Листерий является грамположительных бактериальных патогенов часто используется в качестве основного модель для изучения внутриклеточного паразитизма. Визуализация поздно Л. моноцитогенес инфекции этапы в контексте малых вмешательства РНК экранов позволяет глобального исследования клеточных путей, необходимых для бактериальной инфекции клеток-хозяев целевых.
Бактериальные внутриклеточные патогены можно рассматривать как молекулярных инструментов рассекать клеточные сигнальные каскады из-за их способности изысканно манипулировать и подорвать функции клеток, которые необходимы для заражения принимающих тканях-мишенях. Среди этих бактериальных патогенов, листерий является положительным микроорганизм грамм, который был использован в качестве парадигмы для внутриклеточного паразитизма в характеристике клеточного иммунного ответа, и которая сыграла инструментальные роли в открытии молекулярных путей, контролирующих динамику торговли людьми цитоскелета и мембраны. В этой статье мы опишем надежную микроскопическое анализа для обнаружения конце сотовой инфекции этапах L. моноцитогенес на основе флуоресцентного мечения InlC, секретируемого бактериального белка, который накапливается в цитоплазме инфицированных клеток; этот анализ может быть соединен с автоматизированным высокой пропускной малых интерферирующих РНК экранов, чтобы в угольacterize клеточные сигнальные пути, участвующие в до-или понижающей регуляции инфекции.
Грамположительные бактерии листерий является пищевого происхождения возбудитель что поражает клетки-хозяева, нарушает его интернализации вакуоль и реплицируется в цитоплазме клетки-хозяева 1. L. моноцитогенес легкость манипуляции в лаборатории контексте (быстрый рост, низкой токсичностью для здоровых людей), связанных с сохранением бактериальных вирулентности черт, наблюдаемых в клеточных и животных моделях (гемолитическая активность, лейкоцитоз) позволил его первоначальное использование в 1960-х в качестве основного модели изучение внутриклеточной паразитизма и для создания теоретических основ клеточного иммунитета против инфекции 2. В конце 1980-х и начале 1990-х годов, рассечение бактериальной внутриклеточной цикла 3, а также молекулярной характеристике наиболее важных бактериальной факторов вирулентности 4-7 благоприятствовали использованию L. моноцитогенес как ключевой молекулярной инструмент для манипуляций и шпилькиу функций клеток-хозяев. Наличие авирулентного (Л. innocua) и сильнодействующие (L. моноцитогенес) видов в роду Listeria проложили путь для сравнительной геномной исследований 8, что, вместе с недавним созданием полного L. моноцитогенес транскриптома 9, увеличились наше понимание эволюции L. моноцитогенес как человека возбудителя и в качестве модельной системы для инфекции изучает 10.
L. моноцитогенес вызывает ее интернационализации в клетки-хозяева при взаимодействии бактериальных поверхностных белков INLA и InlB с их хозяин клеточных рецепторов E-кадгерина и встретился соответственно 11-12. Первоначальные кандидатов на основе исследования привели к идентификации α / β катенины-актина ссылку в качестве важного компонента INLA-путей инвазии 13 и части фосфоинозитидного 3-киназы (PI 3-К) в качестве важнейшего эффектора InlB- зависит вторжение Cascaде 14-15. Протеомные и функционально-основанные анализы впоследствии позволило идентификация новых цитоскелета элементов 16 и липидных вторичных мессенджеров 17, необходимых для вторжения клетки-хозяина. Транскрипции исследования 18 и масс-спектрометрии на основе количественная протеомика 19 недавно пролить новый свет относительно активации принимающих сигнальных каскадов и репрессий иммунных реакций во время L. моноцитогенес инфекции. Системная биология подходы на основе инактивации больших наборов генов (kinomes, полных геномов) по малых интерферирующих РНК (миРНК) молчание недавно открыли новые возможности для анализа глобальной хозяина сигнальных каскадов в контексте специфических клеточных функций, в том числе фагоцитоза и патоген интернализация 20. Генома экраны миРНК были ранее выполнены, чтобы исследовать клеточные каскады, необходимые для заражения L. моноцитогенес в фагоцитарной дрозофилы </eм> S2 клетки 21-22, но этот тип анализа не была выполнена в не-фагоцитов, которые представляют важные цели для инфекции в естественных условиях.
