identification of major histocompatibility complex (MHC) class I and II molecules in different mouse strains including C57BL/6 mice was an important step toward understanding and studying T cell-mediated alloresponses. In the tail-skin transplantation model described here, a three-point mutation (I-Abm12) in the antigen-presenting groove of the MHC-class II (I-Ab) molecule is sufficient to induce strong allogeneic CD4+ T cell activation in C57BL/6 mice. Skin grafts from I-Abm12 mice on C57BL/6 mice are rejected within 12-15 days, while syngeneic grafts are accepted for up to 100 days. The absence of T cells (CD3-/- and Rag2-/- mice) allows skin graft acceptance up to 100 days, which can be overcome by transferring 2 x 104 wild type or transgenic T cells. Adoptively transferred T cells proliferate and produce IFN-γ in I-Abm12-transplanted Rag2-/- mice.

Introduction

Transplantation av fasta organ såsom hud, hjärta och njurar är nu ett standardförfarande i medicinsk praxis i hela världen 1. Framgångsrikt transplanterade organ kan avvisas av aktivering av mottagarens immunsystem, som erkänner de stora histokompatibilitetsantigener av donatorn. Därför transplanterade patienter behöver behandling med immunosuppressiva läkemedel 2. Allogen hud transplantation på möss etablerades av Medawar och kollegor i 1955 och var till hjälp för att identifiera de riktade molekylerna senare beskrivs som MHC (MHC) klass I och II. Sedan dess har hudtransplantation modellen kontinuerligt modifierats och anpassats för att studera betydelsen av T-cell-undergrupper och relevansen av kemiska och biologiska intervention i trycka avstötning av transplantat 2-4. Hud från örat och bålen är svårare att förbereda och är mer mottagliga för hypoxi och nekros än tail-skin 5; docktransplantationsförfarandet är likartad. Dessutom är lätt på grund av den karakteristiska hårstruktur av huden övervakning av svans-hudtransplantat.

Den här artikeln innehåller en detaljerad beskrivning av MHC klass II mismatch svans-hudtransplantation som gör det möjligt att studera olika aspekter av CD4 + T-cellmedierad avstötning och tolerans hos möss. Den naturliga tre-punktmutation i MHC klass Il-molekyl IA b (kallat IA bm12) 6-9 är tillräcklig för att inducera avstötning av hud-allograft i C57BL / 6 möss 8. Den IA bm12 molekylen aktiverar CD4 +-T-celler med diverse cell αβ-T-receptor (TCR)-kedjor från C57BL / 6 möss, bland vilka Vα2Vβ8-TcR-specifika T-celler identifierades i syfte att alstra en TCR-transgen mus 10. Den adoptiv överföring av Vα2Vβ8-TcR-specifika T-celler har använts för att etablera en kasse modell i immundefekta C57BL / 6 RAG2 – / – möss som transplanterats med IA bm12 hud.

Genetiska skillnader mellan givare och mottagare påverkar resultatet av transplantatacceptans och avvisande. Det finns olika typer av transplantationer: auto är transplantationer från den mottagande individen själv; syngrafts och allografter är transplantationer från genetiskt identiska och genetiskt obesläktade individer respektive. Godkännande av olika transplantationer allogen organ har visats genom kemisk och biologisk ingripande i patienter och musmodeller 11,3,4. I en grundläggande tillvägagångssätt, anti-CD3-antikropp-behandlade C57BL / 6 möss uppvisade förlängd överlevnad av IA bm12 tail-skin (opublicerade data). Utarmning av CD4 + och CD8 + T-celler före transplantation i mottagarländerna möss resulterade i godkännande av MHC klass I och II inkompatibla transplantat (rev. i 12). Intressant, avstötning av hudtransplantation beror på närvaron av CD4 + </sup> T-celler (rev. i 12). I denna modell kan rikta specifika interaktioner mellan olika immunceller genom att blockera samstimulerande molekyler med antikroppar eller undertryckande med regulatoriska T-celler inducerar tolerans (opublicerade data). Faktum är att blockera både CD40 och CD28 ledde till långvarig hud allograft tolerans 13,14.

