Трансплантация мыши нервные стволовые клетки (NSCs) в спинной мозг мышей с установленными демиелинизации подробно. Подготовка NSCs, ламинэктомия грудного позвонка 9 (T9), а также трансплантация NSCs изложена наряду с пред-и послеоперационного ухода за мышами.
Мышей, инфицированных штаммом нейротропных JHM вируса гепатита мыши (MHV) разработать патологические и клинические результаты похожи на пациентов с демиелинизирующих заболеваний рассеянным склерозом (MS). Мы показали, что трансплантация NSCs в спинной мозг больных результаты мышей значительное улучшение в обеих ремиелинизации и клиническим исходом. Сотовые замены терапии для лечения хронических неврологических заболеваний в настоящее время реальности и в естественных условиях модели имеют жизненно важное значение для понимания связей между привитых клеток и микроокружения тканей хозяина. Данная презентация представляет собой адаптированный метод пересадки клеток в спинной мозг JHMV-инфицированных мышах. Короче говоря, мы предлагаем процедуру я) подготовка NSCs до пересадки, II) дооперационной заботы о мышах, в) воздействие спинного мозга через ламинэктомии, внутривенно) стереотаксической инъекции NSCs и IV), послеоперационный уход .
Хорошо выполняется пересадка будет зависеть в первую очередь на осторожны ламинэктомии и инъекции клеток. Первичного ловушка, чтобы избежать во время ламинэктомии является повреждение спинного мозга. Это может произойти во время самой процедуры или повреждения, вызванные резким костных фрагментов оставил после процедуры. Чтобы избежать этих, убедитесь, что точки изогнутые ножницы микро всегда обращена от мозга и внимательно изучить laminectomized позвоночника обеспечить, чтобы все фрагменты костей будут очищены, и что оставшиеся позвоночные структура не имеет откровенно выступающими или зазубренные края.
Как упоминалось ранее, обнаружение истечения будет возможно, если свет сияет ярко и непосредственно на открытой спинного мозга во время инъекции. Истечение, скорее всего, произойдет с 30-иглы (по сравнению с 33 калибр), и если инъекция делается слишком быстро. Хотя этот протокол дает нам хорошие результаты, а другие сообщали дольше период ожидания (до 5 минут) до втягивания иглы после инъекции 8,9. Кроме того, меньшие иглы калибровочных предпочтительнее, но мы заметили, что некоторые клетки слишком легко лизируются при прохождении через иглы 33 калибра.
Для обеспечения максимальной эффективности, пересадки команда комплектования четырех различных станций (мышь приготовительные, ламинэктомия, нагнетания и швов) является желательным. Кроме того, сроки проведения каждой процедуры должны быть оптимизированы, чтобы минимизировать время клетки ждут на льду. Например, мы трансплантации наши мышей в группах по четыре (количество доз в каждой нагрузки шприц), человек инъекционных клетки начинает загрузку шприц после третьего мышь была laminectomized и человек, готовивший мышей должна обезболить следующие группы после второй мыши предыдущей группы была laminectomized. Таким образом, мы можем трансплантации клеток (или контроля средств массовой информации) в 40 мышей примерно через 3 часа, хотя каждая мышь займет около 30-40 мин.
Сотовые замены терапии для лечения некоторых расстройств ЦНС в настоящее время в клинических испытаниях 10. Существует не заменит для прижизненного моделей НСК трансплантации и наш протокол для приживления NSCs в спинной мозг мышей с вирусным индуцированной демиелинизации облегчает использование важной моделью рассеянного склероза, а также может быть легко адаптированы для других моделей.
The authors have nothing to disclose.
Name of the reagent/equipment | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
---|---|---|---|
Ketaject | Phoenix Parmaceuticals | NDC 57319-542-02 | |
Xylazine Hydrochloride | MP Biomedicals | 158307 | |
Nair | Church & Dwight Co. | ||
10μl Hamilton Syringe w/ Removable needle | Hamilton Company | 7635-01 | |
Hamilton Needles, 30G or 33 G, ½ inch, 30° bevel | Hamilton Company | 7803-077803-05 | Test the viability of your cells following passage through needles to identify the best gauge to use |
Micro Scissors | World Precision Instruments | 555500S | |
Small Graefe Forceps | FST | 11053-10 | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 1772 Universal Holder | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 1773 Electrode Holder | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 902 small animal stereotaxic | |
Stereotaxic | KOPF Instruments | Model 960 left electrode carrier | |
Sutures | Ethicon | 95057-064 | |
Lactated Ringers | Hospira | NDC 0409-7953-03 | |
Staples | Fine Science | 12032-07 | |
Hemostat | FST | 13010-12 | |
Scalpels, sizes 10,11 | Fisher | 268878, 268879 | |
Sutures | ETHICON | 1676G | size 5-0, 3/8″ circle, 19mm needle, 45cm braided thread |
Reflex 7 wound clip applicator | FST | 12031-07 | |
7mm Reflex wound clips | FST | 12032-07 | |
Olsen-Hegar needle holder | FST | 12502-12 |