Summary

对赫斯特的分离与表征 CD45小鼠肺间质干细胞

Published: October 26, 2011
doi:

Summary

在这篇文章中,我们展示了居民小鼠肺间质干细胞(肺海安),他们的扩张,表征和分析免疫属性的隔离。

Abstract

组织居民间充质干细胞(MSC)是组织修复或再生,纤维化,炎症,血管生成和肿瘤形成的重要调节因子。两者合计,这些研究表明,居民肺癌的MSC发挥的作用在肺组织的动态平衡,损伤和修复过程中,如肺间质纤维化(PF)和动脉高压(PAH)的疾病。在这里,我们描述一个技术定义的居民肺癌海安人口。这部分人口在体内的肺组织的定义,使用定义的标记,方便重复隔离的一个特点是干细胞流式细胞仪和一个特定的细胞类型和功能的研究人口。

Protocol

1。肺隔离牺牲成年小鼠(8-10周的年龄; C57Bl6J 18-20克)小鼠异氟醚的过量使用无菌放血。资料会略有不同菌株之间。 手术取出膜片,打开胸腔,通过鼠标两侧的肋骨横向切割。轻轻地使用磷酸盐3 5mls灌流右心室的血液从肺部冲洗缓冲液(PBS)。 解剖肺叶用Hanks填补了培养皿中删除气管,大支气管和地方缓冲液(HBSS)。以下收集所有肺癌肺叶钳盘的盖子放到组织。然后组织到足够的液体一次性使用手术刀,保持湿​​润,但没有这么多,他们漂浮和移动的小块肉末。 解剖小鼠后肢和孤立的骨髓染色控制使用设置FLO瓦特仪门。染色的骨髓(BM)作为先前描述1。 2。从肺组织单细胞悬液的制备每个肺是通过优化组织重量体积比0.2克:5mls预热0.2%沃辛顿2型胶原酶(顿生化,翠湖,新泽西州,猫#LS004202),溶解在无菌的HBSS消化。该混合物在37℃水浴30分钟2,3中浸泡。 磨碎样品,直到肺组织消化流动很容易通过10毫升吸管(约10重复)。孵育额外的15分钟,在37 ° C到完成组织消化,并确保更均匀的单细胞悬液。 稀释肺细胞悬液与HBSS和磨碎与5毫升吸管驱散剩余的组织碎片。 过滤器暂停使用70μM细胞过滤器去除未消化的组织碎片。样品可分为multipl在这一点上发送锥形管,以防止超载一个细胞过滤器和减少时间。 沉淀10分钟在1500转和倒出上清液的细胞悬液。 轻轻重悬细胞沉淀用室温红细胞裂解液(eBiosciences,圣迭戈,CA;猫#00-4333-57)在室温下5分钟,并培育。加入等体积的HBSS灭活裂解液和过滤器使用40微米的细胞过滤器,清除杂物和细胞聚集的细胞悬液。 移液器的每个样品中加入10μl染色,肺和骨髓样本使用血球计数细胞数量。注:记录细胞的总量。 颗粒的肺细胞的单细胞在10分钟1500转离心悬浮。 肺和骨髓细胞重悬在1 × 10 6细胞/毫升在预热(37℃)的DMEM +(贝科的修改鹰的中,高血糖(Gibco公司,卡尔斯巴德,CA;猫#11965-092)含2%胎牛血清boviNE血清(FBS)和10mm的HEPES。 准备一个解决方案,在水中的Hoechst 33342染料(Sigma公司,圣路易斯,密苏里州;猫#B2261)1mg/ml的股票和过滤消毒1,4。 Hoechst染料可能会储存在-80 ° C作为等分赫司特33342染料添加到最后一个5μg/ml的浓度(200X的一个1mg/ml的股票稀释)的单细胞悬液。 轻轻反转,并培育混合细胞在37℃水浴整整90分钟。 3。染色和龙流式细胞仪分析细胞悬液的制备 90分钟后用Hoechst染色肺细胞的所有步骤必须执行在4 ° C或冰以防止染料外排。颗粒细胞在1500转离心10分钟,4℃,在冰冷的染色缓冲液(PBS 2%FBS的)重悬细胞。 在使用300 -600μl的PBS含2%的浓度不超过1 × 10 7细胞/管悬浮细胞FBS和10毫米的HEPES。 新增充分tittered CD45抗体(通常1:200稀释(BD Pharmingen公司,加利福尼亚州圣迭戈猫#559864),CD45 – APC的肺和骨髓样本,在冰上孵育10-15分钟包括在未染色的控制。实验过程是有用的设置分析盖茨。 颗粒细胞在4 ° C下5分钟1500转。弃上清,悬浮细胞冷冻染色缓冲液(PBS 2%FBS的)在500μL。转让prechilled管理单元第聚丙烯管(Fisherbrand,绍姆堡,白细胞介素;猫#14 – 956 – 1D)。 加入碘化丙啶(PI,200μg/ml股票在PBS)浓度为2μg/ml最终排除死细胞样本。 PI必须结合使用的Hoechst 33342染料来实现正确的流式细胞仪分析后的荧光轮廓。 存放在冰管,保护,直到流式细胞仪分析。 4。流式细胞仪分析,以确定和隔离一个肺间质干细胞(肺MSC)的人口使用Hoechst染料外排检测侧群(SP) 本分析有以下仪器要求: 488 nm和紫外线(350-355纳米)激光器 2蓝色(六十五分之四百五十〇)和红色(五十分之六百七十五)过滤器的紫外激光路径上的探测器。 红色的紫外线探测器必须具有高灵敏度的红色信号。这可能是一个旧的细胞分拣中存在的问题。 冷热水机组,样品保持在5-10 ° C。 对齐激光器和细胞分选,按照制造商的协议。 收集红色(X轴)和蓝色(Y轴)赫斯特信号采用线性规模。 光电倍增管电压调整放在情节的G0/G1期的高峰,在右上角的中心,以便尾随方人口的足够的显示。部分的细胞周期的S期和整个G2可能规模上右上角的情节。蓝色信号NAL是比较光明的,而红色信号是暗淡的。典型MoFlo XDP(Beckman Coulter公司,迈阿密,佛罗里达州)的电压是425为蓝色和红色的650。 死细胞出使用PI门控。可以使用标准的PI路径(488nm激发,发射630nm)。此外,PI是兴奋的紫外激光和死细胞人口在于规模的右侧侧群(SP)的情节。这减轻了需要补偿从任何其他如FITC和PE荧光的PI信号。