Svans hudtransplantation är lätt att utföra och lätt att övervaka jämfört med transplantation av andra organ. Dessutom svans-hud transplantationer är lätt att förbereda och är mindre känsliga för ischemi än andra hud vävnader. I motsats till injicerade bedövningsmedel, användning av narkosgasen (isofluoran) vid transplantation förkortar både förfarandet och mottagare återhämtningstid. Curling av svansen-hud transplantation, vilket kan leda till ofullständig sårläkning och transplantatavstötning, förhindras genom tillämpning av vävnadslim. Dessutom IA bm12 tail-hudtransplantation modell aktiverar CD4 uteslutande <sup> + T-celler i både immunkompetenta och immundefekta möss (med samma genetiska bakgrund) att underlätta tolkningen av resultaten.

Detta protokoll beskriver en pålitlig, reproducerbar och lätt övervakas musmodell som möjliggör kemisk och biologisk ingripande. Modellen är avsedd för undersökning av avstötning och toleransinduktion av svans-hudtransplantat.

Protocol

I denna video publicering och protokoll, alla djurförsök utförs i enlighet med djur protokollet godkänts av kantonala myndigheten Basel-Stadt, Schweiz. Utför alla förfaranden i sterila förhållanden där så är möjligt. 1. Beredning av kirurgi Autoklavera alla kirurgiska instrument och gasväv före användning. Värm varma pad och organisera kirurgiska instrument på bordet (Table of Materials / metoder). Öppna finger remsor bandage….

Representative Results

I ett första tillvägagångssätt C57BL / 6 möss transplanterades med IA bm12 allograft och IA b syngrafts. När bandaget avlägsnas, ympar uppenbara tecken på sårläkning utan tillslutning av kontaktzonen i C57BL / 6 möss (Figur 1A). När bandaget avlägsnas, ledd av CD4 + T-cellförmedlad inflammation till utseendet på nekrotiska områden (röda prickar) och avstötning av IA bm12 allotransplantat i C57BL / 6 möss inom 13 dagar efter transplantation <…

Discussion

Hud transplantation är en allmänt använd metod för att studera avstötning och tolerans beroende av T-celler. Eftersom huden transplantationsmodell bildades har flera anpassningar och förändringar tillämpats. I det beskrivna förfarandet, är IA bm12 svans-hud transplantation utförs med hjälp av narkosgaser (isofluoran). Användningen av gas anestesi minskar tiden för utförande och möss återhämtning, vilket minskar belastningen på transplanterade möss. Proceduren använder vävnadsadhesiv att …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by SNF grants PPOOA-_119204 and PPOOP3_144918 to S.W.R. We thank E. Palmer and B.T.H. Hausmann for mice and technical expertise.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Betadine Standard solution Mundipharma
Cotton swab Carl Roth GmbH 31025060
Dafalgan , UPSA Bristol Myers Squibb SA
Hansaplast Finger Strips Beierdorf AG REF.76861
Histoacryl Tissue adhesive Braun REF.1050052
Leukotape classic , 2cm x 10 m BSN Medical SAS REF.02204-00
PBS, Phosphate-Buffered Saline, pH 7.4 Invitrogen 10010015 GIBCO
Sterile gauze, 5 x 5cm, 8ply MaiMed GmbH 21010
Surgical instruments  FST 11003-12 Narrow pattern forceps, 
14095-11 Fine iris scissor curved,
14094-11 Fine iris scissor 
14010-15 Mayo scissors,
14080-11 Artery scissors ball tip 11.5 cm 
11021-14 Tissue forceps
Surgical Blade No.20 Swann-Morton LTD 3006 Carbon Steel
Surgical blade Handles Swann-Morton LTD
Syringe, 1ml ARTSANA disposable
Temgesic , Buprenorphine ESSEX Chemie AG 0.3mg/ml
Tissue Culture dishes 10 cm, 60.1 cm2 TPP
Vaseline Vifor SA
Warm pad Solis Type 223