Мы оптимизировали протокол для микроскопического выявления поздних стадиях инфекции L. моноцитогенес, который подходит для высокой пропускной миРНК исследований бактериальной вступления в эпителиальных клетках. Наш анализ использует высоко инвазивной L. моноцитогенес штамм, который представляет точечную мутацию в PrfA, основным регулятором транскрипции Л. моноцитогенес факторов вирулентности 6: эта мутация (названный PrfA *) оказывает PrfA постоянно активный 23 и приводит к повышенной экспрессии вторжения белков INLA и InlB, поэтому в пользу бактериальной запись в противном случае плохо инфицированных не-фагоцитов. Наша считывания для инфекции основано на обнаружении цитозольной накопления секретируемого белка бактериальной InlC: эта молекулаплейотропным эффектор, который выражается преимущественно внутри-цитоплазматической L. моноцитогенес 9 и которые не только участвует в бактериальной клетке клетки к распространяться 24, но которые также модулирует иммунного ответа 25. Флуоресцентный маркировка секреции InlC по внутриклеточных бактерий позволяет не только четко различать зараженными от неинфицированных клеток, но также представляет собой конечной точки считывания, который можно использовать в последующем рассекать инфекции в его различных этапов: вход, вакуолярной бежать, цитозольного бактериальной распространение и распространение от клетки к клетке. Этот протокол на основе микроскопии может быть соединен с экранами миРНК поэтому для изучения клеточных путей, участвующих в инфекции клеток-хозяев Л. моноцитогенес.
Некоторые параметры имеют решающее значение для успеха нашего протокола InlC обнаружения, в том числе с использованием здоровых клеточных линий, отображающих достаточно большое цитоплазму, чтобы позволить однозначную обнаружение сигнала InlC. В анализе мы представляем в этой статье мы п…
The authors have nothing to disclose.
Исследования в П. Cossart лаборатории поддерживается Институтом Пастера, Национальным институтом де-ла-Здоровье и де ла Recherche Medicale, Национальным институтом де-ла-Recherche агрономических, ERC Advanced Грант (233348), Национальное агентство по де-ла-Recherche (грант MIE- SignRupVac), Луи-Jeantet фонд и Фонд Ле Рош Les Mousquetaires. АК является получателем стипендии от Пастер-Париж университет международных докторской программы / Institut Карно болезней Infectieuses. Мы благодарим Джейсон Мерсер для оптимизации протокола сотовой трансфекции.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Bacto Brain Heart Infusion | BD | 237500 | For liquid BHI preparation |
Bacto Agar | BD | 214010 | Supplement to liquid BHI for BHI agar plates |
Heat-Inactivated Fetal Bovine Serum | Biowest | 51830-500 | |
DMEM | Invitrogen | 61965-026 | |
Lipofectamine RNAiMax | Invitrogen | 13778-100 | |
Gentamicin | Sigma | G1397-10ML | |
Formaldehyde (16%) | EMS | 15710 | Prepare fresh before each experiment |
Anti-Rabbit Alexa Fluor 546 | Invitrogen | A-11035 | |
DAPI | Invitrogen | D-1306 | |
Phalloidin Dy647 | Dyomics | 647-33 | |
siRNA Scramble | Dharmacon | D-001810-10 | |
siRNA Met | Dharmacon | L-003156-00-0005 | |
Black 384-well microscopy cell culture plate | Corning | 3985 | |
AxioObserver Z1 microscope | Zeiss | 431007 9901 | |
sCMOS camera | Andor | Neo | |
Metamorph analysis software | Molecular Devices | 4000 | |
CellProfiler analysis software | Broad Institute | Public software available at http://www.cellprofiler.org/ |