原古德尔方法遵循5-7后者程序。 在分析过程中保持相对低的压差和排序,以确保紧的一面人口解决。 SP的出现,除了从肺细胞的主要人口侧臂。这一人群被称为赫斯特低 。 的Hoechst 低 / SP进行分析,以独立的CD45的正面和负面的人群使用直方图 2,3(六igure 1)。 选择和浇注的Hoechst 低 CD45的NEG肺海安人口的细胞可能被收集整理成筒或单细胞作为一个人口混杂,隔离到一个96 孔板 3的克隆。 排序的排序流偏转板调整至25%,创造一个更垂直的排序比通常用于管排序流。 目的排序流发送到左上角的测试流脉冲,然后右下角的一个96孔板。 设置分拣机软件板块地图存入每口井所需的细胞数量。 要隔离单细胞克隆是一个单肺MSC排序进入到培养基150μl(α- MEM补充含20%FBS)以及96孔板。排序中的额外100μL。 5。肺癌的MSC和克隆的分离,培养和表征 CulturE和扩大混合肺MSC人口和单细胞克隆以下排序是相同的,使用标准的文化条件(37 ° C,5%CO 2和湿度> 95% )。细胞是坚持16小时以下隔离。媒体是每48小时更换(α- MEM含20%FBS的补充)。当细胞开始增殖更迅速,更达到75-80%汇合,他们是代(图2)之间。 细胞是预热的HBSS冲洗,并用0.5%胰蛋白酶/ EDTA(Cellgro,弗吉尼亚州马纳萨斯的猫#25 – 053 – CL)在37 °不到2分钟,C。细胞是通过一个倒置的范围,以确认一个细胞悬液的外观。 龙海安,然后再除以在1:2或1:3的比率取决于对当前的文化增殖率。 肺癌的MSC能够分化成传统的间充质谱系的成骨细胞,脂肪细胞和软骨细胞和他们的接受间质标记的细胞表面表达我小号评估每个单元的准备。细胞遗传学显带分析也进行确认总值2,3,8-11染色体异常的情况下。 6。肺海安枚举使用克隆形成实验(CFU – F) 完成MesenCult介质(干细胞技术,温哥华,不列颠哥伦比亚省)稀释到终浓度为1 × 10 6细胞/ ml的细胞。 执行系列稀释,以实现最终浓度在6×10 4个细胞,3×10 4细胞,1.5 × 10 4细胞,并在媒体10毫升0.75 × 10 4细胞百毫米菜。分析重复或一式三份,每个单元的浓度和可能规模较小的表面积。 10天标准条件下培养细胞。第10天细胞,用PBS冲洗,固定为5分钟,在室温下使用100%的甲醇。 检测经染色的CFU – F的殖民地,与0.4%W / V姬姆萨染色解决方案(西格玛化工有限公司,圣路易斯,密苏里州),用去离子水稀释1:20。允许样品风干和量化殖民地的殖民地大于25%的细胞(图3)。 7。 T细胞增殖和凋亡肺癌的MSC的免疫调节特性分析 6.25×10 4每口井的MSC细胞肺癌接种于96孔板,静置过夜 2 。 CD4 + T -细胞受体(TCR)转基因小鼠,卵清蛋白323-339肽与T细胞能够识别OT -二,脾脏细胞纯化消耗+,CD19 +,MHC -Ⅱ+和CD25 +细胞与CD8一个Miltenyi AutoMACS细胞分选(Miltenyi,赤褐色,CA)。抗原呈递细胞(APC)是孤立的积极排序MHC -Ⅱ+细胞12。 APC的4%多聚甲醛是固定的,在PBS / 5%BSA/2mM EDTA洗3次,0.5μg/ml或5μg/ M加载升OVA323肽。 模拟,被捕APC的增长是在96孔板肺海安。 大于95%,纯的CD4 + 1 × 10 5细胞标记5μM羧基琥珀酰亚胺酯(CFSE;西格玛,密苏里州圣路易斯)的PBS孵育5分钟,在黑暗中,洗净,用PBS – 5%BSA,然后添加到APC和肺的MSC细胞在DMEM培养液5%胎牛血清媒体。细胞,然后培养96小时。 T细胞,然后防抗CD40分子(Cy5的); CD4(APC – Cy7); CD8(上ViolBlue); Vbeta 5(PE)和染色检测使用一个Miltenyi MacsQuant 7通道流式细胞仪(Miltenyi,Aurburn,CA)和FloJo分析软件(Treestar,亚什兰,或)。扩散是减少的背景相比,平均CFSE荧光强度测量,与CFSE标记的T细胞,并没有接触到APC(图4)。 T细胞计数在这个时候,可行性评估与台盼蓝排斥。 8。代表性的成果: <p class="“jove_content”"> 图1流式细胞仪分析和龙的MSC定义 。肺组织消化的单细胞悬液用Hoechst 33342染色和流式细胞仪检测出的差异。前向散射(FSC)和侧向散射(SSC) 和 B。赫斯特蓝色和红色荧光。在门口看到一个侧群(SP)的存在。然后分析的Hoechst 低 SP单独的 C。 CD45 阴性肺癌海安人口。 CD45的积极肺SP负比率通常是70:30 / 60:40。 图2:龙的MSC分离和文化。以下收集的肺癌细胞分选海安,细胞镀在使用α- MEM supplem30毫米菜ented含20%FBS。新鲜排序细胞出现小的,圆而明亮,B 。经过约2-3周与间充质表型的殖民地成为明显和扩散更为明显。 每所描述的协议扩展肺海安镀CFU – F检测。 答 :经过10天和姬姆萨染色菌落是显而易见的。B.菌落大的一个组成图3。菌落形成成纤维细胞含量的MSC中的枚举。数百个细胞C.细胞显示间充质的表型。 A和B,比例尺= 0.5厘米,C比例尺= 0.14厘米。 图4。CFSE基于T细胞增殖实验 。在肺MSC和antige存在的情况下ñ呈递细胞(APC)+ / -卵白蛋白(OVA)CD40的积极效应T细胞表现出CFSE强度下降,这表明扩散(红色圆圈) 。 CFSE荧光强度降低的T细胞膜化学计量与每一个细胞分裂,即。各个部门。在肺癌海安,APC的存在+ / – OVA,CD40阳性效应T细胞表现出CFSE强度没有显着的变化,这表明缺乏扩散(红色圆圈)。

