甲状腺未分化癌の同所性マウスモデルの生成は、ここで記載されている。この技術は、このように、疾患の進行、並びにスクリーン革新的な治療的介入を研究するための、より臨床的に関連する設定を作成し、免疫不全マウスの甲状腺にヒト甲状腺未分化癌細胞の外科的な配置を採用している。
ヒト甲状腺癌の動物モデルのいくつかのタイプは、免疫不全マウスへの癌細胞の皮下異種移植片と同所移植を含む、確立されている。皮下異種移植モデルは、前臨床スクリーニングおよび新規治療処置を評価するために貴重であった。皮下モデルを使用する多くの利点があり、1)急速、2)再現性、及び3)腫瘍の確立、成長、および治療剤に対する応答は、目視検査によって監視することができる。しかし、実質的な証拠は1-3皮下異種移植モデルの短期出入りに光を当てました。例えば、皮下異種移植モデルで治療特性を示す薬用治療は、多くの場合、人間の病気には顕著な影響を及ぼさない。異種移植移植または注射部位の微小環境は、この相違の中心に位置しています。
同所性腫瘍の異種移植モデルは、よりbioloを提供病気を研究する中でgically関連コンテキスト。宿主動物内での解剖学的起源と同等に病気の細胞や組織を移植することの利点は、適当な腫瘍 – 宿主相互作用のためのサイト、疾患関連転移の開発と治験治療の救済にサイト固有の影響を調べるための機能が含まれています。彼らは密接に人間の病気を再現するので、したがって、同所移植モデルは、はるかに多くの臨床的価値を抱く。これらの理由から、グループの数は、研究ツールとして4-7同所性甲状腺癌モデルを利用している。
ここでは、高度に侵襲的で未分化甲状腺癌(ATC)の研究のため同所モデルを確立し、治療に抵抗し、すべての診断された患者に事実上致命的であるアプローチを記述します。培養された細胞は、ATC基底膜マトリックスを含む溶液中で解離し、細胞懸濁液として調製される。小音量がゆっくりINJです右甲状腺にected。マウスの全体的な外観と健康最小限の術後合併症を確保し、癌の病理学的浸透度を測定するために監視される。マウスは、4週間後に屠殺し、そして組織学的分析のために回収される。動物は、疾患のより高度な進行を調べるために後での時点で採取してもよい。当社ATC病理の理解、および有効性のための2)の画面の現在および将来の治療薬ATCとの闘いでさらに1):この同所マウスモデルの生産は、二つの目的を達成するプラットフォームを確立します。
我々のモデルでは、動物は、4週間後噴射によって悪液質および呼吸窮迫に関連甲状腺腫瘍転移および疾患を示した。細胞懸濁液の注射可能な送達を利用して他のほとんどの同所性モデルと同様に、周囲の組織への注射及び目標を超えて広がるポスト噴射の漏れが可能である。それが言われていると、この手順で生成1認識潜在不明、非疾病関連の転移や合併症へのオフターゲット暴露の効果である。これは関係なく、調査されて、病気の、ほとんどの異種移植移植の一般的な関心事である。それにもかかわらず、転移の意図しない結果が有意にぴったりと甲状腺を覆う膜を貫通した針先端の全体のベベルを確保し、徐々に細胞懸濁液を排出することによって最小化することができる。漏れが注入中または後に観察された場合、それらの動物を研究から省略してもよい。
<p c少女= "jove_content">それは動物が甲状腺/気管や他の組織を採取する前に灌流されることが不可欠である。利点は、組織形態と整合性が保持されます)赤血球がパージされ、組織標本と2を乱雑にしません)、1の二倍である。さらに、どちらかの腫瘍塊が添付されているか、その中に埋葬されて切除甲状腺/気管、解剖学的ランドマークは、組織学的準備のために埋め込まれる前に識別することができるような方法でカットする必要があります。これは劇的に標本作製時間を短縮できます。本稿では、ATC細胞の同所注射後高度甲状腺腫瘍の局所成長および浸潤を記述します。 ATC転移は、ヘマトキシリン及びエオシンなどの標準的な組織学的汚れを使用して、他の組織の組織学的調製物を分析または免疫組織化学によって細胞または病理学関連マーカーを利用することによって調べることができる。このシステムはさらに、報告して開発することができるリアルタイム画像は、転移の治療処置の有効性をモニターするために使用することができるようにenetically蛍光記者と甲状腺癌細胞を修正する。
The authors have nothing to disclose.
著者は、博士に感謝したいと思います。手術の訓練での支援のためのWenjunのLiとダニエル独楽(セントルイスの医学のワシントン大学)。 RYLは健康グラントR01 DK068057とセントルイス大学の学長の研究基金の国立研究所によってサポートされています。
Name of Reagent/Material | Company | Catalogue Number | Comments |
RPMI 1640 cell culture media | Mediatech | 10-041-CV | Media and additives used depend on cell line |
TC10 Automated Cell Counter | Bio-Rad | 145-0001 | |
Matrigel | Becton, Dickinson and Company | 354234 | |
Graefe Forceps, Serrated; Slight Curve, 4″ | Roboz | RS-5135 | |
Disposable scalpel, No. 15 | Feather | 2975#15 | |
Olsen Hegar Needle Holder – 4 ½” delicate serrated | gSource | gS 21.5400 | |
6-0 nylon black monofilament suture | Surgical Specialties Corporation | 1279B | |
Heating Pad, reusable, 8″ x 12″ | |||
Cloth tape, 1″ X 10 yds | Medline | MIINON260101 | For restraining anesthetized mouse |
Peanut Clipper/Trimmer | Wahl | 8655 | For removing hair from surgical site |
ChlorHex-Q SCRUB 2% | Penn Veterinary Supply | VED1222 | |
Betadine | Henry Schein Company | 6906727 | |
Petrolatum ophthalmic ointment | Dechra Veterinary Products | 17033-211-38 | |
2 x 2 gauze, 12-ply | Butler Animal Health Supply | 6936 | |
Sterile Field, Barrier, 18″ x 26″ | Busse | 696 | |
Drapes (CSR Wrap) | Cardinal Health | AT 21 412 | |
27G ½” needle | Becton, Dickinson and Company | 309623 | |
31G 5/16″ needle | Becton, Dickinson and Company | 328438 | |
Ketamine (9 mg/ml) / xylazine (1 mg/ml) solution | |||
Triple antibiotic ointment |