Summary

Il saggio neuroblasti: un test per la generazione e arricchimento delle cellule progenitrici neuronali di differenziare i Progeny cellule staminali neurali in citometria a flusso

Published: April 22, 2012
doi:

Summary

Questo protocollo video viene illustrato un nuovo metodo per la generazione e la successiva purificazione delle cellule progenitrici neuronali da una fonte rinnovabile di cellule staminali neuronali (NSC) sulla base della loro fisico (granularità e dimensione interna) e proprietà di fluorescenza usando citometria di flusso tecnologia.

Abstract

Le cellule staminali neuronali (NSC) possono essere isolate ed espanse in larga scala, utilizzando il saggio neurosfere e differenziato in tre tipi principali di cellule del sistema nervoso centrale (CNS); vale a dire, astrociti, oligodendrociti e neuroni. Queste caratteristiche rendono staminali neurali e cellule progenitrici una preziosa fonte rinnovabile di cellule per studi in vitro, come lo screening di stupefacenti, neurotossicologia ed elettrofisiologia ed anche per la terapia di sostituzione cellulare in molte malattie neurologiche. In pratica, tuttavia, l'eterogeneità della progenie NSC, bassa produzione di neuroni e oligodendrociti, e il predominio di astrociti seguenti differenziazione limitare le loro applicazioni cliniche. Qui, descriviamo una metodologia innovativa per la purificazione e la successiva generazione dei neuroni immaturi di topo nati da NSC con fluorescenza selezione delle cellule attivate (FACS), la tecnologia. Usando questa metodologia, altamente arricchito neuronale popolazione di cellule progenitrici può essere realizzato spiritoHout qualsiasi astrociti evidente e bona fide contaminazione NSC. La procedura prevede differenziazione di progenie NSC isolate ed espanse da E14 eminenze gangliari topo con il test neurosfere, seguito da isolamento e arricchimento delle cellule neuronali immature base alle loro proprietà fisiche (dimensioni e complessità interna) e fluorescente citometria di flusso tecnologia. Nel complesso, ci vogliono 5-7 giorni per generare neurosfere e 6-8 giorni per differenziare progenie NSC altamente purificato e isolare cellule neuronali immature.

Protocol

1. Impostazione di base prima di procedere alla coltura cellulare NeuroCult Media NSC basale e NeuroCult NSC supplementi proliferazione vengono miscelati con un rapporto 9:1, rispettivamente, per rendere completo supporto NSC. A 37 ° C bagno di acqua viene utilizzata per riscaldare il mezzo. Giusta quantità di calore inattivato siero fetale bovino (FCS) è stato scongelato. Quantità appropriata di soluzioni crescita fotografici fattore compreso il fattore di crescita epidermic…

Discussion

La capacità di isolare definite popolazioni di cellule nervose (neuroni cioè, astrociti e oligodendrociti) potrebbe risolvere alcuni degli impedimenti connessi con l'applicazione clinica delle cellule staminali neurali (NSC). In primo luogo, ci permette di caratterizzare completamente la popolazione di partenza di cellule del donatore. In secondo luogo, permette di utilizzare un particolare tipo di cellula o una combinazione di tipi di cellule diversi con un rapporto specifico, a seconda della natura o stadio dell…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto da un finanziamento della Fondazione Overstreet.

Materials

Name of the reagent Type Company Catalogue number Comments
NeuroCult NSC Basal Medium Medium Stem Cell Technologies 05700  
NeuroCult NSC Proliferation Supplements Medium supplement Stem Cell Technologies 05701  
%0.05    trypsin-EDTA Reagent Gibco 25300-062  
Soybean trypsin inhibitor Reagent Sigma T6522  
Pen/Strep Reagent Gibco 15140-122  
*MEM Reagent Gibco 41500-018 HEM component
*HEPES Reagent Sigma H4034 HEM component
*Distilled water Reagent Gibco 15230-147  
Cell strainer Sieve BD Falcon 352340  
T25 flask Culture ware Nalge Nunc international 136196  
T80 flask Culture ware Nalge Nunc international 178905  
15 ml tubes Culture ware BD Falcon 352096  
50 ml tubes Culture ware BD Falcon 352070  
EGF Growth factor R&D 2028-EG  
b-FGF Growth factor R&D 3139-FB  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
Anti-PSA-NCAM-PE Antibody Miltenyi Biotec 130-093-274  
PE- Conjugated mouse IgG1 Isotype control antibody BD Pharminogen 556029  
Heparin Growth factor Sigma H4784 Reconstituted in PBS
HrBMP-4 Growth factor R&D 314-BP-010  
Poly-L-Ornithine Reagent Sigma P4957  
Fetal Calf Serum Medium Supplement Gibco 10099-141  
GFAP Antibody DAKO Z0334  
B-III tubulin Antibody Promega G7121  

*To make HEM, mix 1 x 10 L packet of MEM and 160 ml of 1M HEPES and bring the volume to 8.75 L using distilled water. Set the final PH to 7.4 and store it at 4 °C.

References

  1. Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (45), e2393 (2010).
  2. Azari, H., Sharififar, S., Rahman, M., Ansari, S., Reynolds, B. Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (47), e2457 (2011).
  3. Siebzehnrubl, F. A., Vedam-Mai, V., Azari, H., Reynolds, B. A., Deleyrolle, L. P. Isolation and Characterization of Adult Neural Stem Cells. Methods. Mol. Biol. 750, 61-77 (2011).
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  5. Azari, H. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS One. 6, e20941-e20941 (2011).
  6. Amariglio, N. Donor-Derived Brain Tumor Following Neural Stem Cell Transplantation in an Ataxia Telangiectasia Patient. Plos Medicine. 6, 221-231 (2009).

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Cite This Article
Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. The Neuroblast Assay: An Assay for the Generation and Enrichment of Neuronal Progenitor Cells from Differentiating Neural Stem Cell Progeny Using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (62), e3712, doi:10.3791/3712 (2012).

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