Discussion

我们已经适应了最初的方法,用于确定骨髓造血干细胞分离的居民肺癌的MSC的具体人口。由于隔离的重复性这些​​细胞,然后很好的特点,海安。其原籍已被定义为在成年小鼠肺癌(反对骨髓衍生)的居民和表型和分子的个人资料记录2。反复隔离这一特点的人口的能力允许的生物的重要性,并在组织的动态平衡和疾病肺MSC的作用的进一步研究。在小鼠和人类的肺组织最近的人口在体内的定义,有利于发展的内源性细胞在肺损伤和疾病的修复,以方便救援指挥了治疗策略。

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是由SMM的补助:果酸GIA0855953G,NIH 1R01 HL091105 – 01。提供了额外的支持:德国之声:国立卫生研究院RO1DK075013,DDK和Kleberg基金会的UCCC流式细胞仪核心研究院(NIH 5 P30的CA 46934-15),UCCC芯片的核心(NCI的P3​​0的CA 46934-14)。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma P-5368  
Hanks buffered salt solution (HBSS) Thermo Scientific SH30588.01  
0.2% Worthington type 2 collagenase Worthington Biochemicals LS004202  
Red blood cell lysis buffer eBiosciences 00-4333-57  
DMEM Invitrogen Gibco 11965-092  
Hoechst 33342 dye Sigma B2261  
CD45-APC BD Pharmingen 559864  
Propidium iodide Sigma 81845  
a-MEM Thermo Scientific SH30265.01  
FBS Invitrogen 16000-069  
0.5% trypsin/EDTA Cellgro 25-053-Cl  
Complete MesenCult Medium Stem Cell Technologies 05511  
0.4% w/v Giemsa staining solution Sigma GS1L  
4% paraformaldehyde Electron Microscopy Services 15710 16% paraformeldehyde is diluted to 4% using PBS
Carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE) Sigma 21888  

References

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Chow, K. S., Jun, D., Helm, K. M., Wagner, D. H., Majka, S. M. Isolation & Characterization of Hoechstlow CD45negative Mouse Lung Mesenchymal Stem Cells. J. Vis. Exp. (56), e3159, doi:10.3791/3159 (2011).

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