References

  1. Mahillo, B., Carmona, M., Álvarez, M., White, S., Noel, L., Matesanz, R. Global Data in Organ Donation and Transplantation. transplantation. 92 (10), 1069-1074 (2011).
  2. Halleck, F., et al. New perspectives of immunosuppression. Transplantation proceedings. 45 (3), 1224-1231 (2013).
  3. Wood, K. J., Bushell, A., Jones, N. D. Immunologic unresponsiveness to alloantigen in vivo. a role for regulatory T cells. Immunological reviews. 241 (1), 119-132 (2011).
  4. Sykes, M. Immune tolerance: mechanisms and application in clinical transplantation. Journal of Internal Medicine. 262 (3), 288-310 (2007).
  5. McFarland, H. I., Rosenberg, A. S. Skin allograft rejection.. Current protocols in immunology. , (2009).
  6. McKenzie, I. F., Morgan, G. M., Sandrin, M. S., Michaelides, M. M., Melvold, R. W., Kohn, H. I. B6.C-H-2bm12. A new H-2 mutation in the I region in the mouse. The Journal of experimental medicine. 150 (6), 1323-1338 (1979).
  7. McIntyre, K. R., Seidman, J. G. Nucleotide sequence of mutant I-A beta bm12 gene is evidence for genetic exchange between mouse immune response genes. Nature. 308 (5959), 551-553 (1984).
  8. Stuart, P. M., Beck-Maier, B., Melvold, R. W. Provocation of skin graft rejection across murine class II differences by non–bone-marrow-derived cells. Transplantation. 37 (4), 393-396 (1984).
  9. Hausmann, B., Palmer, E. Positive selection through a motif in the alphabeta T cell receptor. Science. 281 (5378), 835-838 (1998).
  10. Bill, J., Ronchese, F., Germain, R. N., Palmer, E. The contribution of mutant amino acids to alloantigenicity. The Journal of experimental medicine. 170 (3), (1989).
  11. Monaco, A. P. Immunosuppression and tolerance for clinical organ allografts. Current Opinion in Immunology. 1 (6), 1174-1177 (1989).
  12. Rosenberg, A. S., Singer, A. Cellular basis of skin allograft rejection: an in vivo model of immune-mediated tissue destruction. Annual Review of Immunology. 10, 333-358 (1992).
  13. Kingsley, C. I., Nadig, S. N., Wood, K. J. Transplantation tolerance: lessons from experimental rodent models. Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 20 (10), 828-841 (2007).
  14. Larsen, C. P., et al. Long-term acceptance of skin and cardiac allografts after blocking CD40 and CD28 pathways. Nature. 381 (6581), 434-438 (1996).
  15. Tomura, M., Nakatani, I., Murachi, M., Tai, X. G., Toyo-oka, K., Fujiwara, H. Suppression of allograft responses induced by interleukin-6, which selectively modulates interferon-gamma but not interleukin-2 production. Transplantation. 64 (5), 757-763 (1997).
  16. Ring, G. H., et al. Interferon-gamma is necessary for initiating the acute rejection of major histocompatibility complex class II-disparate skin allografts. Transplantation. 67 (10), 1362-1365 (1999).
  17. Rosenberg, A. S., Finbloom, D. S., Maniero, T. G., Vander Meide, P. H., Singer, A. Specific prolongation of MHC class II disparate skin allografts by in vivo administration of anti-IFN-gamma monoclonal antibody. Journal of immunology. 144 (12), 4648-4650 (1950).
  18. Goes, N., Sims, T., Urmson, J., Vincent, D., Ramassar, V., Halloran, P. F. Disturbed MHC regulation in the IFN-gamma knockout mouse. Evidence for three states of MHC expression with distinct roles for IFN-gamma. Journal of immunology. 155 (10), 4559-4566 (1995).
  19. Surquin, M., et al. IL-4 deficiency prevents eosinophilic rejection and uncovers a role for neutrophils in the rejection of MHC class II disparate skin grafts. Transplantation. 80 (10), 1485-1492 (2005).
  20. Gaylo, A. E., Laux, K. S., Batzel, E. J., Berg, M. E., Field, K. A. Delayed rejection of MHC class II-disparate skin allografts in mice treated with farnesyltransferase inhibitors. Transplant immunology. 20 (3), 163-170 (2009).
  21. Bose, A., Inoue, Y., Kokko, K. E., Lakkis, F. G. Cutting edge: perforin down-regulates CD4 and CD8 T cell-mediated immune responses to a transplanted organ. Journal of immunology. 170 (4), 1611-1614 (2003).
check_url/cn/51724?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Schmaler, M., Broggi, M. A. S., Rossi, S. W. Transplantation of Tail Skin to Study Allogeneic CD4 T Cell Responses in Mice. J. Vis. Exp. (89), e51724, doi:10.3791/51724 (2014).

View Video