Здесь мы представляем электрофизиологических метод, основанный на твердом носителе мембран с акцентом на ее приложений для характеристики электрогенных транспортеры мембраны.
Электрофизиологические методы приведены основана на твердом носителе мембраны (SSM), состоящий из octadecanethiol хемосорбированный слой на золотом покрытием сенсорного чипа и фосфатидилхолин монослой на вершине. Этот блок установлен в системе кювету с электродом сравнения, хлорированный серебряная проволока.
После адсорбции в мембранных фрагментов или протеолипосом содержащий мембранный белок, быстрый обмен решение используется, чтобы вызвать транспортный активность мембранного белка. В одном решении протокол обмена два решения, одно не-активирующих и один активизирующий раствор, необходимы. Поток контролируется сжатого воздуха и клапан и трубопровод системы в клетке Фарадея.
Кинетика электрогенных транспортной деятельности получается с помощью емкостной связи между SSM и протеолипосомами или мембранных фрагментов. Способ, таким образом, дает лишь transienT токов. Пиковый ток представляет стационарных транспортной деятельности. Зависит от времени токи транспортера может быть восстановлена схема анализа.
Этот способ особенно подходит для прокариотической или эукариотической транспортеры транспортеры из внутриклеточных мембран, которые не могут быть исследованы зажим патч или напряжение методы зажима.
Здесь мы показываем новые электрофизиологические подход, основанный на твердом носителе мембраны (SSM) для характеристики электрогенных мембранных белков.
Твердый носитель состоит из тонкого слоя золота на предметное стекло, датчик чипа. Гидрофильные поверхности золота используется для связывания тиоловой группой alcanethiol реагента. После этого selfassembly из фосфатидилхолина monolyer завершает формирование защитного механизма.
Для измерения электрогенных реакции мембранных белков, протеолипосомами или фрагменты мембран, адсорбируются SSM (рис. 1). Белок, содержащий мембрану и ССМ затем образует емкостной связью мембранной системы. Таким образом, заряд транслокации в белок, содержащий мембраны могут быть обнаружены посредством емкостной связи через SSM. Этот метод дает лишь переходные токи. Пиковый ток представляет стационарных транспортной деятельности. Зависит от времени Cu Transporterrrents может быть восстановлено путем анализа схем.
Сенсорный чип смонтирован в систему кюветы (рис. 2). Кювета имеет цилиндрическую кювету объемом 17 мкл (нетто-объем с уплотнительным кольцом установлен). Контактный пружинного контакта создает контакт с усилителем. Выпускной патрубок ввинчивается в верхнюю часть основной части и несет опорный электрод, хлорированный серебряная проволока.
Кюветы устанавливают в клетку Фарадея. Это связано потока текучей среды, который используется, чтобы вызвать транспортный активность мембранного белка в ответ на быстрый обмен раствор (фиг.3). В одном решении протокол обмена два решения, одно не-активирующих и один активизирующий раствор, обязательны для заполнения. Поток контролируется сжатым воздухом с помощью программного обеспечения управления клапаном на компьютере или Выключатели на интерфейсный блок.
1. Преимущества SSM основе электрофизиологических сравнению с традиционными методами
SSM основе электрофизиологии зарекомендовал себя как ценный инструмент электрофизиологических инструментов. Это особенно полезно в тех случаях, когда соглашение электрофизиологии, а именно зажим патч и способы фиксации потенциала, не могут быть применены: Помимо редким исключением бактериальных транспортеров не могут быть исследованы с помощью фиксации потенциала или методов патч зажим из-за малого размера бактерий и потому их трудно выразить в клетках млекопитающих или ооцитов. Но и физиологически значимых млекопитающих транспортеры могут быть исследованы. В этом случае на основе SSM электрофизиологии является привлекательным для перевозчиков из внутриклеточных мембран и для скрининга приложений в лекарственных препаратах из-за своей надежности и ее потенциал для автоматизации.
ССМ-basedUsing обычных электрофизиологии, с разрешением по времени характеристику транспorters является сложной задачей. Поскольку оборот транспортеры низка гигантские патч "или конфигурации" целая клетка "требуется, имеющих по своей сути низким временным разрешением в эксперименте по обмену решение. Осложнения могут быть преодолены использованием фотолитическим релизе подложке. Однако, только ограниченное количество подложки подходит для этого подхода. Здесь быстрый обмен раствора при SSM предлагает уникальную возможность для выполнения электрофизиологических исследований с высоким разрешением по времени использования произвольных подложках.
2. Ограничения и важных шагов
В отличие от зажима патч и методики фиксации потенциала, SSM основе электрофизиологических не может быть использован для применения потенциала. Transporter характеристику поэтому ограничивается видами транспорта, которые не полагаются на мембранный потенциал.
В общем, SSM основе электрофизиологических не имеет ограничений относительно типа (электрогенных) транспортера. Но КЛМетоды усилителя или патч зажим может иметь преимущества, если внутриклеточных компонентов, таких как белки, необходимые для белка функциональности.
Ограничения могут возникнуть, если решение обмена создает большие токи артефакт. Это происходит, когда подложка сильно взаимодействует с SSM, как в случае липофильных соединений. Артефакт управления может быть использован для корректировки измеренных сигналов. Кроме того высоким содержанием соли фона во всех измерений буферы могут быть использованы для уменьшения артефактов. Однако в тех случаях, когда размер артефакт сопоставима с белком сигнал, это почти невозможно выделить белок связанный сигнал от артефакта. К счастью, высокий артефакты необычны в оптимизированным решением.
Есть несколько шагов, которые имеют решающее значение для успешной реализации ССМ-эксперимента на основе электрофизиологии. Подготовка образца белка является наиболее важной частью. Если протеолипосомами используются, убедитесь, что реконовпроституцией способ дает чистое, воспроизводимый образец достаточного LPR и транспортер ориентирована в правильном пути. LPR может быть проверена путем сублимационной перелома электронной микроскопии и ориентации эксперименте ELISA если антитела имеются.
Используйте только SSM, который показывает оптимальные параметры для инкубации образца белка. Инъекций белка еще один важный шаг. Обработка ультразвуком имеет важное значение и пузырьки воздуха следует избегать во время инъекции. После инкубирования пробы измерений сама критическая, потому что пузырьки воздуха удалит адсорбированная образец белка от датчика чипа. Поэтому всегда удаления пузырьков воздуха после изменения решения. Тем не менее сигнал изложение может произойти. Для устранения возможного изложение сигнала, очень важно, чтобы выполнить изложение управления в ходе эксперимента.
3. Специализированные системы
SSM-установки могут быть изменены в соответствии с применением. Кроме того тЗдесь совершенно разные, узкоспециализированные Доступны типы установок.
Существует возможность измерения белка сигналы при асимметричных условиях, например, под градиент рН. Чтобы установить асимметричные композиции буфера внутри и снаружи протеолипосомами третье решение, отдыхая решение, должен быть введен, и это требует двойной конфигурации обмена. Здесь дополнительно трехходовой клапан переключения между не-активирующих и покоя решений не требуется.
Для увеличения времени разрешение системы мы разработали альтернативный путь потока отсутствует терминал клапан, но с использованием другого типа кюветы. Здесь стыке активирующих и не-активирующий раствор расположен внутри кюветы, 3 мм в передней части защитного механизма. Эта установка хорошо подходит для кинетического анализа быстропротекающих процессов транспорта. Это может быть показано, что временное разрешение по цене от 2 мс возможна.
Коммерческая FUlly автоматизированным системам направленных на значительно более высокой пропускной способности для скрининга лекарственных средств. Подвижное устройство собирает решений и вводит их на поверхности сенсора в 96-луночных планшетах в стандартном формате микротитрационных плашек.
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим J. Garcia-Celma, я Смирнова и Р. Kaback за вклад в кружевных измерений и E. Бамберг за поддержку и полезные обсуждения.
Materials | |||
Waterbath Sonicator | Bandelin | RK 52 H | |
Tip Sonicator | Hielscher Ultrasonics GmbH | UP50H | |
2-way valve | NResearch, West Caldwell, USA | NR225T011 | |
Terminal valve | NResearch, West Caldwell, USA | NR225T031 | |
Manometer | Greisinger electronics | GDH 14 AN | |
Faraday cage | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Cuvette | Max Planck Institute of Biophysics | ||
100 ml solution containers | Kartell | 1623 | |
O-rings | Seal Science Inc. | ||
Oscilloscope | Tektronix | TDS 1002 | |
Reference electrode | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Function generator | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Tubings | SAINT-GOBAIN Performance Plastics | AAC00006 | |
Sensor chip | Fraunhofer Institut für Schicht und Oberflächentechnik | ||
Interface box | Max Planck Institute of Biophysics | ||
Amplifier | Keithley | 427 | |
Manual cog | Vygon GmbH | 876 | |
USB analog-to-digital converter | National Instruments | 6009 | |
Regeants | |||
1,2‑Diphytanoyl-sn-glycero-3-Phosphatidylcholine | Avanti Polar Lipids, Inc. | 850356 | |
Acrylamide/Bis-acrylamide | Sigma Aldrich | A3574 | |
Ammonium persulfate | Sigma Aldrich | A3678 | |
D-(+)-Glucose | Sigma Aldrich | G8270 | |
Dithiothreitol | Sigma Aldrich | 43819 | |
Ethanol absolut | VWR AnalaR NORMAPUR | 603-002-00-5 | |
Natural E. coli lipids polar extract | Avanti Polar Lipids, Inc. | 100600 | for LacY reconstitution |
n-Decane | Sigma Aldrich | D901 | |
Octadecanethiol | Sigma Aldrich | O1858 | |
Octadecylamine | Sigma Aldrich | 74750 | |
Potassium chloride | Merck | 1049360500 | |
Potassium phosphate dibasic | Sigma Aldrich | P3786 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma Aldrich | P9791 | |
Tetramethylethylenediamine | BIO RAD | 1610801 | |
α-Lactose monohydrate | Sigma Aldrich | L8783 |